Summary
Estabelecemos um modelo murino de infecção relacionada ao cateter (IRC) associada a C.albicans, no qual o biofilme se forma no cateter, e a interação entre C.albicans e hospedeiro correlaciona-se bem com a IRC clínica. Esse modelo ajuda a selecionar terapias para IRC associada ao biofilme de C.albicans , estabelecendo uma base para a transformação clínica.
Abstract
A infecção relacionada ao cateter (IRC) é uma infecção nosocomial comum causada por candida albicans durante o implante do cateter. Tipicamente, biofilmes são formados na superfície externa do cateter e levam a infecções disseminadas, que são fatais para os pacientes. Não há prevenção e manejo de tratamento efetivos nas clínicas. Portanto, é urgente o estabelecimento de um modelo animal de IRC para a triagem pré-clínica de novas estratégias para sua prevenção e tratamento. Neste estudo, um cateter de polietileno, um cateter médico amplamente utilizado, foi inserido no dorso dos camundongos BALB/c após a depilação. Candida albicans ATCC MYA-2876 (SC5314) expressando proteína fluorescente verde reforçada foi subsequentemente inoculado na superfície da pele ao longo do cateter. Intensa fluorescência foi observada na superfície do cateter sob microscópio fluorescente 3 dias depois. Biofilmes maduros e espessos foram encontrados na superfície do cateter por microscopia eletrônica de varredura. Esses resultados indicaram a adesão, colonização e formação de biofilme de candida albicans na superfície do cateter. A hiperplasia da epiderme e a infiltração de células inflamatórias nos espécimes cutâneos indicaram as alterações histopatológicas da pele associada à IRC. Em resumo, um modelo de CRI de camundongo foi estabelecido com sucesso. Espera-se que esse modelo seja útil na pesquisa e desenvolvimento do manejo terapêutico da IRC associada a candida albicans .
Introduction
Nos últimos anos, com o desenvolvimento e aplicação de materiais biomédicos, infecções relacionadas a implantes vêm emergindo como problemas clínicos difíceis 1,2. Com a ampla aplicação de cateteres médicos em clínicas, o número de infecções e mortes relacionadas é enorme a cada ano 3,4. As vias de infecção comuns de uma infecção relacionada ao cateter (IRC) incluem: (1) patógenos na superfície da pele infiltram-se no corpo e aderem à superfície externa do cateter 5,6,7; (2) patógenos derivados de operações assépticas inadequadas invadem, aderem e colonizam o cateter; (3) patógenos na circulação sanguínea aderem e colonizam no cateter; (4) drogas contaminadas por microrganismos patogênicos.
A Candida é a terceira causa mais comum de IRC 8,9. É muito provável que cause infecção da corrente sanguínea e outras candidíase invasiva com risco de vida depois que biofilmes são formados na superfície do implante. O prognóstico é ruim e a taxa de mortalidade é alta2. Relata-se que biofilmes são formados na superfície do cateter dentro de 2 semanas após a inserção venosa central e no lúmen do cateter algumas semanas depois10,11.
Biofilmes de Candida albicans (C. albicans) formados em cateteres médicos exibem uma rede de dupla camada composta por levedura, estroma e micélio12,13. A formação de biofilmes de C. albicans não é apenas uma chave para a resistência a drogas e evasão imune13, mas também vital para a produção de esporos disseminados, o que leva a uma maior infecção hematogênica 2,12 e resulta em consequências mais graves e até fatais. A IRC associada a C. albicans é uma importante causade infecções fúngicas clínicas da corrente sanguínea7,14, e mais de 40% dos pacientes com infecção por C. albicans no cateter venoso central evoluirão para bacteremia15.
De acordo com a Infectious Disease Society of America, o tratamento recomendado da Candida CRI inclui (1) remoção do cateter infectado; (2) submeter os pacientes a uma terapia antifúngica sistêmica de 14 dias8; (3) reimplante de novo cateter4. No entanto, em aplicações clínicas, os cateteres não podem ser totalmente removidos às vezes. Alguns pacientes só podem ser tratados com antibióticos sistêmicos e terapia antimicrobiana de bloqueio, acompanhados de fortes efeitos colaterais16,17.
