RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Zacznij od obudzonej myszy umieszczonej pod dwufotonowym mikroskopem holograficznym zintegrowanym z przestrzennymi modulatorami światła lub SLM.
Mysz trzyma wstępnie wszczepioną płytę głowy.
W mózgu myszy neurony wyrażają kanały wrażliwe na światło czerwone i wskaźniki wapnia o zielonej fluorescencji, które wiążą się z jonami wapnia.
Aby zbadać aktywność neuronalną i łączność, ustaw parametry obrazowania.
Użyj lasera o długości 920 nanometrów, aby wzbudzić wskaźniki związane z wapniem w neuronach. Uchwyć obraz fluorescencyjny neuronu przy minimalnym fotouszkodzeniu.
Zresetuj parametry obrazowania i zogniskuj wiązkę lasera w bliskiej podczerwieni.
SLM kształtują wiązkę laserową w precyzyjne wzory holograficzne, które umożliwiają selektywne skupianie się na docelowych neuronach w wielu punktach.
Stymuluje to kanały światłoczułe, powoduje napływ jonów wapnia i zwiększa fluorescencję docelowych neuronów.
Aktywowane neurony docelowe przekazują sygnały do połączonych neuronów i zwiększają fluorescencję połączonego neuronu.
Ponownie uchwyć obraz z dwoma fotonami. Zwiększona fluorescencja w docelowych i połączonych neuronach potwierdza aktywność neuronalną i łączność.
Po umieszczeniu myszy pod mikroskopem i wykonaniu obrazowania dwufotonowego otwórz komercyjne oprogramowanie do obrazowania. W trybie obrazowania na żywo dostosuj napięcie detektora obrazu i moc lasera obrazującego, aby zoptymalizować jasność neuronów wyrażających GCaMP6m-P2A-ChRmine. Uchwyć obrazy neuronów wyrażających te białka, a następnie oświetl określone neurony zgodnie z procedurą pokazaną wcześniej.
Aby zbadać funkcjonalną łączność w neuronach warstwy 2 i 3, użyj przestrzennego modulatora światła do wygenerowania holograficznych wzorców stymulacji optogenetycznej. I połącz to z dwufotonowym obrazowaniem wapnia. Ustaw intensywność lasera obrazującego na 920 nanometrów przy 10 do 20 miliwatach, a pole widzenia na 256 mikrometrów na 256 mikrometrów. Mierzone na głębokości od 100 do 150 mikrometrów od powierzchni kory mózgowej.
Ustaw czas zatrzymania piksela na 1,5 mikrosekundy dla 2 Hz lub 100 nanosekund dla 30 Hz. Użyj zarówno 2 Hz, jak i 30 Hz jako liczby klatek na sekundę obrazowania, aby sprawdzić, czy pojedynczy bodziec holograficzny spowodował odpowiedź wapniową w neuronach. Ustaw intensywność lasera do stymulacji holograficznej, który stymuluje pojedynczy neuron, na 10 miliwatów, co jest wystarczające do wywołania aktywności neuronalnej.
Jednocześnie zobrazuj odpowiedź jonów wapnia na 920 nanometrach, z 10 bodźcami holograficznymi w odległości 1040 nanometrów i ośmiosekundowymi odstępami przez 50 milisekund po okresie podstawowym wynoszącym 10 sekund.
Related Videos
07:38
Related Videos
8.7K Views
05:45
Related Videos
7.9K Views
08:26
Related Videos
2.8K Views
03:13
Related Videos
601 Views
02:36
Related Videos
463 Views
02:52
Related Videos
508 Views
02:58
Related Videos
635 Views
02:42
Related Videos
401 Views
08:12
Related Videos
32.1K Views
16:45
Related Videos
12K Views