Summary

Mätning nära plasmamembran och Global Intracellulär Dynamics Kalcium i Astrocyter

Published: April 26, 2009
doi:

Summary

Vi beskriver hur man mäter nära membranet och globala intracellulär dynamik kalcium i odlade astrocyter med total inre reflektion och epifluorescence mikroskopi.

Abstract

Hjärnan innehåller gliaceller. Astrocyter, en typ av stödjeceller celler, har länge varit kända för att ge en passiv stödjande roll till nervceller. Tyder dock allt tydligare att astrocyterna också aktivt kan delta i hjärnans funktion med hjälp av funktionella interaktioner med nervceller. Men många grundläggande aspekter av astrocyternas biologi är fortfarande kontroversiella, otydliga och / eller experimentellt outforskat. En viktig fråga är dynamiken i intracellulära kalcium transienter i astrocyter. Detta är relevant eftersom kalcium är väl etablerad som en viktig andra budbärare och eftersom det har föreslagits att astrocyternas kalcium höjder kan plötsligt frisätter sändare från astrocyter. Dock har det inte funnits någon detaljerad eller tillfredsställande beskrivning av nära plasmamembranet kalcium signalering i astrocyter. Total inre reflektion fluorescens (TIRF) mikroskopi är ett kraftfullt verktyg för att analysera fysiologiskt relevanta signalering händelser inom ca 100 nm i plasmamembranet av levande celler. Här använder vi TIRF mikroskopi och beskriver hur bildskärmen nära plasmamembranet och globala intracellulär dynamik kalcium nästan samtidigt. De ytterligare förfining och systematisk tillämpning av denna metod har potential att informera om de exakta detaljerna i astrocyternas kalcium signalering. En detaljerad förståelse av astrocyternas kalcium dynamik kan ge en grund för att förstå om, hur, när och varför astrocyter och nervceller genomgår kalcium-beroende funktionella interaktioner.

Protocol

Experimentella Den experimentella förfarande består av två viktiga delar som beskrivs i ett steg klokt sätt nedan. Del 1: Förbereda hippocampus astrocyternas KULTURER Kortfattat var blandade hippocampus astrocyternas-neuron kulturer prepareras med ett väletablerat protokoll 1,2,3. Vi optimerat proceduren att ge friska odlade astrocyter. Alla förfaranden som anges nedan bör ske i en steril miljö som ett laminärt flöde…

Discussion

Det är väl etablerat att astrocyter visa intracellulär kalcium höjder. Dessa uppträda spontant, kan utlösas av nervaktivitet eller genom tillämpning av agonister för att aktivera receptorer på astrocyternas ytan 11. En viktig och kontroversiell fråga är om astrocyternas intracellulär kalcium förhöjningar kan utlösa frisättning av signalmolekyler som aktiverar receptorer på nervceller 11, 12. Detta är kontroversiellt eftersom det har belägg för och emot denna uppfattning, vilket betonas i de översyn…

Acknowledgements

Detta arbete stöddes av Uehara Memorial Foundation i Japan (till ES) samt Whitehall Foundation, National Institute of neurologiska sjukdomar och stroke samt en Stein-Oppenheimer Endowment Award (till BSK).

