Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Biology

זיהוי וניתוח של אבות עכבר Erythroid באמצעות CD71/TER119 Flow-cytometric Assay

Published: August 5, 2011 doi: 10.3791/2809
* These authors contributed equally

Summary

שיטה זרימה cytometric לזיהוי וניתוח מולקולרית של התמיינות בשלב ספציפי אבות Murine erythroid ומבשרי, ישירות במח שאך שנקטפו עכבר העצם, בטחול או בכבד העובר. Assay מסתמך על פני קרום התא הסמנים CD71, Ter119, וגודל התא.

Abstract

המחקר של erythropoiesis שמטרתו להבין כיצד תאים אדומים נוצרים אבות hematopoietic מוקדם erythroid. באופן ספציפי, קצב היווצרות תא אדום מווסתת על ידי ההורמון אריתרופויאטין (EPO), אשר מופעלת על ידי סינתזה היפוקסיה ברקמה. איום על תוצאות נאות חמצון הרקמות לעלייה מהירה Epo, נהיגה עלייה בשיעור erythropoietic, תהליך המכונה תגובת דחק erythropoietic. הגידול וכתוצאה מכך מספר מחזורי תאים אדומים משפר את אספקת החמצן לרקמות. התגובה היעילה מתח erythropoietic ולכן קריטי להישרדות והתאוששות ממצבים פיזיולוגיים ופתולוגיים כגון בגובה רב, אנמיה, דימום, כימותרפיה או השתלת תא גזע.

העכבר הוא מודל מפתח לחקר erythropoiesis ואת תגובת הלחץ שלו. Erythropoiesis עכבר סופי (מבוגרים סוג) מתרחש בכבד העובר בין ימים עובריים 12.5 ו - 15.5, הטחול בילוד, ועל הטחול מבוגרים מוח העצם. שיטות קלאסיות של זיהוי אבות erythroid ברקמות לסמוך על יכולתם של תאים אלה כדי להצמיח מושבות תאים אדום כאשר מצופה ב Epo המכילים מוצקים למחצה בתקשורת. הצאצאים שלהם erythroid מבשר מזוהים על פי קריטריונים מורפולוגיים. אף אחת השיטות הקלאסיות לאפשר גישה למספר גדול של בידול בשלב ספציפי בתאי erythroid למחקר המולקולרי. כאן אנו מציגים שיטה זרימה cytometric לזהות וללמוד בידול בשלב ספציפי אבות erythroid ומבשרי, ישירות בהקשר של רקמות העכבר מבודדים טרי. Assay מסתמך על פני קרום התא הסמנים CD71, Ter119, ועל פרמטר זרימת cytometric "קדימה להתפזר", אשר הוא פונקציה של גודל התא. Assay CD71/Ter119 ניתן ללמוד אבות erythroid במהלך התגובה שלהם ללחץ erythropoietic in vivo, למשל, בעכברים או בעכברים אנמי שוכנו בתנאים חמצן נמוכה. זה עשוי לשמש גם כדי ללמוד אבות erythroid ישירות ברקמות של עוברי עכברים בוגרים או מהונדסים גנטית, כדי להעריך את התפקיד הספציפי של מסלול מולקולרי שונה ב erythropoiesis.

Protocol

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

1. קציר של רקמות

  1. הכן צינורות המכיל 2-5 מכתים קר מ"ל חוצץ (בופר פוספט (PBS) עם ארגון ה-BSA הוסיף 0.2% ו גלוקוז 5 מ"מ). שמור צינורות על הקרח לפני הקציר רקמות.
  2. עכברים ללקט על פי פרוטוקול שאושר המתאים (למשל 2 משאיפת CO ואחריו נקע בצוואר הרחם).
  3. להקיז דם על ידי דקירה לתוך הלב EDTA או הפרין דם אוסף צינורות לצורך ניתוח מאוחר יותר, למשל של המטוקריט, לספור reticulocyte או ניתוח CBC.
  4. קציר את הטחול ואת העצמות, הרקמות הצבת מהעכבר כל בצינור נפרד, מוכן בשלב 1. גישה נוחה הטחול הוא מצד שמאל. במשך הקציר, מח עצם אחת או בשתי עצמות הירך. שמור רקמות שנקטפו על הקרח.
  5. אם תרצה, לשקול את הטחול. עכברים שעברו מענה הלחץ erythropoietic צפויים להראות עלייה משמעותית במשקל הטחול.

