June 13th, 2025
Opisujemy protokół wysokoprzepustowej metody klonowania, klonowania wahadłowego opartego na CRISPR (klonowanie wahadłowe CRISPR), który umożliwia transfer interesujących fragmentów DNA między wektorami bez konieczności amplifikacji fragmentów DNA metodą PCR.
Opisujemy nasz protokół dla metody klonowania o wysokiej przepustowości, CRISPRshuttle. Polega ona na przenoszeniu docelowych fragmentów DNA między wektorami bez konieczności amplifikacji fragmentów DNA metodą PCR. Istniejące techniki, takie jak infuzja bramy i klonowanie jednowektorowe, amplifikacja PCR. Takie podejście wymaga procedur specyficznych dla fragmentacji, w tym podstawowego projektu i walidacji wydzielania. Te tagi są pracochłonne i czasochłonne. Wahadłowiec CRISPR eliminuje PCR, jednocześnie przenosząc docelowe fragmenty DNA między wektorami do sekwencyjnych reakcji w probówkach. Metoda ta wykracza poza konieczność obchodzenia się z konkretnymi fragmentami, a tym samym przyspiesza konstruowanie próbek.
[Narrator] Na początek przygotuj mieszankę wzorcową dla określonej liczby reakcji trawienia, łącząc odczynniki pokazane na ekranie. Ułóż odpowiednio oznakowane rurki o pojemności 0,2 mililitra w aluminiowym bloku chłodzącym na lodzie. Przygotować mieszaninę wzorcową dla liczby N reakcji, mieszając odpowiednie ilości buforu CAS9 sgRNA 10 CAS9 i wody uzdatnionej DEPC. Dokładnie wymieszaj mieszankę główną i odkręć ją. Podwielokrotność 3,75 mikrolitra wzorca wymieszać do każdej probówki reakcyjnej. Dodaj 0,75 mikrolitra 0,03 mikromolowego plazmidu PLX 304 ORF do każdej dokładnie wymieszanej probówki i inkubuj probówki w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez godzinę. Przygotuj mieszankę główną, łącząc 0,14 mikrolitra 3,36 mikromolowego zlinearyzowanego pBIDC-UASC-pLXvect i 1,8 mikrolitra głównej mieszanki montażowej Gibsona. Dokładnie wymieszaj mieszankę główną i odkręć ją. Teraz podaczuj 1,94 mikrolitra wzorca do każdej probówki. Dodaj 1,66 mikrolitra rozszczepionego plazmidu CAS9 do każdej probówki. Dokładnie wymieszaj i inkubuj w temperaturze 50 stopni Celsjusza przez godzinę. Rozmrozić kompetentne komórki bakteryjne na lodzie. Porcję 10 mikrolitrów rozmrożonych komórek do każdej wstępnie schłodzonej probówki o pojemności 1,5 mililitra. Delikatnie wymieszaj 10 mikrolitrów właściwych ogniw z jednym mikrolitrem produktu montażowego Gibsona. Umieść probówki na lodzie na 30 minut. Szok termiczny probówek w temperaturze 42 stopni Celsjusza przez jedną minutę, a następnie schładzanie na lodzie przez dwie minuty. Dodaj 100 mikrolitrów podgrzanej pożywki SOC do każdej probówki i wstrząsaj z prędkością 250 obr./min przez godzinę w temperaturze 37 stopni Celsjusza. Na koniec umieść komórki na płytkach agarowych LB zawierających 15 mikrogramów na mililitr chloramfenikolu i inkubuj je przez noc w temperaturze 37 stopni Celsjusza. Na rysunku przedstawiono reprezentatywne wyniki analizy restrykcyjnej plazmidów UAS-cDNA/ORF wygenerowanych za pomocą systemu CRISPRshuttle. W tej analizie trawienie restrykcyjne 15 konstruktów UAS-cDNA/ORF z PVU2 wykazało, że wszystkie próbki wykazywały oczekiwane wzorce fragmentów w około 1072 parach zasad i 1820 parach zasad.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Niniejszy artykuł przedstawia protokół wysokowydajnej metody klonowania znanej jako CRISPR-based shuttle cloning (klonowanie CRISPRshuttle). Ta innowacyjna technika ułatwia transfer fragmentów DNA między wektorami bez konieczności amplifikacji PCR.