Os modelos animais existentes de C. albicans, como o modelo de candidíase orofaríngea, o modelo de candidíase vaginal e o modelo de infecção sistêmica invasiva causada por candidíase18,19, não podem se correlacionar bem com a IRC clínica. Portanto, neste estudo, um modelo de IRC associado a C. albicans em camundongos foi estabelecido. Cateteres de polietileno de uso clínico comum foram utilizados como implantes subcutâneos20,21, e C. albicans foi inoculado na superfície da pele para simular a adesão de C. albicans aos cateteres médicos e a formação de biofilmes.
Esse modelo tem sido utilizado com sucesso em nosso laboratório para rastrear o efeito anti-biofilme de diferentesterapêuticas22. Além disso, devido à detecção de defasagem de C. albicans após infecção por cateter, uma cepa de C. albicans contendo proteína fluorescente verde reforçada (EGFP) foi construída e inoculada em camundongos para facilitar a observação intuitiva das colônias e biofilmes de C. albicans no cateter implantado.
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Protocol
Os animais experimentais, camundongos BALB/c machos (12-16 g), foram adquiridos no Laboratory Animal Center, Xi'an Jiaotong University Health Science Center. Todos os procedimentos foram aprovados pelo Comitê Institucional de Ética Animal da Universidade Xi'an Jiaotong com o número de licença SCXK (Shaanxi) 2021-103.
1. Preparação do tampão e do equipamento
- Transfect cepas de C. albicans com plasmídeo de alta expressão pCaExp.
- Compre C. albicans (SC5314) da ATCC. Obter a cepa fluorescente de alta expressãoEGFP 22 transfectando C. albicans com um plasmídeo de alta expressão pCaExp contendo o quadro completo de leitura aberta do gene EGFP (o mapa do plasmídeo é mostrado na Figura 1) e usá-lo para experimentos subsequentes.
- Cultura de cepas transfectadas de C. albicans .
- Selecionar colônias monoclonais de cepa fluorescente de C. albicans a partir da placa de meio peptona dextrose (YPD) do extrato de levedura e cultura durante a noite (30 °C e 220 rpm) em 5 mL de meio líquido YPD (YPD + 50 μg/mL carbenicilina).
- Ressuspender C . albicans em solução salina normal após centrifugação a 400 x g por 5 min no TR.
- Ajustar a concentração da suspensão de C. albicans para 1 x 108 células/mL comparando a turbidez ao padrão de McFarland de 0,5.
- Preparar os instrumentos cirúrgicos.
- Certifique-se de autoclavar todos os instrumentos cirúrgicos (tesoura, pinça, pinça hemostática, porta-agulhas, agulhas de sutura) a 121°C por 30 min. São utilizados cateteres estéreis de polietileno (diâmetro interno: 0,28 mm; diâmetro externo: 0,63 mm).
OBS: Os cateteres utilizados neste estudo foram esterilizados com gás óxido de etileno e a embalagem foi aberta em mesa ultralimpa exposta aos raios UV por mais de 30 min. Antes do implante em camundongos, os cateteres foram imersos em etanol 75% para evitar contaminação.
- Certifique-se de autoclavar todos os instrumentos cirúrgicos (tesoura, pinça, pinça hemostática, porta-agulhas, agulhas de sutura) a 121°C por 30 min. São utilizados cateteres estéreis de polietileno (diâmetro interno: 0,28 mm; diâmetro externo: 0,63 mm).
2. Estabelecimento de um modelo de CRI de rato
OBS: O procedimento cirúrgico é mostrado na Figura 2.
- Aclimatar 30 camundongos BALB/c (12-16 g, machos) em condições específicas livres de patógenos (FPS) com livre acesso a água e alimento e 12 h-12 h alternando ciclo claro e escuro.
- Divida aleatoriamente 30 camundongos BALB/c em três grupos (n = 10 camundongos/grupo): (A) grupo controle normal; (B) grupo cateter (cateteres implantados sem C. albicans); (C) Grupo modelo (cateteres implantados com C. albicans).