2. הכנת התאים הטחול

  1. באמצעות טרום לחלח 3 מ"ל במזרק הבוכנה, בעדינות לדחוף את הטחול, או חלק של הטחול (באופן אידיאלי, 0.1 גרם או פחות, שווה ערך ל כ 10 8 תאים) דרך מסננת 40 מיקרומטר סטרילי תאים (מספר קטלוג Fisherbrand 22363547 או אחר) מונח על גבי צינור חרוטי 50 מ"ל. שמור את הצינור על הקרח במהלך הליך זה. לשטוף את התאים דרך המסננת עם סך של חיץ 2 מכתים מ"ל.
  2. בעדינות פיפטה ההשעיה תא מתוחים כדי לשבור את כל גושים קטנים. במידת הצורך, מחדש תאים המתח.
  3. לשטוף את התאים פעמיים על ידי צנטריפוגה מחדש להשעות במאגר קר.
  4. ספירת התאים באמצעות hemocytometer. התשואות אופייניים 1-2 x 10 8 תאים / טחול. לניתוח זרימת cytometry, aliquote 1-2000000 תאים לפי המדגם, או לתוך צינורות FACS מכתים (פוליסטירן BD פלקון מסביב לתחתית צינורות, 352008) או U-96 צלחת תחתית היטב (BD פלקון 353,910). מכתים נפח דגימה היא 200 μl, ריכוז תא הסופי 0.5-1 7 x 10 תאים / מ"ל או 1-2 x 10 6 תאים / μl מדגם 200.

3. הכנת מח עצם לתאי

  1. הכן 1 או 3 מזרקים מ"ל עם מחט 26G המצורפת, מראש מלא חיץ מכתים קר.
  2. הסר השרירים המחוברים הירך כדי להמחיש את עצם בבירור.
  3. בעזרת מספריים חדים כירורגית, לגזור את שני הקצוות של עצם הירך, קרוב ככל האפשר אל קצות העצם. זה צריך לגלות חור קטן בכל קצה לחתוך, מובילה לחלל מח עצם, אשר פועל באמצעות אורך עצם הירך.
  4. באמצעות טרום מלא מזרקים בשלב 1, הכנס את המחט דרך אחד החורים האלה, בעדינות ולשטוף את מוח החוצה דרך החור בקצה השני, לתוך צינור.
  5. לנתק את התאים סמוקות ידי pipetting עדין, ומתח דרך מסננת 40 מיקרומטר כמו הטחול לעיל (ראה סעיף 2.1).
  6. שטפו תאים פעמיים על ידי צנטריפוגה במאגר מכתים קר
  7. ספירת התאים resuspend כאמור בסעיף 2.4. התשואות אופייניים הם כ -10 7 תאים לכל עצם הירך.

4. הכנת תאים בכבד העובר

  1. כדי להכין מתוזמן בהריון נקבות עכברים, עכברים להגדיר עבור הזדווגות בערב; לבחון עבור תקעים הנרתיק לפני 10:00 ביום שלמחרת, היום שבו את התקע הנרתיק מזוהה נחשבת היום 0.5. הצוות הווטרינרי יוכלו לסייע לחוקרים שאינם מכירים את הטכניקה הזו כדי לזהות נקבות בהריון. הריון יכול להיות גם נקבע על ידי משקל העכבר ניטור.
  2. מתוזמן בהריון נקבות עכברים ונבחרים בימים 12.5-14.5 של ההריון. קרניים הרחם יוסרו לתוך צלחת פטרי המכילה קר כקרח בינוני תרבות או חיץ מכתים.
  3. עוברים יוסרו מן הרחם כל הכבד העוברי הוא גזור. מיקרוסקופ לנתח נדרש יום עובריים 12.5 (E12.5) או צעירים יותר.
  4. כבדים עשויים להיות מנותקת באופן מכני על ידי pipetting במאגר, וכן מעובדים או בנפרד 96 צלחות טוב, או אספו יחד, בהתאם לדרישות הניסוי.
  5. בכבד העובר על E13.5 יש 7 ~ 10 תאים. תאים נשטפים פעמיים מכתים חיץ resuspended ב 1-2 x 10 6 תאים / 200 מדגם μl לניתוח זרימת cytometric.

