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Pegue uma placa de vários poços contendo uma cultura de células epiteliais de mamíferos.
Nos poços de teste, adicione um patógeno bacteriano junto com grânulos de polímero acoplados a proteínas de superfície bacteriana.
Nos poços de controle, adicione o patógeno e as esferas sem proteínas de superfície bacteriana. Incubar.
Nos poços de teste, os grânulos imitam a superfície bacteriana e competem com o patógeno pela ligação ao ácido fosfatídico da membrana celular epitelial, reduzindo a fixação bacteriana.
Nos poços de controle, os grânulos não afetam a fixação bacteriana.
Remova a mídia e lave com tampão para eliminar os componentes não ligados.
Incube com um detergente não iônico para lisar as células, liberando bactérias e grânulos ligados à membrana.
Pipetar o lisado para criar uma suspensão homogénea e diluir em série o homogeneizado utilizando tampão.
Transfira as diluições para placas de ágar, incube para permitir a formação de colônias e conte as colônias.
A placa de teste exibe menos colônias do que os controles, indicando interações bactéria-hospedeiro reduzidas.
Prepare o meio de infecção diluindo culturas bacterianas em DMEM incolor sem aditivos.
Pré-aquecido a 37 graus Celsius contendo 10% de volume a volume de suspensão de cordão. Para dar um MOI de 10, prepare um mililitro por poço e 10 a 20% de excesso de volume por amostra. Remova o meio antigo dos poços e lave as células HeLa cultivadas adicionando a cada poço um mililitro de PBS estéril pré-aquecido a 37 graus Celsius. Remova o PBS e adicione um mililitro de meio de infecção por poço. Adicione soluções contendo esferas de controle e bactérias como controles positivos e esferas de adesão e nenhuma bactéria como controles negativos.
Adicione DMEM contendo 0,1% Triton X 100 como controles de lise.
Incube a placa em uma incubadora de cultura de tecidos a 37 graus Celsius pelo tempo desejado.
As medições da adesão bacteriana são feitas uma hora após a infecção. Remova a mídia da camada de células e lave bem a camada de células com PBS pré-aquecido estéril para remover quaisquer células soltas. Lave pelo menos três a quatro vezes com um mililitro de PBS de cada vez. Lisar as células hospedeiras adicionando a cada poço um mililitro de uma solução estéril de Triton X 100 a volume a 1% em PBS. Incube a placa a 37 graus Celsius por cinco minutos.
Pipete cada amostra para cima e para baixo várias vezes antes de transferir o conteúdo de cada poço para tubos separados de 1,5 mililitro. Preparar diluições seriadas dez vezes das amostras em PBS estéril. Coloque 100 microlitros de cada amostra em ágar LB marinho e espalhe usando um espalhador de células. Otimize qual diluição colocar em placa, dependendo das cepas bacterianas e do ponto de tempo.
Para esta configuração experimental, uma diluição de 10 elevado a quinto ou 10 elevado a sexta vezes dará um número adequado de UFC. Incube as placas a 37 graus Celsius durante a noite. No dia seguinte, enumere as bactérias por contagem de colônias.