Name: Mikroskopowe metody oceny migracji komórek nabłonka podczas gojenia się ran in vitro (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-01-02T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 34 s
Description: Poznaj mikroskopowe metody oceny migracji komórek nabłonka podczas gojenia się ran in vitro. Technika ta umożliwia ilościową i jakościową analizę zachowania komórkowego oraz testowanie leków.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Chcemy podziękować starszym członkom laboratorium, którzy pomagają ulepszać i udoskonalać te techniki do ich aktualnego stanu: dr Celii Martinez-Mora; dr Annie Mrowiec, dr Catalinie Ruiz-Cañada i dr Antonii Alcaraz-Garcíi. Jesteśmy wdzięczni Szpitalowi Clínico Universitario Virgen de la Arrixaca za silne wsparcie w rozwoju tych technik. Także Instituto de Salud Carlos III, Fondo de Investigaciones Sanitarias. Plan Estatal I+D+I oraz Instituto de Salud Carlos III-Subdirección General de Evaluación y Fomento de la Investigación (nr dotacji: PI13/00794); www.isciii.es. Fondos FEDER "Una manera de hacer Europa". Dziękujemy również Universidad de Murcia, IMIB-Arrixaca i FFIS za wsparcie i pomoc administracyjną. Na koniec pragniemy złożyć specjalne podziękowania dr Isabel Martínez-Argudo oraz Facultad de Ciencias Ambientales y Bioquímica, Campus Tecnológico de la Fábrica de Armas, Universidad Castilla la Mancha, Toledo za ich życzliwe wsparcie w chętnym oddaniu Laboratorium Biomedycyny i Biotechnologii, aby umożliwić nakręcenie filmu w części tego artykułu.