5. נוגדן מכתים עבור cytometry זרימה

  1. הכינו נוגדן ראשוני מכתים מראש לערבב לשמש כל הדגימות, למעט דגימות שליטה, המכיל את הפעולות הבאות:
    • ChromePure הארנב IgG (ג'קסון, 015-000-003), ריכוז סופי של 200μg/ml. בדוק את ריכוז המניות על הבקבוק (זה יכול להשתנות). זה משמש כדי לחסום קולטנים Fc בתאי עכבר, מינים אלטרנטיביים שעשויים לשמש זה עכבר או עכברוש IgG IgG. הבחירה המינים נקבעת על ידי נוכחות פוטנציאל בפרוטוקול מכתים של נוגדנים המכוונים נגד משני עכברוש העיקרי / עכבר / ארנב נוגדנים, ובמקרה מינים אלה לא ניתן להשתמשד כמו נוגדנים חוסמים. לחלופין, סרום ארנבת 5% יכול לשמש גם במקום מטוהרים IgG. חלופה נוספת היא השימוש נוגדנים חד שבטיים או שברי Fab מכוון את הקולטנים Fc העכבר. פרוטוקול בסיסי להלן אינו כולל נוגדנים משני ולכן IgG של כל שלושת המינים ניתן להשתמש.
    • CD71-FITC, 1:200 מדולל (מניות 0.5mg/ml, BD-Biosciences, 553,266)
    • Ter119-PE, מדולל 1:200 (מניות 0.2mg/ml, BD-Biosciences, 553,673)
    • כל נוגדנים נוספים המכוונים epitopes פני השטח של עניין, כגון נוגדנים המכוונים פאס או FasL (ראה 1,2). מערבבים את הפתרון נוגדן בעדינות על ידי צינור היפוך 2-3 פעמים.
  2. הוסף 200 μl של תערובת טרום לטעום כל תא בעדינות מחדש להשעות את התאים.
  3. הכינו דגימות תאים בקרת כדלקמן:
    • "בלא כתם": תאים אלה נותרו מכתים חיץ ולספק את autofluorescence הרקע של התאים.
    • שולטת "צבע יחיד": אחד לשלוט כזה נדרש כל נוגדן / צבע השתמשו בפרוטוקול. התאים שולטת אלה מוכתם או עם נוגדן ראשוני מצומדות ישירות, או עם נוגדן שני ראשוניים נוגדן משני מצומדות. בקרות אלה משמשים לתיקון חפיפה ספקטרלית בין ערוצים.
    • "הקרינה מינוס אחד" (FMO) שולטת: פקד אחד כזה נדרש כל נוגדן / צבע בפרוטוקול: תאים מגואלות את כל הצבעים / נוגדנים בפרוטוקול למעט צבע / נוגדנים עבורו זהו לשלוט FMO. השליטה FMO עבור ערוץ מסוים מספק את הרקע נכון גם לגבי ערוץ זה. זה עשוי לכלול הלא ספציפית של נוגדן אלוטיפ זהה, מצומדות עם סימן את הקרינה כמו נוגדנים במבחן (שליטה אלוטיפ).
  4. דגימות דגירה בקרות רלוונטיות הנוגדן העיקרי כתם על קרח למשך 45 'עד 1 שעה בחושך (לשים רדיד אלומיניום לכסות על דלי קרח).
  5. בסוף הדגירה, לשטוף את התאים על ידי הוספת 3ml של חיץ מכתים את הצינור בכל מדגם ספין עבור 3 'ל 5' ב XG כ 400 ב 4 ° C. אם אתה משתמש 96 צלחות טוב, לשטוף את התאים שלוש פעמים בהיקף של μl 200.
  6. אם רלוונטי, להחיל נוגדנים משני הכתם. החל לשטוף כמו הנוגדן first הכתם.
  7. אם רלוונטי, כתם עם Annexin V מוחל בסוף הדגירה, באמצעות חיץ hepes כפי הוראות היצרן. כתם זה מוחל במשך 15 דקות בטמפרטורת חדר, או במשך שעה 1 על הקרח.
  8. תאים הם מחדש מושעה לניתוח זרימת cytometry ב מכתים תמיסה המכילה צבע התא חדיר DNA, להוציא תאים מתים. צבעי ה-DNA קיימות מספר, כולל יודיד Propidium, 7-אמינו actinomycin D (7AAD), או DAPI. הבחירה מקרב אלה תלויה הערוצים הזמינים, בהתחשב ערוצי נלקח עבור מכתים נוגדן ספציפי, ערוצים זמינים על cytometer-הזרם. 7AAD מתקבל BD-Biosciences (559,925) ו משומשות בהתאם להוראות היצרן. עבור מכתים DAPI, להפוך מלאי של 1mg/ml ב dimethylformamide (DMF) מן אבקה (רוש, חתול # 236276), לשמור ב -20 ° C, כדי לדלל 1:10,000 1:15,000 ב מכתים חיץ.

