2 de junho de 2011
Dendríticas células antígenos captação e migrar para órgãos imunes a antígenos presentes processados às células T. Qdot nanocristais rotulagem fornece um sinal duradouro e estável fluorescente. Este permite o rastreamento de células dendríticas a diferentes órgãos, por microscopia fluorescente.
O objetivo geral deste procedimento é preparar células dendríticas para estudos de imagem utilizando nanocristais de ponto quântico. Isso é realizado primeiramente isolando células da medula óssea de fêmures e tíbias de camundongos. Em seguida, culturas de células da medula óssea são estabelecidas para facilitar a diferenciação celular em células dendríticas na presença de GM-CSF.
Em seguida, as células dendríticas são recuperadas dos cultivos de células da medula óssea após oito dias. O passo final do procedimento é corar as células com nanocristais fluorescentes Q. Por fim, células dendríticas intensamente coradas podem ser visualizadas por microscopia de fluorescência.
A principal vantagem do uso desta tecnologia em comparação com outros métodos, como o uso de células dendríticas marcadas com GFP, é que os nanocristais de ponto quântico (Q dot) mantêm sua fluorescência mesmo após coloração com solventes orgânicos como acetona. Este método pode ajudar a responder perguntas fundamentais para biólogos de células dendríticas, como as propriedades de migração dessas células em diferentes doenças ou no contexto de diversas patologias. A demonstração do procedimento de coloração será realizada por Maria Ali, aluna de pós-graduação do meu laboratório.
Após a eutanásia, dissecar cuidadosamente a tíbia e os fêmures de dois camundongos sem cortar as extremidades dos ossos. Em seguida, usar papel-toalha para remover todos os tecidos aderidos aos ossos, tomando cuidado para não quebrá-los. Em uma cabine de segurança biológica.
Encha uma placa de Petri de 35 milímetros com etanol a 70% e, em seguida, imerja os ossos no etanol por 10 minutos. Após a esterilização dos ossos, recupere-os do etanol e deixe-os secar ao ar por cinco minutos em uma placa de Petri nova. Agora, corte o fêmur ao meio e a tíbia por sua extremidade mais fina.
Infunda o interior dos ossos com um mililitro de meio RPMI utilizando uma seringa estéril. Colete a suspensão celular em um tubo de 15 mililitros e lave-a duas vezes com meio RPMI por meio de uma centrifugação de 10 minutos a 300 ×g a quatro graus Celsius em uma centrífuga com rotor de cesto oscilante. Após a última lavagem, ressuspenda as células em dois mililitros de tampão de lise de CK e incube por cinco minutos à temperatura ambiente para eliminar os glóbulos vermelhos.
Em seguida, adicione 13 mililitros de RPMI mais 10% de FBS e lave as células mais duas vezes neste meio com as mesmas configurações de centrífuga que antes. Conte as células e ajuste a concentração para duas vezes 10 à quinta células por mililitro. Com RPMI mais 10% de FBS, adicione G-M-C-S-F murino recombinante a uma concentração final de 20 nanogramas por mililitro.
Em seguida, adicione 10 mililitros dessa suspensão a uma placa de Petri estéril de qualidade microbiológica com 10 centímetros de diâmetro e cultive a suspensão celular em uma incubadora de dióxido de carbono. Três dias depois, adicione outros 10 mililitros de RPMI contendo 10% de FBS com 20 nanogramas por mililitro de G-M-C-S-F murino recombinante a cada uma das placas preparadas.
Três dias depois, recupere 10 mililitros de suspensão celular de cada placa de Petri, centrifugue as células nas mesmas condições e ressuspenda o pellet no mesmo volume de RPMI acrescido de 10% de FBS, conforme recuperado das placas de Petri, e reponha com nova G-M-C-S-F murina recombinante. Por fim, devolva a suspensão celular a cada placa de Petri original e cultive as células por mais dois dias no incubador de dióxido de carbono. Após oito dias de cultivo, recupere as células flutuantes e fracamente aderentes lavando as placas de Petri com meio fresco.
