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Estudando a excitabilidade de neurônios fluorescentes usando um grampo de patch de célula inteira
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Encyclopedia of Experiments Neuroscience
Studying the Excitability of Fluorescent Neurons using a Whole-Cell Patch Clamp

Estudando a excitabilidade de neurônios fluorescentes usando um grampo de patch de célula inteira

Protocol
541 Views
03:06 min
July 8, 2025
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Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Transcript

Pegue uma fatia coronal de camundongo transfectado imobilizada em uma câmara de gravação perfundida com aCSF.

A fatia contém uma população esparsa de neurônios piramidais expressando uma enzima alvo e uma proteína fluorescente.

Montar uma pipeta de registo composta por uma solução intracelular e um eléctrodo ligado a um amplificador para medir os sinais neuronais.

Identifique microscopicamente a área do tecido alvo e localize um neurônio fluorescente.

Aplique pressão positiva na pipeta para evitar o entupimento e avance-a para o neurônio-alvo.

A pressão positiva causa um leve recuo na membrana neuronal ao contato.

Libere a pressão, formando uma vedação firme entre a membrana e a ponta.

Defina o potencial de retenção em um valor negativo constante para estabilizar o neurônio.

Aplique uma breve pressão negativa para romper a membrana, conectando o citoplasma ao interior da pipeta e estabelecendo uma configuração de célula inteira.

Mude para o modo de pinça de corrente e aplique pulsos de corrente positiva, gerando potenciais de ação indicativos de excitabilidade neuronal.

Transfira uma fatia para a câmara de gravação usando uma pipeta Pasteur ou um pincel pequeno. Segure a fatia com uma harpa e perfunda-a com ACSF a uma taxa de 2 mililitros por minuto. Para corrigir um neurônio GFP-positivo, localize a área de interesse através do microscópio em 10x. Em seguida, encontre uma célula positiva para GFP usando o objetivo de 60x.

Em seguida, encha o eletrodo de registro com solução intracelular. Em seguida, coloque uma pipeta de vidro no porta-pipetas. Depois, coloque a ponta da pipeta no banho e concentre-se na ponta. Assim que a pipeta estiver no banho, aplique pressão positiva através do sistema de controle de contrapressão.

Aproxime-se da célula de interesse sob orientação visual, mantendo a contrapressão na pipeta. Após o aparecimento de uma pequena covinha na superfície da célula, libere a pressão. Neste ponto, uma vedação hermética com uma resistência maior que 1 gigaohm pode ser formada. Caso contrário, aplique uma leve pressão negativa para facilitar.

Enquanto a vedação está sendo formada, traga o grampo de tensão de retenção para 60 milivolts negativos. Uma vez que o selo gigaohm é formado, aplique um pulso de sucção para romper a membrana celular e entrar no modo de célula inteira. Quando estiver no modo de célula inteira, mude do clamp de tensão para o modo de clamp de corrente e comece a gravar.

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