1. Test sztucznego zadrapania ran do badań ilościowych
<ol>
	<li>Przygotowanie monowarstwy komórek
	<ol>
		<li>Pracując w sterylnych warunkach, wysiewaj i hoduj komórki nabłonkowe Mv1Lu lub HaCaT w kolbach hodowlanych przy użyciu pożywki uzupełnionej surowicą. Odświeżaj podłoże raz na 24-48 godzin. Gdy komórki osiągną 80% konfluencji, odłącz komórki za pomocą odpowiedniej metody, tj. trypsynizacji9. 
		UWAGA: Linie komórek nabłonka Mv1Lu i HaCaT są hodowane przy użyciu odpowiednio pożywki hodowlanej EMEM i DEMEM, uzupełnionej 2 mM L-glutaminą i inkubowane w temperaturze 37 °C w kontrolowanej atmosferze 5% CO2 . Każda linia komórkowa musi zostać dokładnie przetestowana w celu określenia stężenia komórek i czasu wymaganego do osiągnięcia pełnej konfluencji. Typowo dla komórek Mv1Lu lub HaCaT, odpowiednio 2-4 x 104 lub 4-6 x 104 komórki / studzienkę wysiewa się w kolbie hodowlanej o średnicy 175 cm2, a przy 80% konfluencji daje się do 35 x 106 Mv1Lu lub 1 x 107 komórek HaCaT.</li>
		<li>Na 12-dołkowej lub 24-dołkowej płytce hodowlanej wysiewać w każdym dołku 2 ml komórek. Odświeżaj podłoże raz na 24-48 godzin. Upewnij się, że liczba komórek jest wystarczająco wysoka, aby osiągnąć 100% konfluencji po 2 lub 3 dniach.</li>
		<li>Po tym, jak komórki osiągną zbieżność, usuń pożywkę uzupełnioną surowicą i przemyj dwukrotnie świeżą pożywką bez surowicy. Przechowywać komórki w podłożu wolnym od surowicy przez 24 godziny przed drapaniem. 
		UWAGA: Komórki Mv1Lu lub HaCaT nie mają specjalnych wymagań dotyczących substratów; jednak w przypadku linii komórkowych podatnych na spontaniczne odklejanie się w warunkach braku surowicy należy rozważyć wstępne pokrycie powierzchni płytki hodowlanej roztworem poli-L-lizyny10.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Drapanie jednowarstwowe
	<ol>
		<li>Pracując w sterylnym środowisku, należy zarysować monowarstwę hodowli, mocno przeciągając wąską końcówkę sterylnej końcówki mikropipety o pojemności 20 μl lub 200 μl, w zależności od pożądanej szerokości zarysowania. Trzymaj końcówkę prostopadle do powierzchni hodowli, aby zmaksymalizować jednorodność szczeliny.
		<ol>
			<li>Umieść płytki hodowlane na ciemnej powierzchni, aby wyraźnie monitorować monowarstwę komórek. W razie potrzeby wykonaj dwie prostopadłe rysy (w kształcie krzyża) na każdym dołku, aby zbadać do 4 obszarów migracji.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Umyj oderwane komórki, delikatnie usuwając pożywkę hodowlaną i delikatnie dodając świeżą pożywkę bez surowicy. Powtórz tę czynność dwa razy lub do momentu, gdy większość nieprzyłączonych komórek zostanie usunięta.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Procedura doświadczalna i gromadzenie danych
	<ol>
		<li>Wykonaj do 4 obrazów referencyjnych przed obróbką wyśrodkowanych na szczelinie rysy z każdego dołka za pomocą mikroskopu z odwróconym kontrastem fazowym wyposażonego w kamerę CCD. Wybierz interesujące obszary, wyrównując krawędź pola mikroskopu do sąsiedniego przecięcia rys. 
		UWAGA: Zazwyczaj obrazy są uzyskiwane przy użyciu 10-krotnego powiększenia i rozmiaru obrazu 1,280 x 1,024 pikseli. Wybór obszarów zainteresowania zgodnie z powyższym opisem pomaga w łatwej lokalizacji i walidacji do 4 pomiarów na odwiert.</li>
		<li>Po uzyskaniu wszystkich obrazów wyznacz studzienki zabiegowe; zamień pożywkę w studzienkach na świeżą pożywkę, która zawiera wybrane zabiegi. 
		UWAGA: Alternatywnie, w przypadku substancji chemicznych lub związków, które nie zaburzają jednorodności pożywki hodowlanej, zabiegi można zaszczepić bezpośrednio w pożywce.</li>
		<li>Inkubować zarysowaną płytkę (37 °C w kontrolowanej atmosferze zawierającej 5% CO2 ) do momentu, gdy obserwowane warunki osiągną 90% zamknięcie szczeliny rysowej. Unikaj całkowitego zamknięcia. 
		UWAGA: Całkowite zamknięcie luki unieważnia zbieranie obrazów po zabiegu, ponieważ obszary referencyjne nie są wykrywalne i nie można ustalić odniesienia czasowego dla zamknięcia luki. W przypadku komórek Mv1Lu lub HaCaT potrzeba 16-19 godzin, aby osiągnąć 90% konfluencję.</li>
		<li>Zatrzymaj migrację komórek poprzez utrwalenie komórek; delikatnie zastąp eksperymentalną pożywkę hodowlaną 1 ml 4% formaliny w PBS. Inkubować przez 15 minut w temperaturze pokojowej.</li>
		<li>Umyj komórki, aby usunąć nadmiar formaliny; delikatnie zastąp roztwór w studzienkach świeżym PBS. Powtórz co najmniej dwa razy. 
		UWAGA: Na tym etapie, po uszczelnieniu, płyty można przechowywać w temperaturze 4 °C przez czas nieokreślony.</li>
		<li>Wykonaj zdjęcia referencyjne po obróbce każdego studzienka z oryginalnych obszarów referencyjnych uchwyconych po zarysowaniu. Użyj tego samego sprzętu (odwrócony optyczny mikroskop z kontrastem fazowym z kamerą CCD) i pasujących ustawień obrazu (powiększenie i rozdzielczość/gęstość cyfrowa). 
		UWAGA: W przypadku komórek, które migrują indywidualnie i wypełniają lukę niezależnie od tworzenia spójnego frontu (np. komórki ludzkie raka piersi MDA-MB-231), obrazy przebiegu czasowego mogą pozwolić na obliczenie prędkości migracji poszczególnych komórek.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Analiza obrazu i kwantyfikacja migracji
	<ol>
		<li>Korzystając z oprogramowania do przetwarzania obrazu (np. ImageJ), zdefiniuj granice szczeliny zarysowania i określ powierzchnię szczeliny dla maksymalnie czterech pomiarów na zdjęciach przed obróbką. Zapisz dane jako "powierzchnię szczeliny przed obróbką" (PREGAP). Powtórz tę samą procedurę dla zdjęć po zabiegu. Zapisz dane jako "powierzchnię szczeliny po obróbce" (POSTGAP).
		<ol>
			<li>Otwórz nagrany obraz za pomocą ImageJ. W menu "obraz" ustaw typ obrazu na 8 bitów. W menu "proces" przejdź do podmenu "filtry" i zastosuj filtrowanie "wariancja".</li>
			<li>W menu "obraz" wejdź w podmenu "dostosuj" i ustaw próg na czarno-biały (czarno-biały), upewnij się, że nie jest wybrana opcja "Ciemne tło". W menu "proces" przejdź do podmenu "binarne" i wybierz "wypełnij otwory".</li>
			<li>W menu "analizuj" wybierz "ustaw pomiary" i aktywuj "obszar". Następnie narysuj mierzalny obszar zgodnie z konturem krawędzi migrującej, wyznaczając w ten sposób odstęp.</li>
			<li>W menu "analizuj" wybierz "analizuj cząstki" i zapisz wartości "całkowitej powierzchni" dla narysowanej powierzchni obszaru.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Wprowadź wartości całkowitej powierzchni PREGAP i POSTGAP w arkuszu kalkulacyjnym, aby określić ilościowo migrację bezwzględną dla każdego zestawu pojedynczych próbek jako różnicę pomiarów powierzchni szczeliny: PREGAP − POSTGAP [Jednostki arbitralne]. Dodatkowo znormalizuj dane migracji bezwzględnej każdego warunku do próbek kontrolnych: (PRÓBKA / KONTROLA) * 100 [%]. 
		UWAGA: W przypadku komórek, które migrują indywidualnie i wypełniają lukę niezależnie od tworzenia spójnego frontu (np. komórki ludzkie raka piersi MDA-MB-231), bezwzględną migrację można obliczyć, zliczając komórki atakujące centralny pasek w próbce kontrolnej lub poddanej działaniu środka.</li>