Em seguida, marque as células coletadas com o kit de marcação de células Q tracker 655, seguindo rigorosamente as instruções do fabricante, para rotular cinco vezes 10 à sexta potência de DCs derivadas da medula óssea murina com nanocristais Q numa concentração de 10 nanomolar. Primeiro, misture cinco microlitros de cada um dos componentes do kit, A e B, em um tubo eppendorf, e incube a mistura por cinco minutos à temperatura ambiente. Em seguida, adicione um mililitro de RPMI mais 10% de FBS e vortexe o tubo por 30 segundos.
Em seguida, adicione cinco vezes 10 à quinta potência de Dcs suspensas em 0,5 mililitros de RPMI mais 10% de FBS ao tubo einor e incube as células na solução D a 37 graus Celsius por 60 minutos. Em seguida, lave as células duas vezes em RPMI mais 10% de FBS nas mesmas condições que antes e re-suspenda o pellet em RPMI.
Esta figura mostra um exemplo de uma microfotografia fluorescente de dcs. Imediatamente após a marcação, uma gota de células marcadas foi depositada sobre uma lâmina de vidro e coberta com uma lamínula. Em seguida, as amostras foram avaliadas utilizando um microscópio fluorescente.
Nesta figura, pode-se observar uma microfotografia fluorescente de DCs após 48 horas, identificada como maturação in vitro. As DCs foram cultivadas durante 48 horas com 100 nanogramas por mililitro de LPS e 20 nanogramas por mililitro de TNF alfa em câmaras de cultura sobre lâminas, em incubadora de dióxido de carbono. Em seguida, as amostras foram lavadas com PBS, fixadas com acetona, contra-coloridas com DPI e avaliadas utilizando microscópio fluorescente.
Dcs marcadas maduras em cultura foram analisadas por citometria de fluxo. Células coradas com Q dot apresentam um sinal forte no canal FL3. Células coradas e não coradas com Q dot foram adicionalmente coradas com anticorpos específicos contra marcadores de maturação, CD86 e CD40, e controles de isotipo. As células foram então analisadas por citometria de fluxo. Além disso, os níveis de IL-6 e óxido nítrico foram determinados nos sobrenadantes de dcs maduras coradas com Q dot e controles.
Aqui é mostrada uma figura representativa de DCs marcadas em um tecido dissecado. DCs maduras foram injetadas intravenosamente em camundongos C57BL/6. Três dias depois, os camundongos foram sacrificados e os baços foram coletados.
Cortes de oito mícrons embutidos em OCT e congelados rapidamente foram preparados utilizando um criostato. As amostras foram então fixadas com acetona, contra-coloridas com DPI e avaliadas usando um microscópio de fluorescência. Após esses procedimentos.
Outros métodos, como apresentação de antígenos ou maturação com diferentes estímulos, podem ser realizados para responder perguntas adicionais, como a migração de células dendríticas em resposta a diferentes estímulos de maturação.
Este estudo descreve um procedimento para o preparo de células dendríticas para imagem utilizando nanocristais Qdot. O método permite a visualização de células dendríticas por microscopia de fluorescência, fornecendo informações sobre suas propriedades de migração.
A marcação de células dendríticas com nanocristais Qdot permite fluorescência estável e de longa duração para o rastreamento da migração de células imunes em modelos pré-clínicos. Essa abordagem auxilia na redução de riscos mecanicistas no desenvolvimento de imunoterapias, fornecendo visualização confiável da dinâmica de células apresentadoras de antígenos. O método aumenta a confiança preditiva na fase inicial de descoberta, permitindo a observação direta do comportamento de células dendríticas em sistemas relevantes para a doença.
Este método integra-se ao fluxo de trabalho de descoberta desde a validação inicial do alvo até o perfil imunológico pré-clínico, permitindo a visualização da dinâmica das células dendríticas como uma leitura funcional na triagem imunomodulatória.