May 13th, 2012
Ta metoda pozwala na monitorowanie komórek w czasie rzeczywistym i ilościowe pomiary różnych parametrów migracji komórek, takich jak prędkość, przemieszczenie i prędkość. W przeciwieństwie do tradycyjnych metod, to podejście w czasie rzeczywistym nie opiera się na ilościowych pomiarach migracji w punktach końcowych; Zamiast tego umożliwia ciągłe monitorowanie i obliczanie różnych parametrów.
Ogólnym celem poniższego eksperymentu jest ilościowy pomiar migracji komórek w czasie rzeczywistym za pomocą mikroskopii poklatkowej wideo. Osiąga się to poprzez najpierw pokrycie sześciodołkowej płytki hodowlanej kolagenem, a następnie rzadkie wysiewanie interesujących komórek na pokrytej płytce. W drugim etapie tworzy się ranę na płytce za pomocą końcówki pipety, zapewniając wystarczającą ilość miejsca do migracji.
Następnie ustawiany jest mikroskop, a obrazy są rejestrowane w regularnych odstępach czasu za pomocą systemu kontroli temperatury, aby umożliwić ciągłe monitorowanie migrujących komórek w czasie rzeczywistym. Ostatecznie protokół śledzenia cząstek służy do oceny różnic w średniej prędkości i całkowitym przemieszczeniu komórek testowych i kontrolnych. Główną przewagą tej techniki nad istniejącymi metodami, takimi jak test migracji w komorze unikającej, jest to, że nie opiera się ona na ilościowych pomiarach migracji w punkcie końcowym.
Zamiast tego umożliwia ciągłe monitorowanie i obliczanie różnych parametrów. Metoda ta może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania w dziedzinie biologii nowotworów, takie jak to, w jaki sposób określone geny lub leki wpływają na migrację komórek nowotworowych? Dwa dni przed zabiegiem dodaj 1,5 mililitra kolagenu rozcieńczonego w pożywce optymalnej do każdego dołka sześciodołkowej płytki hodowlanej, a następnie inkubuj płytkę przez noc w temperaturze czterech stopni Celsjusza na dzień przed zabiegiem.
Ponownie zawiesić interesujące komórki w dwóch mililitrach DMEM plus FBS na studzienkę i przenieść komórki do każdej studzienki płytki pokrytej kolagenem ENC, inkubując komórki przez noc w temperaturze 37 stopni Celsjusza. W dniu zabiegu. Użyj końcówki pipety, aby utworzyć ranę w nocnych komórkach hodowlanych i umyj każdą studzienkę PBS, aby usunąć wszelkie zanieczyszczenia, które powstały w wyniku rany.
Dodaj DMEM plus FBS do przepłukanych studzienek, a następnie sprawdź pod mikroskopem, aby potwierdzić, że utworzono czystą przestrzeń rany. Po włączeniu kamery mikroskopu i aparatu do obrazowania żywych komórek umieść płytkę nad stolikiem mikroskopu. Przykryj płytkę nową komorą kontroli środowiska z żywymi komórkami i ustaw termostat na 37 stopni Celsjusza, a dwutlenek węgla na 5%Teraz otwórz oprogramowanie książki slajdów na pasku menu.
Wybierz sterowanie ostrością, klikając przycisk F w kółku. W polu celu użyj okna rozwijanego, aby zdefiniować cel W polu zestawu filtrów wybierz ustawienia, aby skierować ścieżkę światła do dwuteownika. Wybierz odpowiedni filtr dla oświetlenia jasnego pola, a następnie kliknij otwórz jasny.
Aby otworzyć migawkę jasnego pola. Teraz wybierz filtr jasnego pola na wieżyczce i view próbkę przez okular, aby znaleźć odpowiednie pola i ustawić ostrość próbki. Następnie przesuń wieżyczkę filtra, aby zmienić ścieżkę światła do kamery Aby przechwycić obraz w oprogramowaniu do książki slajdów, kliknij kontrolę ostrości, wybierz XY, aby wybrać różne pozycje za pomocą dwuteownika, a następnie kliknij ustaw punkt, aby zablokować każdą lokalizację.
Aby przechwycić obraz, ręcznie dostosuj ostrość obrazu z kamery, który jest wyświetlany na ekranie, a następnie użyj narzędzi w oknie sterowania ostrością, aby dostosować położenie Z stołu montażowego. Aby uzyskać najlepsze wyniki, skoncentruj się na płaskich wypukłościach komórkowych w pobliżu kontaktu z płytką, aby pomóc w ustawieniu ostrości. Użyj suwaka, aby dostosować czasy ekspozycji, aby znaleźć się w odpowiednim zakresie do ustawiania ostrości.
