RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Zacznij od probówki zawierającej zarodki Drosophila w późnym stadium 16 w pożywce montażowej.
Neurony ruchowe Drosophila są znakowane immunologicznie.
Przenieść zarodek na szkiełko podstawowe i usunąć go z podłoża mocującego.
Następnie umieść zarodek brzuszną stroną do góry i wypreparuj go.
Zorientuj przedni odcinek zawierający neurony ruchowe grzbietową stroną do góry.
Za pomocą igły wolframowej przetnij wzdłuż grzbietowej linii środkowej i rozłóż ścianę ciała. Przenieść zarodek do podłoża mocującego. Następnie usuń narządy wewnętrzne, aby odsłonić oznaczone
neurony.
Przenieś zarodek na nowe szkiełko, a następnie zamontuj go i zapieczętuj.
Obserwuj pod mikroskopem kontrastowym z interferencją różnicową, jak światło przechodzi przez zarodek, generując obraz o wysokiej rozdzielczości.
Oznaczone neurony z aksonalnymi wzorcami projekcji wydają się ciemnobrązowe na jasnym tle.
Neurony ruchowe rozgałęziają się na dwa główne nerwy: nerwy międzysegmentowe i segmentowe oraz mniejszą gałąź, nerw poprzeczny, który unerwia mięśnie.
Aby filetować zarodki, umieść je na szklanym szkiełku
Najpierw przenieś je do kropli glicerolu brzuszną stroną do góry. Następnie pod mikroskopem preparacyjnym odetnij przednią część na 1/4 długości ciała. I usuń najbardziej tylny obszar, który jest wolny od aksonów motorycznych.
Teraz za pomocą sondy igłowej wyjmij preparat z glicerolu, zorientowany grzbietowo do góry i umieść go poziomo w polu widzenia. Następny krok wymaga cienkiej igły wolframowej, która została włożona w pusty obszar sondy igłowej, a następnie wygięta na końcu. Za pomocą igły wolframowej wykonaj małe nacięcie na tylnym końcu zarodka i kontynuuj cięcie grzbietowej linii środkowej.
Upewnij się, że końcówka igły wolframowej nie dotyka powierzchni szkiełka podczas sekcji, ponieważ igła łatwo zgina się na szkle.
Następnie za pomocą sondy przywróć preparat z powrotem do kropli glicerolu i umieść go grzbietową stroną do góry. Tam odłącz jelito od ściany ciała, rozkładając każdą ścianę ciała w brzusznym kierunku bocznym. Dwie ściany korpusu powinny się od siebie rozejść. Teraz za pomocą sondy ostrożnie przesuń klapy ścianki korpusu na szklane szkiełko. Na szkiełku użyj igły wolframowej, aby usunąć narządy wewnętrzne, popychając je na boki.
Aby ustabilizować igłę wolframową i zapobiec jej uszkodzeniu, należy trzymać puste sondy igłowe, które utrzymują igłę wolframową, usztywnione o powierzchnię szkiełka podczas manipulowania igłą wolframową.
Teraz zamontuj preparaty i 8 mikrolitrów roztworu montażowego na nowym szkiełku podstawowym. Przymocuj szkiełko nakrywkowe i uszczelnij krawędzie zwykłym lakierem do paznokci. Następnie rejestruj obrazy w wysokiej rozdzielczości za pomocą optyki DIC.
Related Videos
10:13
Related Videos
20K Views
08:33
Related Videos
9.7K Views
11:02
Related Videos
4.9K Views