6. Flow-cytometric מיון

  1. תאים מסומנים עם נוגדנים כנגד CD71, Ter119, סמנים השושלת, לבין צבע הכדאיות כמתואר לניתוח זרימת cytometric (סעיף 5). ריכוז נייד במהלך תיוג ניתן להעלות את 5 x 10 7 / מ"ל.
  2. מערבבים נפח שווה של כל אחד נוגדנים הבאים כדי להפוך את תמהיל אב השושלת:
    • FITC עכברוש Anti-CD41 עכבר MWReg30, BD Pharmingen 553848
    • FITC עכברוש אנטי עכבר CD45R/B220 RA3-6B2, BD Pharmingen 553087
    • FITC אוגר אנטי עכבר CD3e 145-2C11, BD Pharmingen 553061
    • FITC אנטי עכבר עכברוש CD11b/Mac-1 M1/70, BD Pharmingen 557396
    • FITC אנטי עכבר עכברוש Ly-6g ו Ly-6C (Gr-1) RB6-8C5, BD Pharmingen 553126
    • השתמש לערבב אמן 1:80 (זה שווה דילול 1:400 של כל מניות נוגדן יחיד, אשר כל 0.5 מ"ג / מ"ל).
  3. השתמש בלחץ נמוך התנאים מיון חרירי רחב. עבור Aria (BD Biosciences) אנו משתמשים זרבובית μ 100, 20 בלחץ psi.
  4. אוסף חיץ: PBS עם הוסיפה 20% בסרום שור עוברית.
  5. כדי לבדוק את purities של האוכלוסיות מיון, להפעיל מחדש aliquot קטן מכל מדגם במאגר המכיל צבען הכדאיות (7AAD או דומה).

7. נציג תוצאות:

CD71/Ter119 מכתים של מח עצם, מבוגר או הטחול מזהה הרצף ההתפתחותי של ארבע קבוצות משנה, ProE שכותרתו, EryA, EryB ו EryC (איור 1) 1. מורפולוגית, אלה מתאימות erythroblasts בוגרת יותר ויותר. איור 1 מדגים את רצף gating בשלב ניתוח הנתונים, אשר מבטלת את אירוע קטן מאוד (כולל תאים גרעינים אדום), התאים מצטברים התאים המתים.

ביטוי של חלבונים על פני קרום התא ניתן למדוד בו זמנית עבור כל תת אלו, על ידי הוספת נוגדנים רלוונטיים באותו זמן כמו Ter119 ו CD71 מכתים. איור 1 מציג דוגמה של הביטוי על פני קרום התא של הקולטן מוות פאס 1. מדידה זו בוצעה עכברים שהוזרק עם EPO, או עכברים שליטה הזריק עם מלוחים. ניכר כי Epo מדכאת ביטוי Fas באוכלוסייה EryA in vivo 1.

ביטוי של חלבונים תאיים או מחזור מעמד התא יכול להיות גם נמדד תאים משנה כל אחד. איור 2 ממחיש מחזור התא נציג ניתוח של תאים במח העצם שנקטפו זה עתה. מדידות אלה דורשים, בנוסף מכתים תא השטח עם CD71 ו Ter119, את קיבעון ו permeabilization של תאים עבור תיוג תאיים (ראה סעיף דיון).

בכבד העובר, ללא erythroid תאים ייכללו הראשון על תאים "לין," כי הם שליליים עבור CD41, Mac-1, Gr-1, B220 ו CD3 (איור 3) על ידי gating. התאים הנותרים מתחלקים לתוך תת 6, S0 ל S5. דפוס הפעולה המדויק של תאים בכבד העובר תלוי גיל עובריים (ראה סעיף דיון). מחזור התא נציג ניתוח של תת S3 בכבד E13.5 העובר מוצג (איור 4).