		<li>Wyniki kwantyfikacji wykresu (patrz <silna klasa="xfig">Rysunek 1). W razie potrzeby wykonaj analizę statystyczną. Weź pod uwagę test t-Studenta podczas porównywania dwóch warunków lub test analizy wariancji dla większej liczby warunków.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
2. Test sztucznego frontu migracyjnego do badań topograficznych
<ol>
	<li>Przygotowanie monowarstwy komórek
	<ol>
		<li>Pracując w sterylnych warunkach, umieść jedną warstwę wysterylizowanych okrągłych szkiełek nakrywkowych na pustych płytkach hodowlanych, aż powierzchnia płytki zostanie całkowicie pokryta. 
		UWAGA: Na płytkach o średnicy 5 cm i 10 cm mieszczą się odpowiednio do 12 i 33 szkiełek nakrywkowych.</li>
		<li>Na płytce hodowlanej delikatnie wysiew odpowiednią objętość komórek w stężeniu, które pozwala na 100% zbieżność po 2 lub 3 dniach. Upewnij się, że szkiełko nakrywkowe nie zachodzi na sąsiednie szkiełka nakrywkowe i zapobiegaj unoszeniu się szkiełek nakrywkowych, delikatnie uciskając sterylną końcówką do mikropipet. Odświeżaj podłoże co 24-48 h. 
		UWAGA: Każda linia komórkowa musi zostać dokładnie przetestowana w celu określenia stężenia komórek i czasu wymaganego do osiągnięcia pełnej konfluencji. Zazwyczaj w przypadku komórek Mv1Lu lub HaCaT wysiewa się odpowiednio 2-3 x 106 lub 2,5-4 x 106 komórek/10 cm średnicy. W przypadku mniejszych płytek numery komórek muszą być zmniejszone.</li>
		<li>Po tym, jak komórki osiągną zbieg, usuń pożywkę uzupełnioną surowicą i zastąp ją świeżą pożywką bez surowicy. Przechowuj komórki w podłożu wolnym od surowicy przez 24 godziny przed wykonaniem sztucznej rany. 
		UWAGA: Komórki Mv1Lu lub HaCaT nie mają specjalnych wymagań dotyczących substratów; jednak w przypadku linii komórkowych podatnych na spontaniczne odklejanie się w warunkach bez surowicy, należy rozważyć wstępne pokrycie powierzchni hodowli roztworem poli-L-lizyny10.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Nawijanie jednowarstwowe
	<ol>
		<li>Za pomocą sterylnej pęsety delikatnie przenieś szkiełko nakrywkowe na czystą 10-centymetrową płytkę zawierającą świeże podłoże bez surowicy. Unikaj uszkodzenia monowarstwy, przytrzymując szkiełko nakrywkowe pęsetą na obrzeżach. Unikaj nadmiernego nacisku, który mógłby spowodować pęknięcie szkiełka nakrywkowego.</li>
		<li>Twórz sztuczne rany, przeciągając wysterylizowaną żyletkę w linii poprzecznej po środku szkiełek nakrywkowych. Przeciągnij 3-4 mm w przód iw tył, aby całkowicie usunąć środkowy pasek jednowarstwowy. Upewnij się, że żadne resztki komórek nie są przyczepione do zranionych krawędzi. 
		UWAGA: W przypadku okrągłego szkiełka nakrywkowego o średnicy 12 mm nacięcie wykonuje się w połowie szkiełka nakrywkowego. Upewnij się, że smuga komórek naprzeciwko głównego frontu jest wystarczająco duża (co najmniej 2 mm szerokości), aby uniknąć przechylenia szkiełka nakrywkowego w kolejnych krokach.</li>
		<li>Zranione szkiełka nakrywkowe przenieść z komórkami skierowanymi do góry na czystą 6-dołkową płytkę zawierającą co najmniej 2 ml świeżej pożywki wolnej od surowicy. Pasuje do 4 zranionych szkiełek nakrywkowych/studzienki.</li>
		<li>Delikatnie umyj dwa razy świeżym podłożem bez serum, aby usunąć oderwane komórki.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Procedura doświadczalna i pobieranie próbek
	<ol>
		<li>Delikatnie wymień pożywkę w studzienkach na świeżą pożywkę, która zawiera wybrane zabiegi. 
		UWAGA: Alternatywnie, w przypadku substancji chemicznych lub związków, które nie zaburzają jednorodności pożywki hodowlanej, zabiegi można zaszczepić bezpośrednio w pożywce. Postępuj ostrożnie, aby uniknąć potencjalnego oderwania komórek.</li>
		<li>Przechowywać płytkę w inkubatorze komórkowym (37 °C, 5% CO2 ) przez żądany czas doświadczalny.</li>
		<li>Zatrzymaj migrację komórek poprzez utrwalenie komórek; delikatnie zastąp eksperymentalną pożywkę hodowlaną 1 ml 4% formaliny w PBS. Inkubować przez 15 minut w temperaturze RT. 
		UWAGA: W przypadku eksperymentów z biegiem czasu należy usunąć próbki z płytki hodowlanej i umieścić je na osobnej płytce, aby uniknąć wpływu oparów formaliny na inne, trwające warunki eksperymentalne.</li>
		<li>Umyj komórki, aby usunąć nadmiar formaliny; delikatnie zastąp roztwór w studzienkach świeżym PBS. Powtórz co najmniej dwa razy. 
		UWAGA: Na tym etapie, po uszczelnieniu, płyty można przechowywać w temperaturze 4 °C przez czas nieokreślony.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Immunofluorescencja (IF) i analiza topologiczna
	<ol>
		<li>Wykonaj barwienie IF i obrazowanie na poszczególnych szkiełkach nakrywkowych, jak opisano w innym miejscu3,4,11.
		<ol>
			<li>Przepuszczalność przez 10 minut, zanurzając szkiełka nakrywkowe w 0,3% roztworze Triton X-100 w PBS.</li>
			<li>Blokuj przez 30 minut, używając następującego roztworu blokującego: 0,3% albuminy surowicy bydlęcej; 10% płodowej surowicy bydlęcej; 5% mleka odtłuszczonego; 0,3% roztworu Triton X-100 w PBS. 
			UWAGA: Roztwór blokujący bez mleka można przygotować wcześniej i przechowywać w temperaturze -20 °C.</li>
			<li>Inkubować przez 1 godzinę w temperaturze pokojowej w wilgotnej komorze, z przeciwciałem pierwszorzędowym rozcieńczonym w bezmlecznym roztworze blokującym. Umieść szkiełka nakrywkowe do góry nogami w 15 μl roztworze przeciwciał, aby zapewnić prawidłowe rozprowadzenie. 
			UWAGA: Rozcieńczenie robocze przeciwciała jest zmienne i zależy od używanego przeciwciała. Na przykład przeciwciało anty-c-Jun Rabbit wymaga rozcieńczenia 1/100.</li>
			<li>Umyć szkiełka nakrywkowe trzykrotnie, zanurzając je w 0,1% roztworze Triton X-100 w PBS.</li>
			<li>Szkiełka nakrywkowe inkubować w przeciwciałie drugorzędowym rozcieńczonym w bezmlecznym buforze blokującym przez 30 min. 
			UWAGA: Rozcieńczenie robocze przeciwciała jest zmienne i zależy od używanego przeciwciała. Na przykład Koza-anty-Królik (488) wymaga rozcieńczenia 1/400 w celu uzyskania optymalnej rozdzielczości. Na tym etapie do buforu inkubacyjnego można dodać inne odczynniki do znakowania, takie jak falloidyna i Hoechst-33258.</li>
			<li>Umyć szkiełka nakrywkowe trzykrotnie, zanurzając je w 0,1% roztworze Triton X-100 w PBS.</li>
			<li>Zamontuj szkiełka nakrywkowe do góry nogami w kropli 10 μl materiału montażowego (np. Vectashield) umieszczonej na szkiełku mikroskopowym. Pozostaw szkiełka w ciemności w temperaturze pokojowej na noc w celu utwardzenia podłoża montażowego. Następnie przechowywać w temperaturze 4 °C w ciemności przez czas nieokreślony.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Uzyskać obrazy z mikroskopii epifluorescencyjnej lub konfokalnej zmian strukturalnych zachodzących na migrującej krawędzi czołowej. 
		UWAGA: Badania topologiczne można przeprowadzić, układając obrazy od frontu migrującego do wewnętrznej warstwy monologicznej. Badania półilościowe są możliwe dzięki analizie opartej na oprogramowaniu lokalnych intensywności fluorescencji.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>

