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25.2:

Ovogenèse

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Oogenesis

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– [Homme] Chez l’homme, les œufs matures sont générés parle processus d’ovogenèse. L’ovogenèse commence au cours du développement embryonnairechez les ovaires femelles en formation. Ici, les cellules précurseures diploïdes,appelées individuellementOvogonium, entrent en mitoseet se divisent pour former des ovocytes primaires,chacun d’eux étant entouré de cellules de soutien. Ces ovocytes démarrent le premier stadede la méiose, la méiose I,qui se poursuit jusqu’à ce que les chromosomes maternelset paternels échangent des informations. À ce stade, la méiose s’arrête,en raison de facteurs inhibiteurs dérivésdes cellules de soutien. Le processus ne redémarre que pendant la puberté. Ici, les signaux du cycle menstruelprovoquent l’agrandissementd’un ovocyte principal et la réentrance dans la méiose I,produisant deux cellules haploïdesde tailles inégales. La plus grande cellule riche en cytoplasmeest appelée ovocyte secondaire,tandis que le premier corps polaire,plus petit, se dissout éventuellement. L’ovocyte secondaire entre brièvement dans la deuxième phasede la méiose, la méiose II,mais ce processus s’arrête encore. L’ovulation libère alors cette celluleet les cellules qui l’entourent, à partir de l’ovaire,et le complexe migrent dans une trompe de Fallope,où la fécondation a lieu si le sperme est présent. La méiose reprend après la fécondation et se termine parla division de l’ovocyte secondaire,formant un second corps polairesous-dimensionné, qui se dissipe de la même façon,et un ovule plus grand. Ce dernier est l’œuf mature haploïdedans lequel des noyaux distinctsdu père et de la mère sont temporairement visibles. Ainsi, l’ovogenèse ne produit qu’un seul ovule maturepour chaque ovocyte primairequi achève le processus avec succès.

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Ovogenèse

Chez les femmes, l’ovogenèse produit un ovocyte mature ou ovule pour chaque cellule précurseur qui entre dans la méiose. Ce processus diffère de deux façons uniques de la procédure équivalente de spermatogenèse chez les mâles. Tout d’abord, les divisions méiotiques pendant l’ovogenèse sont asymétriques, ce qui signifie qu’un grand ovocyte (contenant la plupart du cytoplasme) et un globule polaire mineur sont produits à la suite de la méiose I, et à nouveau après la méiose II. Puisque seuls les ovocytes formeront des embryons s’ils sont fécondés, cette répartition inégale du contenu cellulaire garantit qu’il y a suffisamment de cytoplasme et de nutriments pour nourrir les premiers stades du développement. Deuxièmement, pendant l’ovogenèse, la méiose “ s’arrête ” à deux points distincts : une fois pendant la croissance embryonnaire et une seconde fois pendant la puberté. Chez les mammifères, les ovocytes sont suspendus dans la prophase I jusqu’à la maturation sexuelle ; à ce point la méiose I continue sous l’influence hormonale jusqu’à ce qu’une cellule précurseur d’ovule soit libérée dans une trompe de Fallope. Au moment de l’ovulation, le précurseur sort de l’ovaire et, uniquement en cas de fécondation, il est stimulé pour achever la méiose II et former un ovocyte complet.

Ovogenèse, âge, et autres facteurs

Les défauts pendant l’ovogenèse peuvent avoir des conséquences graves. En particulier, les problèmes de ségrégation chromosomique pendant la méiose I ou la méiose II peuvent conduire à un embryon aneuploïde, ce qui signifie qu’il contient un nombre anormal de chromosomes. L’âge élevé augmente le risque pour une femme d’avoir un enfant présentant certains types d’aneuploïdie, comme le syndrome de Patau, caractérisé par des anomalies du système nerveux central, des retards de développement et une mortalité infantile, qui est causé par une copie supplémentaire du chromosome 13. Plusieurs explications pour cet “ effet d’âge ” ont été proposées, qui incluent la dégradation au fil du temps de l’appareil méiotique du fuseau (responsable de la division des chromosomes pendant la division), ou l’accumulation progressive de cellules anormales dans les ovaires. En conséquence, on offre généralement aux femmes âgées de 35 ans et plus des tests prénataux, tels que des tests sanguins, le dépistage de la clarté nucale par échographie, le prélèvement de villosités choriales ou l’amniocentèse, qui peuvent déterminer si un fœtus porte des anomalies chromosomiques.

Mis à part l’âge d’une femme, d’autres chercheurs étudient comment certaines maladies peuvent influencer l’ovogenèse et la qualité des ovocytes. L’une de ces affections qui suscite un intérêt croissant est l’endométriose, au cours de laquelle la muqueuse riche en sang qui s’accumule généralement dans l’utérus d’une femme avant les menstruations s’accumule ailleurs dans le corps, comme dans les kystes ovariens, le long du gros intestin ou sur la muqueuse de la cavité abdominale. Fait intéressant, les ovocytes prélevés auprès de femmes atteintes d’endométriose subissant une fécondation in vitro peuvent présenter des défauts dans l’appareil du fuseau méiotique ou des diminutions des taux de fécondation. La recherche sur cette maladie est en cours, mais certains scientifiques ont émis l’hypothèse que cette mauvaise qualité des ovocytes peut être le résultat d’une augmentation des protéines associées au système immunitaire ou des niveaux d’hormones altérés chez ces patientes.

Enfin, d’autres travaux ont été effectués pour déterminer l’effet des facteurs environnementaux sur l’ovogenèse, et leur relation à l’aneuploïdie. Le tabac à mâcher, l’usage d’hormones (en particulier chez les femmes âgées) et même l’exposition au bisphénol-A, un constituant de nombreux plastiques, ont tous été suggérés comme pouvant affecter l’ovogenèse négativement et, à cet égard, le processus de méiose.

Suggested Reading

Ghosh, Sujoy, Chang-Sook Hong, Eleanor Feingold, Papiya Ghosh, Priyanka Ghosh, Pranami Bhaumik, and Subrata Kumar Dey. “Epidemiology of Down Syndrome: New Insight Into the Multidimensional Interactions Among Genetic and Environmental Risk Factors in the Oocyte.” American Journal of Epidemiology 174, no. 9 (November 1, 2011): 1009–16. [Source]

Hultén, Maj A., Suketu Patel, Jon Jonasson, and Erik Iwarsson. “On the Origin of the Maternal Age Effect in Trisomy 21 Down Syndrome: The Oocyte Mosaicism Selection Model.” Reproduction 139, no. 1 (January 1, 2010): 1–9. [Source]

Loane, Maria, Joan K. Morris, Marie-Claude Addor, Larraitz Arriola, Judith Budd, Berenice Doray, Ester Garne, et al. “Twenty-Year Trends in the Prevalence of Down Syndrome and Other Trisomies in Europe: Impact of Maternal Age and Prenatal Screening.” European Journal of Human Genetics: EJHG 21, no. 1 (January 2013): 27–33. [Source]