Jeśli wybrano wiele pozycji XY, dostosuj ostrość dla każdej pozycji, wybierając opcję sterowania ostrością. Następnie xy, a następnie punkt wizyty. W skoroszycie slajdów wybierz grafikę aparatu z paska menu, wybierz typ przechwytywania, a następnie upływ czasu, aby wybrać czas trwania eksperymentu.
Z menu rozwijanego wpisz żądane opóźnienie między początkiem jednego punktu czasowego a początkiem następnego. W polach interwałów trzecie pole zostanie automatycznie obliczone na podstawie ręcznie wprowadzonych wartości. W obszarze Przechwytywanie wielu obiektów XY wybierz listę wielopunktową dla eksperymentów z więcej niż jedną pozycją XY.
Na koniec nazwij plik, aby zapisać plik, przejdź do kontroli przechwytywania i wybierz zaawansowane, a następnie buforuj. Następnie przechwyć do pamięci i zapisz do pliku buforowania Po każdym punkcie czasowym. Zacznij od kliknięcia obrazu.
Na pasku menu skoroszytu slajdów wybierz opcję importuj z menu rozwijanego, a następnie kliknij bufor książki slajdów. Wybierz żądane pliki skoroszytów slajdów wygenerowane w eksperymencie migracji dla różnych pól i punktów czasowych. Otwórz pierwszy plik, a następnie wybierz maskę na pasku menu i wybierz protokół śledzenia cząstek z menu rozwijanego.
W menu śledzenia cząstek wybierz opcję ręcznego śledzenia cząstek. Pojawi się okno z punktami czasowymi rozpoczęcia i zakończenia Aby przeanalizować losową migrację, wybierz maskę, a następnie protokół śledzenia cząstek. Ponownie, aby określić współrzędne środka obiektu, wybierz środek obszaru.
Następnie kliknij śledź i kontynuuj. Teraz wybierz żądane statystyki dla każdej ścieżki, takie jak przemieszczenie i średnia prędkość. Jak pokazano poniżej, kliknij przycisk Oblicz, aby wyświetlić statystyki.
Przykład analizy migracji losowej określonej ilościowo pod względem szybkości przedstawiono w tej ramce. Na wykresie Whiskersa, w tym eksperymencie, nastąpił wzrost średniej prędkości w 31 komórkach M-D-A-M-B 2 z powalonym genem supresorowym nowotworu. W porównaniu z kontrolnymi komórkami M-D-A-M-B 2 31 tutaj, losowa migracja komórek z pierwszego rysunku została przeanalizowana pod kątem przemieszczenia komórek.
Ponownie, grupa całkowitego knockdownu genu supresorowego guza miała zwiększone przemieszczenie komórek w porównaniu z grupą kontrolną M-D-A-M-B 2 31. Komórki w tym filmie poklatkowym, mikroskopia, kontrola filmu, MDA MB 2, 31 komórek osadzono na kolagenie przez noc. Zdjęcia były następnie wykonywane w odstępach godzinnych przez łącznie 18 godzin podczas losowej migracji.
Zwróć uwagę, jak komórki oddalają się od swoich pierwotnych pozycji w czasie. W tym filmie zarejestrowano i przeanalizowano migrację testowych komórek M-D-A-M-B 2 31 po nocnym wysiewie na kolagen. Zauważ, że komórki testowe są bardziej migrujące w porównaniu z komórkami kontrolnymi w poprzednim filmie.
Po tej procedurze można wykonać inne metody, takie jak inwazja komórek i dyny, aby odpowiedzieć na dodatkowe pytania, takie jak: jakie są role komórek w przerzutach raka po jego rozwoju? Technika ta utorowała drogę naukowcom zajmującym się biologią komórkową do zbadania migracji komórek przy użyciu izolowanych linii komórek nowotworowych.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Ta metoda umożliwia monitorowanie migracji komórek w czasie rzeczywistym, zapewniając ilościowe pomiary parametrów takich jak prędkość, przemieszczenie i wektor prędkości. W przeciwieństwie do tradycyjnych metod, to podejście ciągle śledzi te parametry, zamiast opierać się na pomiarach końcowych.