<ol><li>Singer, A. J., Clark, R. A. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/10471461">Cutaneous wound healing.</a> N Engl J Med. 341 (10), 738-746 (1999).</li>
<li>Davidson, J. M. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/9710378">Animal models for wound repair.</a> Arch Dermatol Res. 290, Suppl . S1-S11 (1998).</li>
<li>Alcaraz, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Amniotic+Membrane+Modifies+the+Genetic+Program+Induced+by+TGFss%2C+Stimulating+Keratinocyte+Proliferation+and+Migration+in+Chronic+Wounds%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Amniotic Membrane Modifies the Genetic Program Induced by TGFss, Stimulating Keratinocyte Proliferation and Migration in Chronic Wounds.</a> PLoS One. 10 (8), e0135324(2015).</li>
<li>Ruiz-Canada, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Amniotic+membrane+stimulates+cell+migration+by+modulating+Transforming+Growth+Factor-beta+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22J+Tissue+Eng+Regen+Med%22%5BJournal%5D)">Amniotic membrane stimulates cell migration by modulating Transforming Growth Factor-beta signaling.</a> J Tissue Eng Regen Med. , (2017).</li>
<li>Schmierer, B., Hill, C. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((TGFbeta-SMAD+signal+transduction%3A+molecular+specificity+and+functional+flexibility%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Mol+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">TGFbeta-SMAD signal transduction: molecular specificity and functional flexibility.</a> Nat Rev Mol Cell Biol. 8 (12), 970-982 (2007).</li>
<li>Hu, Y. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((FAK+and+paxillin+dynamics+at+focal+adhesions+in+the+protrusions+of+migrating+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">FAK and paxillin dynamics at focal adhesions in the protrusions of migrating cells.</a> Sci Rep. 4, 6024(2014).</li>
<li>Martinez-Mora, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fibroin+and+sericin+from+Bombyx+mori+silk+stimulate+cell+migration+through+upregulation+and+phosphorylation+of+c-Jun%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+one%22%5BJournal%5D)">Fibroin and sericin from Bombyx mori silk stimulate cell migration through upregulation and phosphorylation of c-Jun.</a> PloS one. 7 (7), e42271(2012).</li>
<li>Bernabe-Garcia, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oleanolic+acid+induces+migration+in+Mv1Lu+and+MDA-MB-231+epithelial+cells+involving+EGF+receptor+and+MAP+kinases+activation%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Oleanolic acid induces migration in Mv1Lu and MDA-MB-231 epithelial cells involving EGF receptor and MAP kinases activation.</a> PLoS One. 12 (2), e0172574(2017).</li>
<li>Huang, H. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Trypsin-induced+proteome+alteration+during+cell+subculture+in+mammalian+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biomed+Sci%22%5BJournal%5D)">Trypsin-induced proteome alteration during cell subculture in mammalian cells.</a> J Biomed Sci. 17, 36(2010).</li>
<li>Liberio, M. S., Sadowski, M. C., Soekmadji, C., Davis, R. A., Nelson, C. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+effects+of+tissue+culture+coating+substrates+on+prostate+cancer+cell+adherence%2C+morphology+and+behavior%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Differential effects of tissue culture coating substrates on prostate cancer cell adherence, morphology and behavior.</a> PLoS One. 9 (11), e112122(2014).</li>
<li>Pierreux, C. E., Nicolas, F. J., Hill, C. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transforming+growth+factor+beta-independent+shuttling+of+Smad4+between+the+cytoplasm+and+nucleus%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Transforming growth factor beta-independent shuttling of Smad4 between the cytoplasm and nucleus.</a> Mol Cell Biol. 20 (23), 9041-9054 (2000).</li>
<li>Barrientos, S., Stojadinovic, O., Golinko, M. S., Brem, H., Tomic-Canic, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Growth+factors+and+cytokines+in+wound+healing%5BTitle%5D)+AND+%22Wound+repair+and+regeneration%3A+official+publication+of+the+Wound+Healing+Society+%5Band%5D+the+European+Tissue+Repair+Society%22%5BJournal%5D)">Growth factors and cytokines in wound healing.</a> Wound repair and regeneration: official publication of the Wound Healing Society [and] the European Tissue Repair Society. 16 (5), 585-601 (2008).</li>
<li>Ansell, D. M., Holden, K. A., Hardman, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+models+of+wound+repair%3A+Are+they+cutting+it%3F%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Dermatol%22%5BJournal%5D)">Animal models of wound repair: Are they cutting it?</a> Exp Dermatol. 21 (8), 581-585 (2012).</li>
<li>Gurtner, G. C., Werner, S., Barrandon, Y., Longaker, M. T. <a target="_blank" href="https://search.proquest.com/openview/50d2937ff21b6f438b4d7d0ce03f4186/1?pq-origsite=gscholar&cbl=40569">Wound repair and regeneration.</a> Nature. 453 (7193), 314-321 (2008).</li>
<li>Insausti, C. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Amniotic+membrane+induces+epithelialization+in+massive+posttraumatic+wounds%5BTitle%5D)+AND+%22Wound+Repair+Regen%22%5BJournal%5D)">Amniotic membrane induces epithelialization in massive posttraumatic wounds.</a> Wound Repair Regen. 18 (4), 368-377 (2010).</li>
<li>Wu, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+cycle+arrest+in+G0%2FG1+phase+by+contact+inhibition+and+TGF-beta+1+in+mink+Mv1Lu+lung+epithelial+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Cell cycle arrest in G0/G1 phase by contact inhibition and TGF-beta 1 in mink Mv1Lu lung epithelial cells.</a> Am J Physiol. 270 (5 Pt 1), L879-L888 (1996).</li>
<li>Boukamp, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Normal+keratinization+in+a+spontaneously+immortalized+aneuploid+human+keratinocyte+cell+line%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Normal keratinization in a spontaneously immortalized aneuploid human keratinocyte cell line.</a> J Cell Biol. 106 (3), 761-771 (1988).</li>
<li>Marshall, J. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aMarshall%2C+J+%22Cell+Migration%3A+Developmental+Methods+and+Protocols%22">Cell Migration: Developmental Methods and Protocols</a>. Wells, C. M., Parsons, M. , Humana Press. 97-110 (2011).</li>
<li>Nyegaard, S., Christensen, B., Rasmussen, J. T. <a target="_blank" href="http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S2214030116300074">An optimized method for accurate quantification of cell migration using human small intestine cells.</a> Metabolic Engineering Communications. 3, 76-83 (2016).</li>
<li>Szybalski, W., Iyer, V. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Crosslinking+of+DNA+by+Enzymatically+or+Chemically+Activated+Mitomycins+and+Porfiromycins%2C+Bifunctionally+%22Alkylating%22+Antibiotics%5BTitle%5D)+AND+%22Fed+Proc%22%5BJournal%5D)">Crosslinking of DNA by Enzymatically or Chemically Activated Mitomycins and Porfiromycins, Bifunctionally "Alkylating" Antibiotics.</a> Fed Proc. 23, 946-957 (1964).</li>
<li>Tomasz, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mitomycin+C%3A+small%2C+fast+and+deadly+%28but+very+selective%29%5BTitle%5D)+AND+%22Chem+Biol%22%5BJournal%5D)">Mitomycin C: small, fast and deadly (but very selective).</a> Chem Biol. 2 (9), 575-579 (1995).</li>
<li>Sherry, D. M., Parks, E. E., Bullen, E. C., Updike, D. L., Howard, E. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+method+for+using+silicone+elastomer+masks+for+quantitative+analysis+of+cell+migration+without+cellular+damage+or+substrate+disruption%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Adh+Migr%22%5BJournal%5D)">A simple method for using silicone elastomer masks for quantitative analysis of cell migration without cellular damage or substrate disruption.</a> Cell Adh Migr. 7 (6), 469-475 (2013).</li>
<li>Dennis, E. A., Rhee, S. G., Billah, M. M., Hannun, Y. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+of+phospholipase+in+generating+lipid+second+messengers+in+signal+transduction%5BTitle%5D)+AND+%22FASEB+J%22%5BJournal%5D)">Role of phospholipase in generating lipid second messengers in signal transduction.</a> FASEB J. 5 (7), 2068-2077 (1991).</li>
<li>Lampugnani, M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+migration+into+a+wounded+area+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Cell migration into a wounded area in vitro.</a> Methods Mol Biol. 96, 177-182 (1999).</li>
</ol>