- Anestesiar os camundongos com isoflurano a 1-4% e colocá-los em uma mesa cirúrgica em decúbito ventral. A perda do reflexo de retificação e a ausência de resposta à estimulação dos pododáctilos confirmam o sucesso da anestesia. Remover os cabelos e esterilizar o sítio cirúrgico com três rodadas alternadas de iodóforo ou clorexidina e esfoliação com álcool.
- Deixe os ratos no grupo de controle normal sem qualquer tratamento e forneça acesso livre a comida e água.
- Para os camundongos dos grupos cateter e modelo, manter a anestesia com isoflurano a 3%. Confirmar a profundidade anestésica adequada pela ausência de resposta ao pinçamento dos dedos e ajustar a concentração de isoflurano conforme necessário.
- Para os camundongos do grupo cateter, insira por via intradérmica uma agulha de seringa estéril de 1 mL na área depilada de trás para fazer um furo. Insira um cateter (cerca de 1 cm de comprimento) no orifício depois de remover a agulha da seringa.
- Para os camundongos do grupo modelo, pipetar 20 μL de suspensão de C. albicans na área de retrodepilação para simular o comensal de C. albicans na pele.
- Após a absorção da solução pela pele, inserir um cateter na área retrodepilada com os mesmos procedimentos descritos no passo 2.5.
- Pipetar mais 20 μL de suspensão de C. albicans ao longo do cateter para o tecido para simular C. albicans no meio externo.
- Fixar os cateteres com fita adesiva e gaze e retornar os camundongos às gaiolas para alimentação. Ao final do tratamento, injetar meloxicam (4 mg/kg) por via subcutânea como analgesia por três dias consecutivos.
NOTA: Após a cirurgia, os camundongos foram cuidadosamente alimentados com água e comida. Os camundongos foram monitorados duas vezes ao dia. Os camundongos foram eutanasiados por um método aprovado pela IACUC se apresentassem dificuldades alimentares, perda de peso significativa (10-20%) e hipotermia.
3. Avaliação do modelo CRI
- Após 3 dias, anestesiar os camundongos com isoflurano a 3% e sacrificá-los por deslocamento cervical. Coletar os cateteres e amostras de tecido cutâneo da parte de trás dos camundongos.
- Observar C. albicans e biofilmes no cateter por microscopia eletrônica de varredura.
- Imergir os cateteres em solução de glutaraldeído a 2,5% a 4 °C por 48 horas. Enxaguar os cateteres com PBS estéril três vezes.
- Fixar os cateteres com ácido ósmico a 1% por 3 h e enxaguar com PBS estéril três vezes.
- Desidratar as células dos cateteres em solução de etanol gradiente com concentrações crescentes (50%, 70%, 80%, 90% e 100%, 15 min/gradiente).
- Imergir os cateteres em álcool terc-butílico três vezes (30 min cada vez).
- Congele rapidamente os cateteres em nitrogênio líquido e liofilize a amostra em um liofilizador de acordo com as instruções do fabricante.
- Revestir as amostras do cateter com ouro de 10 nm por deposição de feixe de íons.
- Observar a presença de C. albicans e seu biofilme na superfície do cateter de cada grupo em microscópio eletrônico de varredura (em condições de alto vácuo, 1,5 kV) e registrar as imagens em cada grupo.
- Observar C. albicans no cateter por microscopia de fluorescência.
- Imergir os cateteres em solução de paraformaldeído a 4% para fixação a 4 °C por 48 h.
- Observar a presença de C. albicans e seu biofilme na superfície do cateter de cada grupo por meio de um microscópio de fluorescência sob excitação de 484 nm e registrar as imagens em cada grupo.
NOTA: A ampliação é de 400x. A fluorescência de Candida albicans pode ser observada com excitação a 490 nm e emissão a 510 nm.
- Observar C. albicans residindo na pele de camundongos.
- Imergir os tecidos cutâneos dorsais de camundongos em solução de paraformaldeído a 4% para fixação a 4 °C por 48 h.
- Desidratar os tecidos dorsais da pele em solução de etanol gradiente com concentrações crescentes (50%, 70%, 80%, 90% e 100%, 15 min/gradiente).
- Incorporar os tecidos cutâneos dorsais desidratados em parafina a 55-60 °C. Preste atenção à temperatura para evitar tecidos quebradiços. Para remover o maior número possível de impurezas, repita este passo três vezes (30 min cada).
