Barwienie immunofluorescencyjne do wizualizacji rozproszyłych nerwowych komórek macierzystych w wycinkach mózgu myszy

0 views • 3:59 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Weźmy nieruchome odcinki mózgu myszy zawierające komórki nerwowe, w tym proliferowane nerwowe komórki macierzyste znakowane EdU, analogiem tymidyny.

Obrysuj sekcje hydrofobowym oznaczeniem, aby zapobiec rozprzestrzenianiu się roztworu.

Dodaj detergent, aby przepuszczalność tkanki. Umyj, aby usunąć nadmiar detergentu.

Dodaj fluorofor, aby oznaczyć EdU. Usuń nadmiar fluoroforów.

Za pomocą mikroskopu fluorescencyjnego potwierdź prawidłowe barwienie komórek znakowanych EdU.

Zastosuj bufor blokujący zawierający białka, aby zapobiec wiązaniu się przeciwciał nieswoistych. Usuń nadmiar białek.

Inkubacja z pierwotnymi przeciwciałami, które wiążą się ze specyficznymi białkami w nerwowych komórkach macierzystych. Usunąć niezwiązane przeciwciała.

Dodaj przeciwciała drugorzędowe sprzężone z fluoroforem, aby związać przeciwciała pierwszorzędowe. Zmyć niezwiązane przeciwciała.

Zabarwić jądra barwnikiem i usunąć nadmiar barwnika.

Usuń oznaczenie hydrofobowe, nałóż media montażowe i umieść szkiełko nakrywkowe.

Za pomocą mikroskopu konfokalnego obserwuj sekcje, aby uwidocznić oznakowane nerwowe komórki macierzyste.

Aby zabarwić skrawki tkanki analogiem tymidyny, należy usunąć skrawki tkanki z buforu cytrynianu. Pozwól skrawkom tkanki wyschnąć i całkowicie przylegać do szkiełek przed narysowaniem obramowania za pomocą hydrofobowego pisaka. Następnie przepuszczalność skrawków za pomocą buforu przepuszczalnego przez 20 do 30 minut. Umyj sekcje dwukrotnie za pomocą TBS Triton przez 5 minut za każdym razem. Następnie przygotuj roztwór reakcyjny EdU.

Inkubować skrawki w roztworze reakcyjnym EdU przez 30 minut do godziny. Następnie umyj je trzy razy w TBS Triton przez 5 minut za każdym razem. Na tym etapie należy sprawdzić, czy reakcja EdU przebiega za pomocą mikroskopu fluorescencyjnego. Komórki znakowane EdU należy obserwować, jeśli reakcja działa. Teraz zablokuj zamontowane skrawki tkanki za pomocą buforu blokującego wyhodowanego u tego samego zwierzęcia co przeciwciało drugorzędowe przez 30 minut do godziny. Następnie umyj je dwukrotnie w TBS Triton przez 5 minut za każdym razem.

Na etapie blokowania należy przygotować roztwór przeciwciała pierwszorzędowego, mieszając przeciwciało pierwszorzędowe w buforze blokującym. Następnie dodaj 250 mikrolitrów roztworu przeciwciała pierwszorzędowego na szkiełko, aby upewnić się, że skrawki tkanki są całkowicie zanurzone, i inkubuj je przez noc w temperaturze pokojowej. Następnego dnia należy przemyć skrawki tkanek trzy razy w TBS Triton przez 5 minut każda, aby usunąć nadmiar przeciwciał pierwotnych.

Następnie inkubować skrawki tkanki w przeciwciałie drugorzędowym sprzężonym z fluoroforem przygotowanym w blokującym roztworze buforowym przez dwie godziny w temperaturze pokojowej. Przemyj skrawki tkanek trzy razy w TBS Triton przez 5 minut każdy, aby usunąć nadmiar przeciwciał drugorzędowych. Następnie nałóż 300 mikromolowy roztwór DAPI o stężeniu 1 do 100 w PBS przez 15 minut w temperaturze pokojowej. Następnie umyj skrawki tkanki trzy razy w PBS przez pięć minut każdy, aby usunąć nadmiar DAPI, i usuń krąg pisaka PAP wokół tkanki za pomocą bawełnianego wacika. Pozostaw sekcje do wyschnięcia przed nałożeniem mediów montażowych i przykryciem ich szkiełkami nakrywkowymi.

09:24

Immunohistochemia i wielokrotne znakowanie przeciwciałami od tego samego gatunku gospodarza w celu zbadania neurogenezy hipokampa u dorosłych

Related Videos

0 Views

06:58

Analiza cyklu komórkowego w linii zarodkowej C. elegans z analogiem tymidyny EdU

Related Videos

0 Views

08:37

Techniki immunohistochemiczne do analizy proliferacji komórkowej i neurogenezy u szczurów przy użyciu analogu tymidyny BrdU

Related Videos

0 Views

06:41

Ex vivo Obrazowanie na żywo podziałów pojedynczych komórek w nabłonku nerwowym myszy

Related Videos

0 Views

04:18

Technika barwienia immunofluorescencyjnego do wykrywania neurogenezy hipokampa u dorosłych

Related Videos

0 Views

04:46

Barwienie immunologiczne znakowanych fluorescencyjnie astrocytów w wycinku tkanki mózgowej myszy

Related Videos

0 Views

03:04

Barwienie immunologiczne neuronów w wycinkach mózgu myszy po fluorescencyjnej hybrydyzacji in situ

Related Videos

0 Views

02:43

Obrazowanie poklatkowe podziału nerwowych komórek macierzystych myszy za pomocą mikroskopii konfokalnej

Related Videos

0 Views

11:27

Hodowla nerwowych komórek macierzystych z konwencjonalnych i niekonwencjonalnych regionów mózgu dorosłego gryzonia

Related Videos

0 Views

09:51

Ocena progresji cyklu komórkowego nerwowych komórek macierzystych i progenitorowych w mózgu myszy rozwijającym się po stresie genotoksycznym

Related Videos

0 Views

Last updated: 18 July 2026