Autorzy oświadczają, że nie występuje konflikt interesów.

Po przerwaniu ciągłości skóry lub błony śluzowej funkcja bariery zostaje przywrócona przez działanie wielu typów komórek, w tym fibroblastów lub komórek nabłonkowych i odpornościowych. Łącznie komórki te przechodzą złożony proces obejmujący apoptozę, proliferację, różnicowanie i, co ważne, migrację fibroblastów i komórek nabłonkowych, która jest ostatecznym mechanizmem odpowiedzialnym za odbudowę uszkodzonej tkanki i zamknięcie powierzchownej luki nabłonkowej 1,12</sup...

Migracja komórek jest niezbędna do gojenia się ran, ponieważ jest odpowiedzialna za ostateczne zamknięcie szczeliny nabłonkowej i przywrócenie uszkodzonej powierzchni1. Wykonywanie sztucznych ran na modelach zwierzęcych pozwala na odtworzenie tego złożonego procesu w warunkach zbliżonych do fizjologicznych2. Jednak takie podejście często prowadzi do kosztownych i skomplikowanych procedur eksperymentalnych, które potencjalnie nie są precyzyjne w badaniu różnych procesów, ze względu na skomplikowany charakter procesu gojenia się ran.
Hodowla in vitro linii komórkowych nabłonka stanowi pomocną alternatywę dla modeli zwierzęcych do badania roli, jaką te komórki odgrywają w gojeniu się ran i wpływu leczenia na zachowania migracyjne komórek. Fizjologia komórek nabłonkowych jest często badana za pomocą technik molekularnych przy użyciu kultur niezlewających się3,4,5,6; Jednak naruszenie integralności nabłonka jest zwykle osiągane przez drobne nacięcia mechaniczne. W hodowli komórkowej oznacza to, że znikoma liczba komórek może być narażona na przerwę w ranie i stanowią one zbyt małą próbkę dla technik biologii molekularnej. Jednak zmiany te można badać w skali mikroskopowej, wykorzystując wrodzone właściwości migracyjne niektórych linii komórek nabłonkowych, takich jak komórki nabłonkowe płuc norek (Mv1Lu) lub spontanicznie unieśmiertelnione linie komórkowe ludzkich keratynocytów (HaCaT).
Tutaj opisaliśmy metodę mikroskopii, która jest odpowiednia do uzyskania danych ilościowych na temat migracji komórek nabłonka w kontekście gojenia się ran3,4,7,8. Ponadto przedstawiamy dodatkowe metody, które są pomocne w badaniu jakościowo zmian molekularnych i morfologicznych zachodzących na monowarstwach nabłonka podczas migracji. Ogólnie rzecz biorąc, metody te stanowią ramy do badania zarówno dynamiki, jak i zmian morfologicznych związanych z zachowaniem komórek nabłonka i reakcją na leczenie podczas gojenia się ran.