- Seccionar os tecidos dorsais da pele (espessura = 5 μm) com micrótomo.
- Desencenar as seções de parafina mergulhando as lâminas em xileno duas vezes por 20 min.
- Reidratar os trechos por eluição com etanol gradiente (etanol absoluto, etanol 90%, etanol 75%, água) por 5 min de cada vez.
- Manchar as secções com ácido periódico imergindo a secção na solução de ácido periódico durante 15 minutos antes de lavar com água corrente uma vez e água destilada duas vezes.
- Manchar as secções com uma solução corante de divisas (de acordo com as instruções do fabricante) durante 30 minutos no escuro e enxaguar as secções em água corrente durante 5 minutos.
- Imergir os cortes em solução de hematoxilina por 3-5 min antes de lavar com água corrente (2-3 min), solução diferenciada (5-10 min) e água corrente, respectivamente.
- Imergir as seções em etanol três vezes (5 min cada) e xileno duas vezes (5 min cada) antes de selar a seção com goma neutra.
- Observe as imagens do espécime com um microscópio e analise os resíduos de C. albicans na pele de camundongos.
OBS: A ampliação é de 10x para a ocular e 4x ou 10x para a objetiva.
- Observar as alterações histopatológicas nos tecidos cutâneos dorsais.
- Imergir os tecidos cutâneos dorsais em solução de paraformaldeído a 4% para fixação a 4 °C durante 48 horas. Desidratar os tecidos dorsais da pele em solução de etanol gradiente com concentrações crescentes (50%, 70%, 80%, 90% e 100%, 15 min/gradiente).
- Incorporar os tecidos cutâneos dorsais desidratados em parafina, conforme descrito no passo 3.4.3.
- Seccionar os tecidos dorsais da pele (espessura = 5 mm) com micrótomo.
- Desencenar as seções de parafina mergulhando as lâminas em xileno duas vezes por 20 min.
- Reidratar os trechos por eluição com etanol gradiente (etanol absoluto, etanol 90%, etanol 75%, água) por 5 min de cada vez.
- Manchar os cortes com hematoxilina por 4 min antes de enxaguar com água da torneira para remover a cor da boia.
- Diferenciar o espécime com solução de etanol de ácido clorídrico a 1% antes de enxaguar as lâminas com água corrente.
- Imergir o espécime em etanol 85% e 95% por 5 min e corá-los com solução de eosina por 3 min.
- Desidratar o espécime mergulhando-o em etanol gradiente (70%, 90%, 95% e 100%) e xileno por 2 min cada.
- Selar o espécime com resina neutra.
- Observe as imagens do espécime com um microscópio e analise as alterações patológicas.
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Representative Results
A C. albicans e os biofilmes nos cateteres puderam ser observados pela MEV. Como mostrado na Figura 322, a superfície dos cateteres de polietileno do grupo de cateteres era lisa e nenhum microrganismo patogênico aderido foi observado. Entretanto, biofilmes maduros e densos de C. albicans foram visíveis na superfície dos cateteres de polietileno do grupo modelo, indicando que C. albicans foi capaz de colonizar e formar biofilmes na superfície do cateter em camundongos nas condições experimentais. Além disso, os resultados da microscopia de fluorescência confirmaram ainda mais as conclusões acima (Figura 4)22. Não houve fluorescência óbvia na superfície dos cateteres de polietileno no grupo cateter. No entanto, forte fluorescência emitida por células aderentes de C. albicans foi visível na superfície do cateter no grupo modelo. Isso indicou que um grande número de células de C. albicans aderiu à superfície dos cateteres, o que demonstrou o sucesso da construção de modelos de IRC relacionados ao biofilme de C. albicans em camundongos.
A fim de verificar a infecção do tecido cutâneo de camundongos de forma mais intuitiva, foi realizada a análise pela coloração de Sheff Periodate. Detecta os carboidratos das células fúngicas, o que é comumente utilizado em pesquisas clínicas (Figura 5)22. O tecido cutâneo do grupo controle e cateter normal foi corado negativamente pelo ácido periódico de Schiff (PAS), indicando ausência de células de C. albicans nos tecidos. Um pequeno número de células de C. albicans coradas com PAS positivo foi observado no grupo modelo, validando ainda mais a simulação bem-sucedida de invasão e adesão relacionadas a C. albicans.
