8 marca 2024
Podczas rozwoju kory mózgowej, neurony i komórki glejowe pochodzą ze strefy komorowej wyściełającej komorę i migrują w kierunku powierzchni mózgu. W proces ten zaangażowanych jest wiele genów. Protokół ten wprowadza technikę obrazowania poklatkowego migrujących neuronów i komórek progenitorowych glejowych.
Podczas rozwoju kory mózgowej neurony i komórki glejowe pochodzą ze strefy komorowej i migrują w kierunku powierzchni naszego mózgu. W proces ten zaangażowanych jest wiele genów, w tym te odpowiedzialne za zaburzenia neurorozwojowe i psychiatryczne. W tym procesie zajmujemy się ich funkcjami w odniesieniu do tych zachowań.
Niedawno informowaliśmy, że przodkowie astrocytów przyjmują dwa różne tryby migracji, migrację nieregularną i sterowaną naczyniami krwionośnymi. Obserwacje te zostały przeprowadzone przy użyciu kombinacji etykietowania specyficznego dla serotypu i metod obserwacji poklatkowej przedstawionych w tym filmie. Do znakowania ogniw wykorzystaliśmy system elektroporacji in utero, który opracowaliśmy w celu wizualizacji pojedynczych komórek o wysokim stosunku sygnału do szumu.
Ten system transferu genów in vivo umożliwia nam również łatwe przeprowadzanie eksperymentów ze wzmocnieniem lub utratą funkcji na danych genach poprzez koelektroporację ich ekspresji lub wektory knockdown. Korzystając z tego eksperymentalnego systemu, staramy się obserwować zachowania komórek neuronów, gleju i naczyń krwionośnych oraz wyjaśnić wzajemne oddziaływanie między nimi. Wyniki tych badań przyczynią się do zrozumienia patogenezy zaburzeń neurorozwojowych.
Na początek umieść znieczuloną mysz na talerzu o temperaturze 38 stopni Celsjusza. Po wykonaniu nacięcia skóry w linii środkowej umieść sterylny plastikowy arkusz na skórze, a następnie kawałek sterylnej bibułki i utwórz otwór pośrodku. Zwilż papier sterylnym PBS i ostrożnie wyciągnij róg macicy przez otwory.
Za pomocą mikropipety dołączonej do zespołu rurki aspiratora wstrzyknąć jeden mikrolitr mieszanki plazmidowej do lewej lub prawej bocznej komory. Przez ścianę macicy zastosuj ciśnienie wydechowe. Ściśnij głowę zarodka elektrodą typu pęseta i dostarczaj impulsy elektryczne za pomocą elektroporatora.
Po umieszczeniu rogu macicy z powrotem w jamie brzusznej, zszyj ścianę brzucha i skórę za pomocą nici jedwabnej 5-0. Na początek uzyskaj uśpioną mysz z odpowiednimi plazmidami. Aby przygotować naczynie hodowlane, dodaj 1,9 mililitra pożywki hodowlanej do szklanego naczynia i ostrożnie umieść na nim wkładkę do hodowli komórkowej.
Następnie dodaj 500 mikrolitrów pożywki hodowlanej na filtr i umieść ją na lodzie. Usuń zarodki i umieść je na szalce Petriego zawierającej lodowaty PBS. Pod mikroskopem wybierz zarodki na podstawie ekspresji białka zielonej fluorescencji lub innych markerów fluorescencyjnych.
Po wypreparowaniu mózgu umieść go w stopionym żelu agarozowym pobranym w krioformie i kilkakrotnie zwiń. Gdy agaroza zestali się w temperaturze pokojowej, umieść ją na lodzie. Za pomocą wibrującego mikrotomu pokrój mózgi na grubość 350 mikrometrów i ułóż je na filtrze.
Następnie usuń 600 mikrolitrów pożywki hodowlanej zarówno z wewnątrz, jak i na zewnątrz kubka filtra. Po pięciu minutach dodaj 100 mikrolitrów świeżej pożywki hodowlanej do wnętrza wkładki do hodowli komórkowej. W przypadku obrazowania poklatkowego należy wykonać około 10 zdjęć ze stosu Z przy użyciu obiektywu o dużej odległości roboczej 20x.
Analiza poklatkowych obrazów mózgu myszy dostarczyła trajektorii komórek migrujących z dodatnim EGFP i komórek migrujących z dodatnim RFP od 2 do 21 godzin.
Niniejsze badanie koncentruje się na rozwoju kory mózgowej, ze szczególnym uwzględnieniem migracji neuronów i progenitorów glejowych ze strefy komorowej w kierunku powierzchni mózgu. Dzięki zastosowaniu technik obrazowania time-lapse wraz z elektroporacją in utero do znakowania komórek, praca analizuje tryby migracji progenitorów astrocytów oraz geny wpływające na zaburzenia neurorozwojowe i psychiatryczne.
Obrazowanie time-lapse migrujących neuronów i progenitorów glejowych w skrawkach embrionalnego mózgu myszy umożliwia bezpośrednią wizualizację dynamiki komórkowej leżącej u podstaw procesów neurorozwojowych. Możliwość ta jest kluczowa dla minimalizacji ryzyka podczas walidacji celów oraz zrozumienia funkcji genów w układach istotnych dla chorób, szczególnie w przypadku portfolio zaburzeń neurorozwojowych i psychiatrycznych. Podejście to zwiększa pewność predykcyjną we wczesnej fazie odkrywania poprzez powiązanie perturbacji genetycznych z mierzalnymi zachowaniami komórkowymi.
Metoda ta integruje się z kontinuum odkryć, od wczesnych badań nad funkcją genów po walidację w modelach przedklinicznych, stanowiąc pomost między identyfikacją celu a ograniczaniem ryzyka mechanistycznego.