<table><tbody><tr><td>Dulbecco' s Modified Eagle Medium (DMEM)</td><td>Biowest, Nuaill&eacute;, Francja</td><td>L0102-500</td><td>Opcjonalnie 10 % suplement FBS</td></tr><tr><td>Eagles' s Minimum Essential Medium (EMEM)</td><td>Lonza</td><td>BE12 -662F</td><td>Opcjonalnie 10% suplement FBS</td></tr><tr><td>L-glutamina</td><td>Lonza</td><td>BE17-605E</td><td>Stosować przy 2 mM</td></tr><tr><td>Płodowa surowica bydlęca (FBS)</td><td>Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA USA</td><td>DE17603A</td><td></td></tr><tr><td>Trypsin-EDTA</td><td>Sigma-Aldrich, St Louis, MO, USA</td><td>T4049</td><td>Rozcieńczyć w razie potrzeby</td></tr><tr><td>Poli-L-Lizyna</td><td>Sigma-Aldrich, St Louis, MO, USA</td><td>P9155</td><td></td></tr><tr><td>Sól fizjologiczna buforowana fosforanem Dulbecco (DPBS) (10x)</td><td>Gibco firmy Life Technologies</td><td>14200-067</td><td>Rozcieńczyć do 1x</td></tr><tr><td>24-dołkowych płytek hodowlanych</td><td>BD FALCON//SARSTED</td><td>734-0020</td><td></td></tr><tr><td>6-dołkowe płytki hodowlane</td><td>SARSTEDT</td><td>83-3920</td><td></td></tr><tr><td>Naskórkowy czynnik wzrostu (EGF)</td><td>Sigma-Aldrich, St Louis, MO, USA</td><td>E9644</td><td>Używany 10 ng/mL</td></tr><tr><td>Okrągły szkło nakrywkowe</td><td>MENZEL-GL&Auml; </td><td></td><td>SER MENZCB00120RA020 KRÓTKA GŁĘBIA OSTROŚCI</td></tr><tr><td>Wzmocniona żyletka nr 743</td><td>Martor (przez VWR)</td><td>MARO743.50</td><td></td></tr><tr><td>200 &micro; l sterylne końcówki do pipet aerozolowych</td><td>VWR</td><td>732-0541</td><td></td></tr><tr><td>20 &micro; l sterylne końcówki do pipet aerozolowych</td><td>VWR</td><td>732-0528</td><td></td></tr><tr><td>Mikroskop kontrastu fazowego sprzężonego z kamerą</td><td>cyfrową Motic Hiszpania</td><td>Kamera Moticam 2300 3.0 M Pixel USB 2.0; Motic Optic AE31</td><td></td></tr><tr><td>Mikroskop konfokalny</td><td>ZEISS Microimaging, Niemcy</td><td>LSM 510 META</td><td></td></tr><tr><td>10 cm Naczynie hodowlane</td><td>BD FALCON</td><td>353003</td><td></td></tr><tr><td>Królicze poliklonalne przeciwciało anty c-Jun</td><td>Santa Cruz Biotechnology</td><td>sc-1694</td><td>Używany 1:100</td></tr><tr><td>Anty-królicza IgG (koza poliklonalna) AF 488</td><td>Invitrogen</td><td>A11008</td><td>Używany 1:400</td></tr><tr><td>Hoechst-33258</td><td>Sigma-Aldrich, St Louis, MO, USA</td><td>14530</td><td>Używany 1:1000</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 594 falloidyna (w metanolu) (czerwony)</td><td>Invitrogen</td><td>A12381</td> używany <td></td></tr><tr><td>albumina surowicy bydlęcej</td> 1:100 <td>Santa Cruz Biotechnology</td><td>SC-2323</td><td></td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Sigma-Aldrich, St Louis, MO, USA</td><td>T9284</td><td></td></tr><tr><td>Mleko odtłuszczone</td><td>BD DIFCO</td><td>232100</td><td></td></tr><tr><td>ImageJ</td><td>National Institutes of Health, USA</td><td>Wydanie 1.50i</td><td></td></tr><tr><td>Oprogramowanie do przetwarzania obrazu Zen LSM 510</td><td>ZEISS Microimaging, Niemcy</td><td>Wydanie 5.0 SP 1.1</td><td></td></tr></tbody></table>

mikroskopowe metody oceny migracji komórek nabłonka podczas gojenia się ran in vitro

Microscopy Based Methods for the Assessment of Epithelial Cell Migration During In Vitro Wound Healing

Migracja komórek jest obowiązkowym aspektem gojenia się ran. Tworzenie sztucznych ran na badanych modelach zwierzęcych często skutkuje kosztownymi i skomplikowanymi procedurami eksperymentalnymi, a jednocześnie potencjalnie brakuje precyzji. Hodowla in vitro nabłonkowych linii komórkowych stanowi odpowiednią platformę do badań nad zachowaniami migracyjnymi komórek w procesie gojenia się ran oraz wpływem leczenia na te komórki. Fizjologia komórek nabłonkowych jest często badana w warunkach niezlewających się; Jednak takie podejście może nie przypominać naturalnych warunków gojenia się ran. Naruszenie integralności nabłonka za pomocą środków mechanicznych pozwala uzyskać realistyczny model, ale może utrudnić zastosowanie technik molekularnych. W związku z tym techniki oparte na mikroskopii są optymalne do badania migracji komórek nabłonka in vitro. W tym miejscu szczegółowo opisujemy dwie konkretne metody, test sztucznego zadrapania rany i test sztucznego frontu migracji, które mogą uzyskać odpowiednio dane ilościowe i jakościowe dotyczące wydajności migracji komórek nabłonkowych.

Sztuczny test gojenia ran (scratch assay) do badań ilościowych: Ocena wpływu czynnika wzrostu naskórka (EGF) na promowanie migracji:
EGF jest znanym induktorem proliferacji i migracji komórek nabłonkowych, a zatem służy jako kontrola pozytywna do ilościowego określania stymulacji migracji. W testach z zadrapaniem (wound scratch assays) wykorzystano monowarstwy komórek Mv1Lu oraz HaCaT, a następnie wykonano zdjęcia przed traktowanie...

Ten manuskrypt opisuje, w jaki sposób zmiany przypominające nacięcia wykonane na monowarstwach hodowanych komórek nabłonkowych wygodnie modelują gojenie się ran in vitro, umożliwiając obrazowanie za pomocą konfokalnej lub laserowej mikroskopii skaningowej, i które mogą dostarczyć wysokiej jakości danych ilościowych i jakościowych do badania zarówno zachowania komórek, jak i mechanizmów związanych z migracją.

Mikroskopowe metody oceny migracji komórek nabłonka podczas gojenia się ran in vitro

Cell migration is a mandatory aspect for wound healing. Creating artificial wounds on research animal models often results in costly and complicated ...