איור 1
איור 1 CD71/Ter119 תת erythroid הטחול עכבר אסטרטגיה gating א:.. תאים הטחול עובדו ומסומן עם נוגדנים המכוונים CD71, Ter119 ו פאס. נתון זה מראה את האסטרטגיה ניתוח הנתונים הבאים צעד הרכישה. היסטוגרמה אני מראה את כל האירועים רכשה. השער אלכסוני מייצג אירועים צפויים להיות תאים בודדים, ללא כפילויות או אגרגטים גדולים יותר. תאים השער הזה מנותחים נוספת II היסטוגרמה. אירועים כאן קטן מאוד, פסולת גרעינים או סביר, אינם נכללים. התאים מגודרת מוצגים III היסטוגרמה, שם DAPI חיובי תאים, שסביר קרום חדיר תאים אפופטוטיים, אינם נכללים ניתוח נוסף. IV היסטוגרמה מציגה את האוכלוסייה וכתוצאה מכך התאים הטחול קיימא. השער ProE מכיל CD71 גבוה Ter119 תאים ביניים. Ter119 תאים גבוה מנותחים נוספת היסטוגרמה V. כאן CD71 בתאים גבוה מחולקים פחות בוגר, erythroblasts גדול "EryA" (CD71 Ter119 גבוה גבוה גבוה FSC) ו קטן יותר, בוגרת יותר erythroblasts "EryB" (CD71 Ter119 גבוה גבוה נמוך FSC) . משנה erythroblast הבשל ביותר הוא EryC (CD71 נמוך Ter119 גבוה FSC נמוך). VI היסטוגרמה מראה על פני קרום התא ביטוי פאס, במיוחד בתת EryA, בעכברים במצב הבסיסי (מוזרק עם מלח), וכן עכברים שהוזרק עם מנה אחת של EPO. מכתים עם נוגדן פאס בוצעה בו זמנית עם מכתים CD71/Ter119. B. ההכנות Cytospin של תאים ממוינים מכל אחד תת המצוין. תאים הוכתמו Giemsa ועם Diaminobenzidine, הלה יוצר כתם חום עם המוגלובין. נתונים Cytospin פורסם במקור ליו et al. דם. 1 יולי 2006; 108 (1) :123-33. Epub 9 מרס 2006.

איור 2
איור 2. מחזור התא ניתוח CD71 Ter119 erythroblasts הגבוה במח העצם העכבר. עכברים הוזרקו intraperitoneally עם BrdU, והטחול או מח עצם נבצרו 30 עד 60 דקות מאוחר יותר. תאים היו קבועים permeabilized ו בנוסף להיותו מוכתם עבור CD71 ו Ter119, היו מוכתמים עבור התאגדות BrdU לתוך ה-DNA שכפול שלהם עם נוגדן חד שבטי המכוון BrdU (פרוטוקול, קיבעון permeabilization ו-BrdU מכתים היה על פי הוראת היצרן). BrdU חיובי התאים בשלב-S של מחזור. תאים שלבי הביניים הם BrdU שלילי וניתן לפתור לשלבים G1 או G2 / M, באמצעות ה-DNA לצבוע 7AAD.

איור 3
איור 3 CD71/Ter119 תת erythroid בכבד עכבר עוברי אסטרטגיה gating א:.. בתאי הכבד עוברית תויגו עבור CD71, Ter119, ואת קוקטייל של FITC שכותרתו נוגדנים המכוונים לא erythroid סמנים השושלת ("לין"). תאים חיים (7AAD שלילי) נותחו לביטוי לין, ואת לין תאים מחולקים נוספת לתוך S0 כדי S5 תת erythroid. הצעיר, E13 בכבד העובר מורכב erythroblasts פחות בוגר, שמוצג על ידי בהעדר תאים S4/S5 תת בוגר. B. ההכנות Cytospin של תאים ממוינים מכל אחד תת המצוין. תאים הוכתמו Giemsa ועם Diaminobenzidine, הלה יוצר כתם חום עם המוגלובין. נתונים Cytospin היה במקור published ב פופ ואח', PLoS Biol 8 (9):. e1000484. doi: 10.1371/journal.pbio.1000484.

