-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Zmodyfikowana metoda rurki rolkowej do precyzyjnie zlokalizowanego i powtarzalnego obrazowania pr...
Zmodyfikowana metoda rurki rolkowej do precyzyjnie zlokalizowanego i powtarzalnego obrazowania pr...
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
Modified Roller Tube Method for Precisely Localized and Repetitive Intermittent Imaging During Long-term Culture of Brain Slices in an Enclosed System

Zmodyfikowana metoda rurki rolkowej do precyzyjnie zlokalizowanego i powtarzalnego obrazowania przerywanego podczas długotrwałej hodowli wycinków mózgu w systemie zamkniętym

Full Text
11,177 Views
09:52 min
December 28, 2017

DOI: 10.3791/56436-v

Benjamin B. Fixman*1, Isaac W. Babcock*1, Laurie S. Minamide*1, Alisa E. Shaw1, Marina I. Oliveira da Silva1,2, Avery M. Runyan1, Michael T. Maloney1,3, Jeffrey J. Field1, James R. Bamburg1

1Department of Biochemistry and Molecular Biology and Molecular, Cellular and Integrated Neuroscience Program,Colorado State University, 2IBMC-Instituto de Biologia Molecular e Celular, i3S-Instituto de Investigaçãoe Inovação em Saúde, ICBAS,Universidade do Porto, 3Denali Therapeutics

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This article presents a modified roller tube method for culturing and imaging rodent brain slices over extended periods. The technique maintains neuronal viability while allowing for intermittent high-resolution imaging, facilitating research into neuronal development and neurodegenerative disorders.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Neurodegenerative disorders
  • Imaging techniques

Background

  • Long-term survival of brain slices is crucial for studying neuronal behavior.
  • Traditional methods lack the capability for repeat imaging of the same neurons over time.
  • Current approaches often expose slices to risks of contamination and compromised imaging.
  • This modified method aims to address these challenges.

Purpose of Study

  • To develop a fully enclosed culture system for safe viral use.
  • To enable high-resolution imaging of the same neuron populations over time.
  • To facilitate studies on protein localization related to synapse formation.

Methods Used

  • The primary platform is an enclosed roller tube system for brain slice culture.
  • The biological model involves rodent brain slices for studying neuronal dynamics.
  • No multiomics workflows are mentioned.
  • Critical steps include preparing tubes, sterilizing materials, and ensuring proper adhesion of slices.
  • The system is designed for continuous rotational incubation at a controlled temperature.

Main Results

  • The method preserves neuronal morphology and viability during prolonged culture.
  • It enables repeated imaging of the same neuron populations to track changes over time.
  • Facilitates the localization of key proteins associated with synaptic changes.

Conclusions

  • This study demonstrates a new technique for prolonged observation of neuron behavior.
  • The enclosed system protects against contamination while enhancing imaging precision.
  • Implications for understanding mechanisms underlying synaptic changes and neurodegeneration are significant.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of the modified roller tube method?
It allows for long-term culture and imaging of brain slices while maintaining neuronal viability and morphology.
How is the biological model implemented in this study?
Rodent brain slices are cultured within an enclosed system, enabling safe imaging and viral manipulation.
What types of data outcomes can be obtained?
Researchers can gather high-resolution images showing the same neurons over time, revealing changes in their structure and protein expression.
How can the method be adapted for different types of studies?
The enclosed system can be modified to accommodate different neuronal types or specific experimental setups involving viral expression.
Are there any limitations to this method?
While the method is robust, care must be taken during slice manipulation to avoid damage and ensure proper adhesion.

Prezentowana tutaj jest zmodyfikowana metoda rolkowa do hodowli i przerywanego obrazowania w wysokiej rozdzielczości wycinków mózgu gryzoni przez wiele tygodni z precyzyjną zmianą położenia na fototrawionych szkiełkach nakrywkowych. Żywotność neuronów i morfologia warstw są dobrze zachowane. Zapewnione są zastosowania tego w pełni zamkniętego systemu wykorzystującego wirusy do ekspresji specyficznej dla typu komórki.

Ogólnym celem tej zmodyfikowanej metody roller tube do hodowli plastrów mózgu jest zapewnienie zamkniętego systemu hodowli w celu długoterminowego przetrwania plastrów. z możliwością powtarzalnego obrazowania kwiatowego w wysokiej rozdzielczości. Metoda ta może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania dotyczące rozwoju neuronów i zaburzeń neurodegeneracyjnych, które wymagają obserwacji tych samych neuronów w czasie, takich jak lokalizacja kluczowych białek zaangażowanych w tworzenie lub utratę synaps.

