Summary

Bir Eski-ovo Tavuk Embriyo Kültürü Sistemi

Published: October 23, 2010
doi:

Summary

Bu makalede, biz uzun vadeli sağlamak için basit bir yöntem mevcut<em> Eski-ovo</em> Kuş embriyo kültürü. Bu teknik, tam optik erişilebilirlik ve / veya kuş embriyolar steril taşıma gerektiren uzunlamasına deneyler için idealdir.

Abstract

Normal ve kusurlu embriyonik gelişim sürücü ve genetik microenvironmental faktörler arasındaki ilişkilerin anlaşılması ve yeni tedavi stratejileri keşfetmek için esastır. Görüntüleme teknolojisindeki gelişmeler, organizasyon ve vücut planı olgunlaşması kantitatif araştırma etkin, ancak daha sonraki bir aşamada embriyonik morfolojilerinden daha az açıktır. Tavuk embriyolar kültür ve cerrahi manipülasyon kolaylığı nedeniyle bu uygulama için cazip bir omurgalı hayvan model sistem. Erken embriyolar, hücre desenlendirme ve kader çalışmaları 1,2 tam optik erişim sağlayan filtre kağıdı yüzük, kısa bir süre için kültür olabilir . Kalp morfolojilerinden gibi incelenmesi ileri gelişim süreçleri, geleneksel yumurta kabuğu 3-5 bir pencere üzerinden, ama bu tekniği pencere boyutu nedeniyle optik erişimi sınırlar . Daha önce 10 gün, ultrasonografi 6,7 ile yüksek çözünürlüklü görüntüleme etkin altıgen tartmak teknelerde eski-ovo kültürünün bütün embriyolar için basit bir yöntem geliştirdi. Bu kültürler canlı deneyleri için mevcut görüntüleme araçları türleri sınırlayarak, ulaşım zor. Biz burada bir maliyet-etkili, taşınabilir çevre haznesi ile geliştirilmiş bir kabuk daha az kültür sistemi mevcut. Yumurta kısmen steril su ile dolu bir plastik bardak, dairesel yapıştırılmış bir poliüretan membran (wrap sarılmak) tarafından oluşturulan bir hamak üzerine kırık. Mekaniği altındaki hamak ve su taşıma araçları ile indüklenen titreşim yardımcı hamak çevresi ve derinlik boyutları, hem yüzey gerilimi korumak için kritik bir rol oynadı. Su banyosu dolaşan küçük bir ayak izi de deney sırasında sürekli sıcaklık kontrolü sağlamak için geliştirilmiştir. Biz morfojenik kusur olmadan en az 14 gün boyunca bu şekilde embriyoların kültürü için yeteneğini göstermek ya da bu sistemin birçok mikrocerrahi ve görüntüleme uygulamaları gecikme ve istihdam.

Protocol

1 Ex-ovo Kültür Protokolü: Döllenmiş tavuk yumurta inkübe Döllenmiş tavuk yumurtası 13 saklanabilir ° C inkübasyon 5 gün öncesine kadar geliştirme başlatılması. Bir kırmızı şarap soğutucusu, bu sıcaklıkta muhafaza edebilirsiniz. 37.5 sürekli sallanan bir% 60 sabit nem inkübatör ° C de 72 saat inkübe yumurta künt yüzü yukarı. Hamaklar hazırlayın (Şekil 1a) 9 oz plastik bardak ılık steril…

Discussion

Optik erişim ve kuş embriyolarında deney yumurta kabuğu kısıtlamaları nedeniyle zordur. Pencereleme enjeksiyon ve mikrocerrahi yaklaşımları 8 için erişilebilir mikrodamarlar sayısı önemli ölçüde sınırlar . Sonuç olarak sadece erken embriyolar manipüle ve sürekli gözlem mümkün değildir. Embriyo üzerinde yüzey gerilimi yetersiz denetim nedeniyle uzun süreli kültür 9 engelledi Petri kutularına kullanarak Erken ex ovo kültürleri sınırlı kullanım. Yakın z…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Fertile white Leghorn chicken eggs        
Model GB1, Avery Incubators, Hugo CO        
Saran Wrap        
Kimwipes   Kimberly-Clark, Inc.    
Rubber bands        
Warm sterile water        
9 oz plastic cup        
100 mm diameter Petri dish        
1602N thermal air   GQF Manufacturing CO, Savannah GA    
Fluorescein-conjugated dextran (2 MDa, 1% w/v in phosphate buffered saline)   Sigma Aldrich Inc.    
Microforge   Glassworx, Inc, St Louis MO    
Glass capillary tubes (0.75 mm ID)        
Micromanipulator   World Precision Instruments, Sarasota FL Model M3301L  
Fluorescent microscopy   Zeiss Z20  
Fine 55-forceps   World Precision Instruments, Sarasota FL    
10-0 nylon surgical suture   Ethicon    
Tubing   VWR   1mm OD
3 mL syringe   BD    
200 μL pipetter and pipette tips   VWR    

References

  1. Zamir, E. A., Czirok, A., Cui, C., Little, C. D., Rongish, B. J. Mesodermal cell displacements during avian gastrulation are due to both individual cell-autonomous and convective tissue movements. Proc Natl Acad Sci U S A. 103, 19806-19811 (1980).
  2. Ehrman, L. A., Yutzey, K. E. Lack of regulation in the heart forming region of avian embryos. Dev Biol. 207, 163-175 (1999).
  3. Clark, E. B., Hu, N., Rosenquist, G. C. Effect of conotruncal constriction on aortic-mitral valve continuity in the stage 18, 21 and 24 chick embryo. Am J Cardiol. 53, 324-327 (1984).
  4. deAlmeida, A., McQuinn, T., Sedmera, D. Increased ventricular preload is compensated by myocyte proliferation in normal and hypoplastic fetal chick left ventricle. Circ Res. 100, 1363-1370 (2007).
  5. Nakamura, H., Funahashi, J. Introduction of DNA into chick embryos by in ovo electroporation. Methods. 24, 43-48 (2001).
  6. Butcher, J. T., McQuinn, T. C., Sedmera, D., Turner, D., Markwald, R. R. Transitions in early embryonic atrioventricular valvular function correspond with changes in cushion biomechanics that are predictable by tissue composition. Circ Res. 100, 1503-1511 (2007).
  7. McQuinn, T. C. High-frequency ultrasonographic imaging of avian cardiovascular development. Dev. Dyn. 236, 3503-3513 (2007).
  8. Korn, M. J., Cramer, K. S. Windowing chicken eggs for developmental studies. J Vis Exp. , (2007).
  9. Auerbach, R., Kubai, L., Knighton, D., Folkman, J. A simple procedure for the long-term cultivation of chicken embryos. Dev Biol. 41, 391-394 (1974).

Play Video

Cite This Article
Yalcin, H. C., Shekhar, A., Rane, A. A., Butcher, J. T. An ex-ovo Chicken Embryo Culture System Suitable for Imaging and Microsurgery Applications. J. Vis. Exp. (44), e2154, doi:10.3791/2154 (2010).

View Video