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
VWR® Micro Cover Slips, Round, No. 1 Tool VWR 48380-068  
Poly-D-lysine hydrobromide Reagent Sigma P0899  
Laminin from Engelbreth-Holm-Swarm murine sarcoma basement membrane Reagent Sigma L2020  
Earle’s Balanced Salt Solution (EBSS) (1X), liquid Reagent Invitrogen 14155-063  
Minimum Essential Medium (MEM) (1X), liquid Contains Earle’s salts, but no L-glutamine or phenol red Reagent Invitrogen 51200-038  
Penicillin-Streptomycin liquid Reagent Invitrogen 15140-122  
Sodium pyruvate solution Reagent Sigma S8636  
HEPES solution 1 M Reagent Sigma H0887  
N-2 Supplement (100X), liquid Reagent Invitrogen 17502-048  
Horse Serum, Heat-Inactivated Reagent Invitrogen 26050-088  
PAPAIN-022 Reagent Worthington LK003178  
Neurobasal™ Medium (1X) Liquid without Phenol Red Reagent Invitrogen 12348-017  
B-27 Serum-Free Supplement (50X), liquid Reagent Invitrogen 17504-044  
L-Glutamine-200 mM (100X), liquid Reagent Invitrogen 25030-149  
Cell Strainers Tool BD Biosciences 352350  
BD Falcon Multiwell Flat-Bottom Plates with Lids, Sterile Tool BD Biosciences 353046  
NaCl Reagent Sigma S7653  
KCl Reagent Sigma P3911  
CaCl2 hexahydrate Reagent Sigma 21108  
MgCl2 hexahydrate Reagent Sigma M2670  
HEPES free acid Reagent Sigma H3375  
D-(+)-glucose Reagent Sigma G7528  
Fluo-4, AM 1 mM solution in DMSO Reagent Invitrogen F-14217  
Pluronic® F-127 20% solution in DMSO Reagent Invitrogen P-3000MP  
Immersion Oil TYPE DF Microscope Cargille 16242  
Open chamber for 25 mm round coverslips, 100 μl volume Tool WARNER Instruments 64-0362 (RC-21BDW)  
P-2 platform for Series 20 chambers, non-heater Tool WARNER Instruments 64-0278 (P-2)  
FluoSpheres carboxylate-modified microspheres, 0.1 μm, yellow-green fluorescent (505/515) 2% solids Reagent Invitrogen F8803  

References

  1. Richler, E., Chaumont, S., Shigetomi, E., Sagasti, A., Khakh, B. S. An approach to image activation of transmitter-gated P2X receptors in vitro and in vivo. Nature Methods. 5, 87-93 (2008).
  2. Granseth, B., Odermatt, B., Royle, S. J., Lagnado, L. Clathrin-mediated endocytosis is the dominant mechanism of vesicle retrieval at hippocampal synapses. Neuron. 51, 773-786 (2006).
  3. Nunez, J. Primary culture of hippocampal neurons from P0 newborn rats. J Vis Exp. 19, (2008).
  4. Steyer, J. A., Almers, W. A real-time view of life within 100 nm of the plasma membrane. Nat Rev Mol Cell Biol. 2, 268-275 (2001).
  5. Jaiswal, J. K., Fix, M., Takano, T., Nedergaard, M., Simon, S. M. Resolving vesicle fusion from lysis to monitor calcium-triggered lysosomal exocytosis in astrocytes. Proc Natl Acad Sci U S A. 104, 14151-14156 (2007).
  6. Araque, A., Carmignoto, G., Haydon, P. G. Dynamic signalling between astrocytes and neurons. Annu Rev Physiol. 63, 795-813 (2001).
  7. Haydon, P. G. GLIA: listening and talking to the synapse. Nat Rev Neurosci. 2, 185-193 (2001).
  8. Bowser, D. N., Khakh, B. S. ATP excites interneurons and astrocytes to increase synaptic inhibition in neuronal networks. J Neurosci. 24, 8606-8620 (2004).
  9. Bowser, D. N., Khakh, B. S. Two forms of astrocyte single vesicle exocytosis imaged with total internal reflection fluorescence microscopy. Proc Natl Acad Sci U S A. 104, 4212-4217 (2007).
  10. Bowser, D. N., Khakh, B. S. Vesicular ATP is the predominant cause of intercellular calcium waves in astrocytes. J Gen Physiol. 129, 485-491 (2007).
  11. Agulhon, C. What is the role of astrocyte calcium in neurophysiology. Neuron. 59, 932-946 (2008).
  12. Barres, B. A. The mystery and magic of glia: a perspective on their roles in health and disease. Neuron. 60, 430-440 (2008).
  13. Lee, S. Y., Haydon, P. G. Astrocytic glutamate targets NMDA receptors. J Physiol. 581, 887-888 (2007).
  14. Shigetomi, E., Bowser, D. N., Sofroniew, M. V., Khakh, B. S. Two forms of astrocyte calcium excitability have distinct effects on NMDA receptor-mediated slow inward currents in pyramidal neurons. J Neurosci. 28, 6659-6663 (2008).
  15. Cahoy, J. D. A transcriptome database for astrocytes, neurons, and oligodendrocytes: a new resource for understanding brain development and function. J Neurosci. 28, 264-278 (2008).

Play Video

Cite This Article
Shigetomi, E., Khakh, B. S. Measuring Near Plasma Membrane and Global Intracellular Calcium Dynamics in Astrocytes. J. Vis. Exp. (26), e1142, doi:10.3791/1142 (2009).

View Video