איור 4
איור 4. מחזור התא ניתוח של תת בכבד העובר erythroid. עכברים הרות הוזרקו BrdU, ואת הכבדים העובר נבצרו 30 עד 60 דקות מאוחר יותר, קבוע, permeabilized, ומוכתמת עם נוגדנים נגד CD71, Ter119 ו BrdU. מחזור התא מעמד של תאים S3 מוצג.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

המתודולוגיה זרימה cytometric מאפשר חקירה סימולטני של כל פונקציה תאית עשויה להתגלות עם נוגדן פלואורסצנטי, מצומדות ליגנד ספציפי או, כולל משטח סמנים התא, ביטוי חלבון, הישרדות התא, מאותת לתא באמצעות נוגדנים ספציפיים phospho 3 מחזור מצב התא. מדידות אלה עשויים להיות בכל מספר בידול בשלב תת ספציפי, בהקשר של רקמה erythropoietic מבודדים טרי. שיטה זו ולכן מאפשר הערכה של שינויים פונקציונליים מולקולרית ברמות שונות של מערכת erythropoietic, בתגובה למגוון רחב של גירויים erythropoietic או כתוצאה של מוטציות גנטיות.

אין נוגדן ללא תגובתיות לחצות, תגובתיות חוצה ניתן רקמות ספציפיות. לכן חשוב לוודא, אפילו נוגדנים נבדק בעבר, הספציפיות שלהם בהקשר של רקמה erythropoietic, או באמצעות מודל לתא ריק או עקום למטה.

תאים ספציפיים תת erythroid ניתן למיין עבור RNA או ניתוח transcriptome. ניסויים מיין להשתמש לחצים מיון נמוך חרירי רחב, על מנת לצמצם את הלחץ גזירה על התאים. אנו ממליצים על בדיקת טוהר התא הכדאיות בעקבות הניסוי כל מיון. ראוי לציין, במקרה של multiparameter זרימה cytometry, הרקע האמיתי לכל צבע הוא שלה "FMO" הביקורת (ראו 5.3), הכולל, בנוסף autofluorescence, הרקע עקב חפיפה ספקטרלית מכל הצבעים האחרים. בשלב הניתוח, שליטה תת ספציפיים "FMO" צריך לשמש.

שלב התמיינות של erythroblasts בתוך זרימה תת cytometrically מוגדר

זרימה cytometric ProE / EryA / EryB / EryC תת מוגדרים במונחים של הביטוי על פני קרום התא סמן ולפזר קדימה. אמנם סביר להניח כי כל תת אלו מקביל בערך באותו שלב erythroblast מורפולוגיים בידול במגוון רחב של מודלים העכבר, אנו ממליצים לוודא זאת כאשר בוחנים במודל עכבר חדש. תאים מכל אחד זרימה cytometrically מוגדרים תת צריכה להיות מיון והכנה cytospin בדק עבור הבימוי המורפולוגי של erythroblasts.

למרות CD71/Ter119 תת מכילים כל אחד erythroblasts שלב התמיינות דומה, יש עדיין מידה מסוימת של הטרוגניות בתוך תת קבוצה זו. ביישום הראשון של שיטת CD71/Ter119, חילקנו Ter119 תאים + לאזורים אני אל IV מבוסס על ביטוי CD71 שלהם. הגבולות המדויק בין אזורים אלה נקבעו באופן שרירותי 4. לאחר מכן הוסיף לנו מידע על גודל התא לניתוח, בצורה של פרמטר פיזור קדימה. זה מאפשר לנו לחלק Ter119 תאים גבוה לתוך תת ידי ביצוע קווי המתאר הטבעי של האוכלוסייה 1 (איור 1). גישה זו הביאה אוכלוסיות של התבגרות יותר אחיד בתוצאות לשחזור יותר, הותאם לאחרונה על ידי חוקרים אחרים 5,6,7. משנה EryA ניתן מתחלקים נוסף שבו הרצוי 7. קבוצה אחת הציעה את השימוש CD44 CD71 במקום 8. למרות CD44 יעיל פחות בפתרון erythroblast בשלבים הראשונים, היא עשויה לפתור תת erythroblast לאחר מכן ביתר דיוק. שני סמנים ולכן עשוי לשמש, או לחילופין, בחירתם יכולה להיות תלויה תת ספציפיים של עניין.