Ogólnym celem tych procedur sztucznego ranienia za pomocą hodowli komórek nabłonkowych jest zbadanie migracji komórek zarówno z perspektywy ilościowej, jak i jakościowej, co pozwoli na ocenę wpływu określonych metod leczenia na gojenie się ran. Metoda ta może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania w dziedzinie gojenia się ran, ponieważ pozwala na precyzyjne scharakteryzowanie ról określonych procesów migracyjnych podczas rozerwania nabłonka. Główną zaletą tego podejścia jest to, że pozwala ono na korelację pomiarów migracji komórek ze zmianami w zachowaniu odpowiednich markerów molekularnych.Implikacje tych technik rozciągają się w kierunku terapii ran klinicznych, ponieważ oferują one dogodną konfigurację do wczesnego testowania leków i zamykania ran. Ogólnie rzecz biorąc, ta metoda zaczyna się z powodu trudności w uzyskaniu spójnej zdolności do rozmnażania się w ranach z pokoleniem. W przypadku testu sztucznego zadrapania rany zacznij od zasiania każdej studzienki płytki hodowlanej dwoma mililitrami interesujących komórek nabłonka w kompletnym podłożu.Hoduj komórki w temperaturze 37 stopni Celsjusza i pięciu procent dwutlenku węgla przez dwa do trzech dni, aż do 100% konfluencji. Gdy komórki są gotowe, przemyj je dwa razy świeżą pożywką bez surowicy, a następnie 24 godziny hodowli w świeżej pożywce bez surowicy. Następnego dnia umieść płytkę w sterylnym miejscu pracy i przeciągnij wąską końcówkę sterylnej końcówki mikropipety po dnie każdej studzienki dwa razy, aby wytworzyć ranę w kształcie krzyża.Spójną szczelinę rany uzyskuje się poprzez stosowanie stałego, mocnego nacisku przy jednoczesnym płynnym przesuwaniu końcówki po powierzchni nabłonka. Nadmierny nacisk zdeformuje końcówkę, powodując nieregularny promień rany. Delikatnie usunąć supernatant, aby odłączyć odłączone komórki i ostrożnie dodać do studzienek świeżą pożywkę bez surowicy.Używając mikroskopu z odwróconą fazą kontrastową połączonego z kamerą urządzenia sprzężonego z ładunkiem, wyrównaj krawędź pola mikroskopu z sąsiednim przecięciem rys, aby uzyskać do czterech obrazów referencyjnych przed obróbką szczeliny rysy w każdym dołku. Po uzyskaniu wszystkich obrazów należy zastąpić pożywkę w wyznaczonych studzienkach zabiegowych świeżą pożywką, uzupełnioną wybranymi zabiegami będącymi przedmiotem zainteresowania i zwrócić płytki do inkubatora do hodowli komórkowych. Gdy co najmniej jeden warunek osiągnie około 90% zamknięcia szczeliny na zadrapania, delikatnie zastąp supernatant jednym mililitrem czteroprocentowej formaliny w PBS na 15-minutową inkubację w temperaturze pokojowej.Następnie delikatnie umyj komórki PBS co najmniej trzy razy, aby usunąć nadmiar formaliny i zobrazuj studzienki, jak właśnie pokazano, używając tych samych parametrów obrazowania w oryginalnych obszarach referencyjnych uchwyconych po zadrapaniu. Aby przeanalizować obrazy za pomocą odpowiedniego oprogramowania do przetwarzania obrazu, otwórz zarejestrowany, wstępnie przetworzony obraz, który Cię interesuje, i w menu Obraz ustaw typ obrazu na 8-bitowy. W menu Proces wybierz podmenu Filtry i zastosuj filtrowanie wariancji.W menu Obraz otwórz podmenu Dostosuj i ustaw Próg na czarno-biały. W menu Proces wybierz podmenu Binarne i zastosuj opcję Wypełnij otwory. W menu Analizuj wybierz opcję Ustaw pomiary i aktywuj opcję Obszar.Następnie narysuj mierzalny obszar, podążając za konturem krawędzi migrującej, aby wyznaczyć odstęp. W menu Analizuj wybierz opcję Analizuj cząstki i zapisz łączne wartości powierzchni obszaru. Aby określić ilościowo migrację bezwzględną dla każdego zestawu pojedynczych próbek jako różnicę między pomiarami powierzchni szczeliny, należy wyeksportować wartości całkowitej powierzchni szczeliny przed i po obróbce do arkusza kalkulacyjnego i wykreślić wyniki kwantyfikacji.W przypadku testu na sztucznym froncie migracji, w sterylnych warunkach, dodaj jedną warstwę do 33 wysterylizowanych okrągłych szkiełek nakrywkowych do pustych 10-centymetrowych płytek hodowlanych. Gdy powierzchnia płytki zostanie całkowicie pokryta, delikatnie wysiew interesujące komórki nabłonkowe w stężeniu, które pozwala na 100% zbieżność po dwóch lub trzech dniach hodowli. W razie potrzeby delikatnie wciśnij pokrywki sterylną końcówką mikropipety, aby zapobiec unoszeniu się na wodzie.Gdy komórki osiągną zlewność, zastąp supernatant pożywką bez surowicy na kolejne 24 godziny hodowli. Następnie za pomocą sterylnej pęsety ostrożnie przenieś jedno szkiełko nakrywkowe na nową 10-centymetrową płytkę zawierającą świeże podłoże bez surowicy, uważając, aby utrzymać szkiełko nakrywkowe wzdłuż jego obrzeża. Aby utworzyć sztuczne rany, przeciągnij wysterylizowaną żyletkę tam iz powrotem po każdym szkiełku nakrywkowym, aby utworzyć trzy- do czterech milimetrowych linii poprzecznych nad środkiem każdej kultury komórkowej, aby całkowicie usunąć środkowy pasek monowarstwowy.Należy zwrócić uwagę, aby podczas wykonywania rany mocno przesunąć krawędź żyletki w poprzek powierzchni szkiełka nakrywkowego, aby zabezpieczyć się przed nieregularnym kształtem krawędzi i powstawaniem opadających części nabłonka. Przenieść do czterech zwijanych szkiełek nakrywkowych, komórką do góry, do indywidualnych dołków sześciodołkowej płytki, zawierającej co najmniej dwa mililitry pożywki niezawierającej surowicy i delikatnie przemyć każdą studzienkę dwa razy świeżą pożywką bez surowicy, aby usunąć wszelkie oderwane komórki. Po wyrzuceniu wszystkich oderwanych komórek należy delikatnie zastąpić pożywkę płuczącą świeżą pożywką uzupełnioną odpowiednimi zabiegami i umieścić płytkę w inkubatorze do hodowli komórkowych.Pod koniec odpowiedniego okresu doświadczalnego utrwalić komórki czteroprocentową formaliną w PBS, jak właśnie pokazano, i wybarwić komórki odpowiednimi fluorescencyjnymi sprzężonymi przeciwciałami, które są przedmiotem zainteresowania. Następnie zobrazuj zmiany strukturalne zachodzące na migrującej przedniej krawędzi za pomocą mikroskopii fluorescencyjnej zgodnie z interesującymi parametrami eksperymentalnymi. W tym eksperymencie szczeliny w ranach mierzono przed i po leczeniu naskórkowym czynnikiem wzrostu, dobrze znanym induktorem proliferacji i migracji komórek nabłonka.Migrację bezwzględną obliczono następnie jako różnicę między powierzchniami szczeliny przed i po obróbce. Leczenie naskórkowym czynnikiem wzrostu nasila dynamikę cytoszkieletu komórek, co zaobserwowano w tych obrazach z laserowej mikroskopii skaningowej barwienia F-aktyną komórek kontrolnych i stymulowanych czynnikiem wzrostu. Ponadto obserwuje się nadekspresję c-Jun ze zwiększoną ekspresją białka widoczną w komórkach sąsiadujących z frontem migracyjnym.Próbując wykonać tę procedurę, należy pamiętać o sprawdzeniu integralności brzegów rany pod kątem obecności płatów komórek nabłonkowych, które mogą zakłócić kwantyfikację migracji. Po obejrzeniu tego filmu powinieneś dobrze zrozumieć, jak zarówno ilościowo, jak i jakościowo ocenić zachowania migracyjne

