Summary

לשעבר אובו העובר עוף התרבות מתאים ליישומים הדמיה microsurgery מערכת

Published: October 23, 2010
doi:

Summary

במאמר זה, אנו מציגים מתודולוגיה פשוטה כדי לאפשר לטווח ארוך<em> לשעבר אובו</em> העובר העופות תרבות. טכניקה זו היא אידיאלית עבור ניסויים האורך הדורשים נגישות אופטי מלא ו / או תחבורה סטרילי בעוברים העופות.

Abstract

הבנת יחסי הגומלין בין גורמים גנטיים microenvironmental כי ההתפתחות העוברית כונן רגיל פגום מהותית על גילוי אסטרטגיות טיפוליות חדשות. התקדמויות טכנולוגיית הדמיה אפשרו חקירה כמותית של הארגון והתבגרות של התוכנית הגוף, אבל המורפוגנזה עובריים בשלב מאוחר יותר הוא פחות ברור. עוברי עוף הם בעלי חיים בעלי חוליות אטרקטיבי מודל המערכת עבור יישום זה בגלל קלות של תרבות מניפולציה כירורגית. עוברי מוקדם יכול להיות מתורבת לזמן קצר על טבעות נייר סינון, המאפשר גישה אופטיים המלא ל דפוסים התא מחקרים 1,2 הגורל. לימוד תהליכים התפתחותיים מתקדמות כגון המורפוגנזה לב מבוצעים באופן מסורתי דרך חלון של קליפת 3-5, אבל הטכניקה הזו מגבילה גישה אופטית בשל גודל חלון. אנחנו קודם לכן פיתחו שיטה פשוטה לתרבות עוברים כל לשעבר אובו על סירות לשקול משושה עד 10 ימים, מה שאיפשר הדמיה ברזולוציה גבוהה באמצעות אולטרסאונד 6,7. תרבויות אלו היו קשים בתחבורה, להגביל את סוגי כלי הדמיה עבור ניסויים לחיות. כאן אנו מציגים שיפור מערכת קרב פחות תרבות עם תא, חסכונית סביבתי נייד. ביצים סדוקות על ערסל נוצר על ידי קרום פוליאוריטן (נצמד) מודבקת circumferentially על כוס פלסטיק מלאה חלקית עם מים סטריליים. מידות ההיקף והעומק של הערסל שניהם קריטי לשמור על מתח הפנים, בעוד המכניקה של הערסל מים מתחת עזר לשכך ויברציות המושרה על ידי התחבורה. טביעת רגל קטנה במחזור אמבט מים פותחה גם כדי לאפשר בקרת טמפרטורה רציף במהלך הניסויים. אנו מדגימים את היכולת עוברי התרבות בדרך זו לפחות במשך 14 ימים ללא פגם morphogenic או עיכוב להעסיק זו מערכת microsurgical מספר יישומי הדמיה.

Protocol

1. Ex-אובו תרבות לפרוטוקול: לדגור ביצים עוף מופרית ביצי תרנגולת מופרות ניתן לאחסן 13 ° C עד 5 ימים לפני הדגירה ללא ייזום ופיתוח. מקרר יין אדום יכול לשמור על טמפר…

Discussion

גישה אופטית ניסויים בעוברים העופות הוא מאתגר בשל אילוצים של קליפת ביצה. Windowing משמעותי מגבילה את מספר microvessels נגיש גישות הזרקת microsurgical 8. כתוצאה מכך רק עוברי מוקדם ניתן להשפיע תצפית רציפה אינו אפשרי. מוקדם לשעבר אובו תרבויות באמצעות צלחות פטרי היו של שימוש מו?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Fertile white Leghorn chicken eggs        
Model GB1, Avery Incubators, Hugo CO        
Saran Wrap        
Kimwipes   Kimberly-Clark, Inc.    
Rubber bands        
Warm sterile water        
9 oz plastic cup        
100 mm diameter Petri dish        
1602N thermal air   GQF Manufacturing CO, Savannah GA    
Fluorescein-conjugated dextran (2 MDa, 1% w/v in phosphate buffered saline)   Sigma Aldrich Inc.    
Microforge   Glassworx, Inc, St Louis MO    
Glass capillary tubes (0.75 mm ID)        
Micromanipulator   World Precision Instruments, Sarasota FL Model M3301L  
Fluorescent microscopy   Zeiss Z20  
Fine 55-forceps   World Precision Instruments, Sarasota FL    
10-0 nylon surgical suture   Ethicon    
Tubing   VWR   1mm OD
3 mL syringe   BD    
200 μL pipetter and pipette tips   VWR    

References

  1. Zamir, E. A., Czirok, A., Cui, C., Little, C. D., Rongish, B. J. Mesodermal cell displacements during avian gastrulation are due to both individual cell-autonomous and convective tissue movements. Proc Natl Acad Sci U S A. 103, 19806-19811 (1980).
  2. Ehrman, L. A., Yutzey, K. E. Lack of regulation in the heart forming region of avian embryos. Dev Biol. 207, 163-175 (1999).
  3. Clark, E. B., Hu, N., Rosenquist, G. C. Effect of conotruncal constriction on aortic-mitral valve continuity in the stage 18, 21 and 24 chick embryo. Am J Cardiol. 53, 324-327 (1984).
  4. deAlmeida, A., McQuinn, T., Sedmera, D. Increased ventricular preload is compensated by myocyte proliferation in normal and hypoplastic fetal chick left ventricle. Circ Res. 100, 1363-1370 (2007).
  5. Nakamura, H., Funahashi, J. Introduction of DNA into chick embryos by in ovo electroporation. Methods. 24, 43-48 (2001).
  6. Butcher, J. T., McQuinn, T. C., Sedmera, D., Turner, D., Markwald, R. R. Transitions in early embryonic atrioventricular valvular function correspond with changes in cushion biomechanics that are predictable by tissue composition. Circ Res. 100, 1503-1511 (2007).
  7. McQuinn, T. C. High-frequency ultrasonographic imaging of avian cardiovascular development. Dev. Dyn. 236, 3503-3513 (2007).
  8. Korn, M. J., Cramer, K. S. Windowing chicken eggs for developmental studies. J Vis Exp. , (2007).
  9. Auerbach, R., Kubai, L., Knighton, D., Folkman, J. A simple procedure for the long-term cultivation of chicken embryos. Dev Biol. 41, 391-394 (1974).

Play Video

Cite This Article
Yalcin, H. C., Shekhar, A., Rane, A. A., Butcher, J. T. An ex-ovo Chicken Embryo Culture System Suitable for Imaging and Microsurgery Applications. J. Vis. Exp. (44), e2154, doi:10.3791/2154 (2010).

View Video