אסטרטגיה חלופית מעסיקה הדמיה multispectral באמצעות טכנולוגיית ImageStream (Amnis Corporation, סיאטל, וושינגטון) 9. היא מאפשרת רכישת סימולטני ומהיר של נתונים הן מורפולוגיים זרימה cytometric על אלפים רבים של תאים. סביר להניח להיות "תקן הזהב" לגבי הניתוח המולקולרי של שלב ספציפי erythroblasts, שכן קריטריונים מורפולוגיים ידי באיזה שלב התמיינות מוגדר ניתן למדוד ישירות. עם זאת, בתקופה הנוכחית טכנולוגיה זו היא פחות נפוצים מאשר cytometry זרימה קונבנציונאלי, סובל שני חסרונות: היא אינה מאפשרת מיון התא, והוא מוגבל למספר קטן יותר של זרימה cytometric פרמטרים.

תאיים אנטיגנים

זיהוי של חלבונים תאיים או BrdU דורש קיבוע התא permeabilization. קיבוע מדויק permeabilization הליך תלוי האנטיגן תאיים הנדון. אנו משתמשים תא חי / מת המלח ניתן לתקן כתמים (בדיקות מולקולריות) במהלך ההליך קיבעון, להבדיל מ - קיימא תאים מתים. ראוי לציין, permeabilization עם דטרגנטים בדרך כלל משפיע על האות Ter119, שהוא חומר ניקוי מסיסים חלקית. אנו להתגבר על קושי זה באמצעות חומרי ניקוי עדין (כגון "סלסול / לשטוף" את saponin מבוססי חיץ מ BD Biosciences). אנחנו גם כתם עבור Ter119 הן לפני, ואחרי, ההליך קיבעון & permeabilization, על מנת לייעל את sig Ter119NAL. לחלופין, אפשר למיין תאים קיימא מכל אחד CD71 / Ter119 תת הראשון, ולבצע קיבוע ו permeabilization בנפרד על תאים מטוהרים מן משנה כל אחד (למשל לראות את מחזור התא ניתוח בכבד העובר) 10.

עוברית CD71/Ter119 כבד תת

דפוס CD71/Ter119 מכתים בכבד העובר תלוי גיל עובריים 2 (איור 3). אנו לסעף תאים בכבד העובר לתוך תת 6, S0 כדי S5 10. בתחילת שנת erythropoiesis סופי בכבד העובר ביום עובריים 11 (E11), תאים מרוכזים תת S0 ו S1 הם תאים המושבה יוצרי erythroid ברובו (CFU-e). עם ההתפתחות העוברית, CFU-E לתאים להתמיין proerythroblasts ו erythroblasts התבגרות ובהדרגה כדי לאכלס תת S2 S5 (איור 3).

קבוצות משנה S1 ל S5 מורכב רובו ככולו של תאים erythroid של השושלת סופי. תת אלו נעדרים EpoR - / - בכבד העובר. מספר קטן של Ter119 + תאים בכבד העובר מתאימות את השושלת פרימיטיבי erythroid (שק חלמון). תאים אלה הם לכאורה EpoR - / - כבד עוברית, שבה אין erythroblasts השושלת להתעורר סופית, אלא על ידי E13.5 טופס פחות מ 1% של Ter119 + תאים בכבד wild-type העובר 10.

משנה S0 הטרוגנית. בשלב E13.5, 70% S0 תאים תאים erythroid בשלב CFU אלקטרוני, ממש לפני תחילת EpoR התלות 10. השאר הם אבות קודמות, כמו גם של שושלות תאים hematopoietic אחרים, בעיקר megakaryocytes ומקרופגים; תאים אלה ניתן למיין או מגודרת מתוך 10 (איור 3).