Em seguida, as alterações patológicas em tecidos cutâneos de camundongos induzidas por C. albicans foram avaliadas por análise histopatológica. Como mostrado na Figura 622, a camada epidérmica estava significativamente espessada e estendida para a parte interna da pele no grupo modelo. A infiltração da inflamação também foi visível, indicando que a infecção por C. albicans causou alterações patológicas óbvias no tecido da pele de camundongos. A camada da epiderme, a camada da derme, as glândulas sebáceas, os folículos pilosos e outras estruturas estavam claras e completas no grupo do cateter. Não foram observados edema e infiltração de inflamação, semelhante ao grupo controle normal. Esses resultados indicaram que a inserção isolada do cateter não causou alterações óbvias no tecido cutâneo. As alterações patológicas nos tecidos do grupo modelo resultaram da infecção causada por C. albicans. Em resumo, os resultados validam o estabelecimento bem-sucedido de um modelo de camundongo CRI associado ao biofilme de C. albicans .
Figura 1: Atlas do plasmídeo pCaExp. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 2: Esquema mostrando o procedimento do modelo de camundongos CRI associados a C.albicans. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 3: MEV na superfície do cateter em cada grupo. (A) Grupo cateter; (B) Grupo modelo (1000x, barra de escala = 50 μm; 5000x, barra de escala = 10 μm). Esse valor foi modificado com permissão de Mo et al.22. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 4: Microscopia de fluorescência da superfície do cateter em cada grupo. (A) Grupo cateter; (B) Grupo modelo (barra de escala = 100 μm). Esse valor foi modificado com permissão de Mo et al.22. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 5: Coloração H&E da pele posterior de camundongos em cada grupo. (A) Grupo cateter; (B) Grupo modelo; (C) Grupo controle (40x, barra de escala = 400 μm; 100x, barra de escala = 200 μm). Esse valor foi modificado com permissão de Mo et al.22. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 6: Coloração PAS da pele posterior de camundongos em cada grupo. (A) Grupo cateter; (B) Grupo modelo; (C) Grupo controle (40x, barra de escala = 400 μm; 100x, barra de escala = 200 μm). Espessamento significativo e extensão da camada epidérmica para a parte interna da pele podem ser vistos no grupo modelo (retângulos vermelhos). Esse valor foi modificado com permissão de Mo et al.22. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
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Discussion
A IRC é uma das infecções hospitalares mais comuns na práticaclínica23. Patógenos nos anexos cutâneos, como epiderme, glândulas sebáceas e folículos pilosos, são possíveis causas de IRC23,24. A Candida é o terceiro maior patógeno causador da IRC, sendo a Candida albicans o tipo mais comum de infecção por biofilme25,26. Portanto, nosso objetivo foi construir um modelo animal relevante de IRC relacionada ao biofilme de Candida albicans, a fim de apoiar o tratamento e a prevenção da IRC relacionada.
Para a construção do modelo de IRC, uma pequena quantidade de C. albicans foi adicionada à pele dorsal de camundongos, o que simula a situação clínica em que parte da C. albicans não pode ser totalmente erradicada nos tecidos profundos e apêndices da pele por esterilização de rotina. Após o implante do cateter, C. albicans foi reinoculada para mimetizar a presença de C. albicans no meio externo durante a cirurgia.
Neste estudo, um ponto de tempo de 3 dias foi selecionado para a construção do modelo, que é menor do que o dos modelos animais tradicionais relacionados ao biofilme de C. albicans 18,27 devido à dificuldade na formação do biofilme. Após a infecção, a adesão de C. albicans e a formação de biofilme foram visíveis na superfície do cateter neste modelo, o que foi comprovado pelos resultados da microscopia eletrônica de varredura e fluorescência (Figura 3 e Figura 4). Isso pode ser devido à concentração de C. albicans neste estudo ter sido de 1 × 10a 8 UFC/mL, que foi muito superior à de outros modelos animais18,27. Além disso, a pele ao redor do cateter está em constante contato com o meio externo. Para simular os ambientes extremos que a IRC pode encontrar, C. albicans foi inoculada novamente após a cirurgia.