microscopy-based-methods-for-assessment-epithelial-cell-migration

Research

JoVE Journal

Medicine

Medycyna

Opisano powszechnie stosowane, wysoce dostępne metody badania migracji komórek i inwazji in vitro. Pierwszą metodą jest test zamykania ran komórkowych, który mierzy ruchliwość komórek. Drugą metodą jest test migracji i inwazji transwell, który ocenia zdolność komórek do chemotakcji i inwazyjności.

Metody in vitro Testy migracji i inwazji komórek

Migracja komórek to zjawisko biologiczne, które bierze udział w wielu procesach fizjologicznych, takich jak gojenie się ran i reakcje immunologiczne oraz procesy patofizjologiczne, takie jak rak. Test migracji macierzy kolagenu 3D jest wszechstronnym narzędziem do analizy właściwości migracyjnych różnych typów komórek w środowisku fizjologicznym 3D.

Analiza migracji komórek w obrębie trójwymiarowej matrycy kolagenowej

Badanie wczesnej migracji komórek śródbłonka (EEC) jest ważne dla zrozumienia patofizjologii niektórych chorób i potencjalnego zidentyfikowania nowych strategii interwencji terapeutycznej. Poniższy protokół opisuje techniki oceny migracji komórek, które zostały dostosowane do badania EWG.

Ocena migracji komórek śródbłonka po ekspozycji na toksyczne chemikalia

Celem tego protokołu jest ocena wpływu czynników pro- i antymigracyjnych na migrację komórek w trójwymiarowej matrycy fibryny.

Charakterystyka migracji komórek w trójwymiarowym środowisku ran in vitro

Tutaj prezentujemy monitorowanie migracji komórek w czasie rzeczywistym w teście gojenia ran przy użyciu komórek nabłonka piersi MCF10A zubożonych w TIP60. Implementacja technik obrazowania żywych komórek w naszym protokole pozwala nam analizować i wizualizować ruch pojedynczych komórek w czasie rzeczywistym i w czasie.

Obrazowanie na żywo migracji komórek nabłonka piersi po przejściowym wyczerpaniu TIP60

To badanie przedstawia dwie różne metody analizy inwazji i migracji komórek: test komory Boydena i test gojenia ran oparty na mikroskopie in vitro. Opisano protokoły tych dwóch eksperymentów oraz porównano ich zalety i wady.

Ocena procesu inwazji i migracji komórek: porównanie testu ran drapanych opartego na mikroskopie wideo i testu z komorą Boydena

Tutaj prezentujemy protokół do oceny wpływu peptydów na migrację komórek nabłonka oskrzeli. Metoda ta pozwala na szybkie i wysoce powtarzalne uzyskanie danych ilościowych na temat szybkości migracji komórek i zamykania ran.

Nowatorski test gojenia ran in vitro do oceny migracji komórek

Tutaj opisujemy procedurę testowania migracji komórek in vitro za pomocą automatycznego mikroskopu optycznego. Test zarysowania jest szeroko stosowany, w którym zamknięcie rysy następuje przez określony czas. Mikroskop optyczny umożliwia niezawodne i tanie wykrywanie migracji komórek.

Zoptymalizowany test zarysowań do testowania migracji komórek in vitro za pomocą zautomatyzowanej kamery optycznej

Obecny protokół opisuje zintegrowaną metodę badania migracji i inwazji komórek rakowych na jednej platformie w czasie rzeczywistym, zapewniając łatwą do odtworzenia i efektywną czasowo opcję badania mobilności i morfologii komórek.

Prosty przepływ pracy migracji/inwazji przy użyciu zautomatyzowanego imagera Live Cell

Tutaj prezentujemy protokół dla testu in vitro z użyciem pierwotnych fibroblastów oraz dla testu in vivo gojenia ran skóry na myszach. Oba testy są prostymi metodami oceny gojenia się ran in vitro i in vivo.

Test migracji zadrapań i komora grzbietowego fałdu skórnego do analizy gojenia się ran in vitro i in vivo

Ten artykuł opisuje metodę tworzenia ran w nabłonku żywej Clytia hemisphaerica medusa i obrazowania gojenia ran w wysokiej rozdzielczości in vivo. Dodatkowo przedstawiono technikę wprowadzania barwników i leków w celu zakłócenia procesów sygnalizacyjnych w komórkach nabłonka i macierzy zewnątrzkomórkowej podczas gojenia się ran.

Charakterystyka gojenia się ran nabłonkowych in vivo przy użyciu parzydełkowego organizmu modelowego Clytia hemisphaerica

Poznaj mikroskopowe metody oceny migracji komórek nabłonka podczas gojenia się ran in vitro. Technika ta umożliwia ilościową i jakościową analizę zachowania komórkowego oraz testowanie leków.

Mikroskopowe metody oceny migracji komórek nabłonka podczas gojenia się ran in vitro

Przeglądaj więcej filmów