Głównymi zaletami tej techniki są w pełni zamknięty system hodowli, który umożliwia bezpieczne wykorzystanie wirusów do ekspresji białek oraz użycie fototrawionych szkiełek nakrywkowych do lokalizacji tych samych komórek do obrazowania. Po raz pierwszy wpadliśmy na pomysł tej metody, gdy hodowaliśmy plastry na szkiełkach nakrywkowych wewnątrz rur rolkowych, ale potrzebowaliśmy lepszego sposobu na wizualizację zmian zachodzących w żywych plasterkach w czasie. Powszechne stosowanie wektorów wirusowych do ekspresji transgenów i określonych populacji komórek do obrazowania mikroskopowego skłoniło nas do opracowania zamkniętego systemu w celu ochrony użytkowników i wyeliminowania zanieczyszczenia obiektywów mikroskopowych.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Słowa kluczowe: kultura wycinków mózgu hodowla długoterminowa obrazowanie powtarzalne obrazowanie fluorescencyjne system zamknięty metoda rolkowa fototrawione szkiełka nakrywkowe wektory wirusowe zaburzenia neurologiczne zmiana synaps modele gryzoni

Related Videos

Organotypowy test warstwowy do obrazowania poklatkowego migracji neuronów w mózgu po urodzeniu w wysokiej rozdzielczości

10:41

Organotypowy test warstwowy do obrazowania poklatkowego migracji neuronów w mózgu po urodzeniu w wysokiej rozdzielczości

Related Videos

12.5K Views

Szybkie podejście do obrazowania fluorescencyjnego w wysokiej rozdzielczości w półgrubych wycinkach mózgu

04:35

Szybkie podejście do obrazowania fluorescencyjnego w wysokiej rozdzielczości w półgrubych wycinkach mózgu

Related Videos

16.9K Views

Obrazowanie odpowiedzi wapniowych w neuronach znakowanych GFP w podwzgórzowych wycinkach mózgu myszy

09:14

Obrazowanie odpowiedzi wapniowych w neuronach znakowanych GFP w podwzgórzowych wycinkach mózgu myszy

Related Videos

18.6K Views

Zmodyfikowana metoda rolkowa do długotrwałej hodowli wycinków mózgu gryzoni

05:23

Zmodyfikowana metoda rolkowa do długotrwałej hodowli wycinków mózgu gryzoni

Related Videos

447 Views

Obrazowanie poklatkowe migracji radialnej neuronów korowych w transdukowanych wycinkach mózgu embrionalnego myszy

02:59

Obrazowanie poklatkowe migracji radialnej neuronów korowych w transdukowanych wycinkach mózgu embrionalnego myszy

Related Videos

618 Views

Organotypowe kultury warstwowe do badania dynamiki oligodendrocytów i mielinizacji

09:45

Organotypowe kultury warstwowe do badania dynamiki oligodendrocytów i mielinizacji

Related Videos

19.2K Views

Modyfikacja kolikulo-wzgórzowo-korowego wycinka mózgu myszy, obejmująca drukowanie 3D elementów komory i wieloskalowe obrazowanie optyczne

06:05

Modyfikacja kolikulo-wzgórzowo-korowego wycinka mózgu myszy, obejmująca drukowanie 3D elementów komory i wieloskalowe obrazowanie optyczne

Related Videos

8.8K Views

Poklatkowe obrazowanie konfokalne migrujących neuronów w organotypowej kulturze warstwowej embrionalnego mózgu myszy przy użyciu elektroporacji in utero

13:33

Poklatkowe obrazowanie konfokalne migrujących neuronów w organotypowej kulturze warstwowej embrionalnego mózgu myszy przy użyciu elektroporacji in utero

Related Videos

11.7K Views

Dwufotonowe obrazowanie przyciągania procesów mikroglejowych do ATP lub serotoniny w ostrych wycinkach mózgu

07:27

Dwufotonowe obrazowanie przyciągania procesów mikroglejowych do ATP lub serotoniny w ostrych wycinkach mózgu

Related Videos

10.4K Views

Obrazowanie wewnątrzkomórkowego ATP w organotypowych wycinkach tkanki mózgu myszy przy użyciu czujnika ATeam1.03YEMK opartego na FRET

11:20

Obrazowanie wewnątrzkomórkowego ATP w organotypowych wycinkach tkanki mózgu myszy przy użyciu czujnika ATeam1.03YEMK opartego na FRET

Related Videos

10.6K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code