A recorrência da infecção é frequentemente causada por patógenos que permanecem nos tecidos circunvizinhos23,28,29. Portanto, a presença ou ausência de patógenos nos tecidos é importante para a IRC. Neste trabalho, a coloração com PAS foi realizada para investigar os resíduos de C. albicans nos tecidos cutâneos. Esse método também pode ser usado para avaliar o efeito de depuração de novas drogas terapêuticas ou métodos para IRC.
Em conclusão, uma cepa de Candida albicans com eGFP foi usada para construir um modelo de CRI de camundongo para facilitar a observação intuitiva da colonização de Candida albicans em cateteres. Essa cepa também pode ser usada para avaliar a interação entre Candida albicans e células hospedeiras, por exemplo, a invasão e adesão de Candida albicans ao hospedeiro, o efeito terapêutico anti-Candida albicans e a resposta imune. Além disso, um método de inoculação em duas etapas foi usado para simular patógenos derivados do ambiente externo e do corpo. Vale ressaltar que não foi realizada cultura microbiana subsequente após a infecção. A presença de biofilmes é um fator importante na baixa sensibilidade das culturas 30,31,32. Relatos prévios sugerem que a cultura microbiana após a infecção apresentou baixa sensibilidade, especificidade e acurácia 30,31,32,33,34. Em vez disso, a presença de biofilmes no implante é um índice mais confiável. Portanto, microscopia eletrônica de varredura e microscopia de fluorescência foram utilizadas neste estudo para visualizar e identificar Candida albicans formando biofilmes.
No entanto, esse modelo não simulou a interação entre a imunidade enfraquecida do paciente e a infecção por Candida albicans observada em clínicas. Se o modelo pudesse considerar os tratamentos imunocomprometidos (como injeções contínuas de glicocorticoides)35 antes da inoculação de Candida albicans , seria possível simular melhor as infecções que ocorrem em situações clínicas.
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Disclosures
Os autores declaram não ter interesses financeiros ou relações pessoais concorrentes conhecidos que possam ter influenciado o trabalho relatado neste artigo.
Acknowledgments
Somos gratos pelo apoio financeiro da Fundação de Ciências Naturais da Província de Shaanxi (número de concessão 2021SF-118) e da Fundação Nacional de Ciências Naturais da China (números de concessão 81973409, 82204631).
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 0.5 Mactutrius turbidibris | Shanghai Lujing Technology Co., Ltd | 5106063 | |
| 2.5% glutaraldehyde fixative solution | Xingzhi Biotechnology Co., Ltd | DF015 | |
| 4 °C refrigerator | Electrolux (China) Electric Co., Ltd | ESE6539TA | |
| Agar | Beijing Aoboxing Bio-tech Co., Ltd | 01-023 | |
| Analytical balances | Shimadzu | ATX124 | |
| Autoclaves Sterilizer | SANYO | MLS-3750 | |
| Butanol | Tianjin Chemio Reagent Co., Ltd | 200-889-7 | |
| Carbenicillin | Amresco | C0885 | |
| Eclipse Ci Nikon upright optical microscope | Nikon | Eclipse Ts2-FL | |
| Glucose | Macklin | D823520 | |
| Inoculation ring | Thermo Scientific | 251586 | |
| Isoflurane | RWD | 20210103 | |
| Paraformaldehyde | Beyotime Biotechnology | P0099 | |
| PAS dye kit | Servicebio | G1285 | |
| Peptone | Beijing Aoboxing Bio-tech Co., Ltd | 01-001 | |
| Polyethylene catheter | Shining Plastic Mall | PE100 | |
| RWD R550 multi-channel small animal anesthesia machine | RWD | R550 | |
| SEM | Hitachi | TM-1000 | |
| Temperature incubator | Shanghai Zhichu Instrument Co., Ltd | ZQTY-50N | |
| Ultrapure water water generator | Heal Force | NW20VF | |
| Ultrasound machine | Do-Chrom | DS10260D | |
| Xylene | Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd | 10023428 | |
| Yeast extract | Thermo Scientific Oxoid | LP0021B |
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