RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Weź podgrzany roztwór agarozy zawierający znieczuloną transgeniczną larwę danio pręgowanego wyrażającą białko fluorescencyjne w neuronach ruchowych rdzenia.
Przenieś larwę do szklanego naczynia z pierścieniem agarozowym.
Za pomocą mikroskopu obróć larwę na bok. Następnie pozwól agarozie zestalić się, unieruchamiając larwę.
Dodaj bufor zawierający środek znieczulający, aby utrzymać znieczulenie.
Umieść czaszę na stoliku mikroskopu konfokalnego i użyj obrazowania w jasnym polu, aby zlokalizować grzbietowy obszar rdzenia kręgowego.
Przełącz się w tryb fluorescencji, aby uwidocznić fluorescencyjne neurony ruchowe.
Określ centralną płaszczyznę Z somy komórkowej w celu precyzyjnego ukierunkowania ablacji.
Skonfiguruj parametry obrazowania w celu uzyskania wysokiej rozdzielczości, jednocześnie minimalizując fotouszkodzenia.
Gdy pożądana płaszczyzna z jest już ostra, wykonaj ablację w docelowym obszarze neuronu za pomocą skupionego lasera ultrafioletowego.
Energia lasera zaburza struktury komórkowe, powodując utratę fluorescencji i śmierć komórki. Nieodwracalna utrata fluorescencji potwierdza precyzyjną ablację bez wpływu na otaczające komórki.
Użyj regulowanej pipety, aby wyciągnąć larwę i pozwól jej opaść na dno końcówki. Wrzuć larwę w minimalnej objętości płynu do podgrzanej agarozy, a następnie narysuj rybę agarozą i szybko przelej ją do wcześniej przygotowanego naczynia o średnicy 35 milimetrów ze szklanym dnem. Pod mikroskopem preparacyjnym użyj standardowego pędzla, aby ustawić zwierzę lub wiele zwierząt w agarozie na bokach, tak aby ciało i ogon były płaskie.
Pozostaw osadzoną rybę na 10 do 15 minut, aż agaroza mocno się zetnie. Następnie użyj około dwóch mililitrów wody jajecznej z trikanem, aby ostrożnie uzupełnić 35-milimetrową szalkę Petriego. Umieść szalkę Petriego z osadzoną larwą na stoliku mikroskopu konfokalnego i używając oświetlenia jasnego pola i 40-krotnego powiększenia, skup się na grzbietowej stronie rdzenia kręgowego zwierzęcia. Przełącz się na odpowiednie ustawienie fluorescencyjne i zwizualizuj strukturę będącą przedmiotem zainteresowania, aby potwierdzić, że wszystkie parametry obrazowania są zgodne z potrzebami do późniejszej ablacji.
Aby określić grubość struktury do ablacji laserem UV, użyj napędu Z, aby zweryfikować górną i dolną część interesującej Cię struktury poprzez ręczne ogniskowanie w górę iw dół. Ręcznie nagraj płaszczyznę Z, która zostanie usunięta, na przykład środek komórki. Aby przeprowadzić ablację laserową, uruchom kreatora FRAP, klikając menu rozwijane u góry menu oprogramowania.
W nowym oknie określ parametry obrazu dla metody ablacji, wybierając format, szybkość skanowania i uśrednianie. Jeśli płaszczyzna Z do ablacji nie została jeszcze wybrana, naciśnij przycisk na żywo i ustaw ostrość na próbce, aż struktura fluorescencyjna lub żądana płaszczyzna Z do ablacji będzie ostra. Po ustawieniu ogólnych parametrów obrazu uzyskaj dostęp do kroku wybielacza, aby kontrolować określone składniki ablacji, a następnie włącz laser 405 nm, aktywując go w celu przeprowadzenia procedury wybielania.
Następnie użyj opcji powiększenia, aby zmaksymalizować intensywność wybielania przy wybranym ROI, zmniejszając pole skanowania, maksymalizując w ten sposób czas przebywania. Wybierz jeden lub więcej ROI dla ablacji za pomocą dowolnego narzędzia do rysowania w oknie akwizycji obrazu. Celuj na przykład w wzgórek aksonu za pomocą okrągłego narzędzia do rysowania o długości około 4 do 8 mikrometrów.
Po ustaleniu zwrotu z inwestycji wybierz przycisk przebiegu czasu i potwierdź liczbę cykli, w których zwroty akcji zostaną zeskanowane i ablowane. Wybierz odpowiednio klatki przed wybielaniem i po wybielaniu, aby umożliwić przegląd całego obrazu tuż przed i bezpośrednio po procesie wybielania.
Te ustawienia umożliwiają badaczom wiele warstw udoskonalenia. Dzięki regulacji mocy lasera, prędkości skanowania, uśredniania linii, wielkości obszaru zainteresowania i powtórzeń, technika ta oferuje wysoki stopień swobody w wywoływaniu stresu lub śmierci w poszczególnych komórkach.
Po ustaleniu wszystkich niezbędnych parametrów ablacji naciśnij Uruchom eksperyment i monitoruj skuteczność ablacji. Zapoznaj się z protokołem tekstowym, aby uzyskać dodatkowe informacje.
Related Videos
09:45
Related Videos
11.6K Views
10:13
Related Videos
8K Views
09:50
Related Videos
2.2K Views
12:21
Related Videos
14.5K Views
03:24
Related Videos
2.5K Views
00:04
Related Videos
2.4K Views
03:10
Related Videos
405 Views
02:39
Related Videos
278 Views
04:42
Related Videos
354 Views
10:18
Related Videos
9.8K Views