פרשנות של שינויים בתדירות erythroid תת

שינויים בתדירות של תת erythroid יש לפרש בזהירות. השינוי בתדר של תאים תת נתון יכול להיות בגלל קצב אפופטוטיים שינו שלהם, זמן המעבר דרך לשנות משנה זו, או לחילופין יכול להיות בגלל שינויים במספר של תאים תת אחרים. סיבה נפוצה עבור תדר גבוה מוקדם erythroblast תת ProE ו EryA הוא מתח erythropoietic של כבעלות אטיולוגיה מספר 1. ממצאים דומים כבר ציין בשנות ה -1960 על ידי בדיקת מורפולוגיות erythroblast במהלך התגובה הלחץ 11. הסיבה המדויקת לעליה בשכיחות היחסית של מבשרי מוקדם יותר במהלך מתח לא ברור, אבל חלק יכול להיות בגלל ההישרדות משופרת של מבשרי אלה במהלך להדגיש 1.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

ניסויים בבעלי חיים בוצעו בהתאם להנחיות והתקנות שנקבעו על ידי אוניברסיטת מסצ'וסטס בבית הספר לרפואה IACUC הוועדה.

Acknowledgments

אנו מודים הליבה UMass cytometry זרימה: ריצ'רד Konz, טד Giehl, ברברה גוזלן, Yuehua גו ותמי Krupoch. עבודה זו מומנה על ידי NIH / NHLBI RO1 HL084168 (MS) ו-NIH CA T32-130807 (JRS). משאבים Core נתמך על ידי לאנדוקרינולוגיה וסוכרת במרכז המחקר מענק DK32520 שימשו גם.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Fas-biotin BD Biosciences 554256
Streptavidin-APC Molecular Probes, Life Technologies S868
40 μm sterile cell strainer Fisher Scientific 22363547
Polystyrene round-bottom tubes for FACS staining BD Biosciences 352008
U-bottom 96 well plate BD Biosciences 353910
ChromePure Rabbit IgG Jackson ImmunoResearch 015-000-003
CD71-FITC (stock 0.5mg/ml) BD Biosciences 553266
Ter119-PE (stock 0.2mg/ml) BD Biosciences 553673
7AAD BD Biosciences 559925
DAPI powder Roche Group 236276
FITC Rat Anti-Mouse CD41 MWReg30 BD Biosciences 553848
FITC Rat Anti-Mouse CD45R/B220 RA3-6B2 BD Biosciences 553087
FITC Rat Anti-Mouse CD411b/Mac-1 M1/70 BD Biosciences 557396
FITC Rat Anti-Mouse Ly-6G and Ly-6C (Gr-1) RB6-8C5 BD Biosciences 553126
FITC Hamster Anti-Mouse CD3e 145-2C11 BD Biosciences 553061
APC BrdU Flow kit BD Biosciences 557892
Annexin V-biotin BD Biosciences 556418

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Liu, Y. Suppression of Fas-FasL coexpression by erythropoietin mediates erythroblast expansion during the erythropoietic stress response in. 108, 123-133 (2006).
  2. Socolovsky, M. Negative Autoregulation by FAS Mediates Robust Fetal Erythropoiesis. PLoS Biol. 5, e252-e252 (2007).
  3. Krutzik, P. O., Hale, M. B., Nolan, G. P. Characterization of the murine immunological signaling network with phosphospecific flow cytometry. J Immunol. 175, 2366-2373 (2005).
  4. Socolovsky, M. Ineffective erythropoiesis in Stat5a(-/-)5b(-/-) mice due to decreased survival of early erythroblasts. Blood. 98, 3261-3273 (2001).
  5. Guihard, S. The MAPK ERK1 is a negative regulator of the adult steady-state splenic erythropoiesis. Blood. 115, 3686-3694 (2010).
  6. Yu, X. An erythroid chaperone that facilitates folding of alpha-globin subunits for hemoglobin synthesis. J Clin Invest. 117, 1856-1865 (2007).
  7. Chen, M. L. Erythroid dysplasia, megaloblastic anemia, and impaired lymphopoiesis arising from mitochondrial dysfunction. Blood. 114, 4045-4053 (2009).
  8. Chen, K. Resolving the distinct stages in erythroid differentiation based on dynamic changes in membrane protein expression during erythropoiesis. Proc Natl Acad Sci U S A. 106, 17413-17418 (2009).
  9. McGrath, K. E., Bushnell, T. P., Palis, J. Multispectral imaging of hematopoietic cells: where flow meets morphology. J Immunol Methods. 336, 91-97 (2008).
  10. Pop, R. A key commitment step in erythropoiesis is synchronized with the cell cycle clock through mutual inhibition between PU.1 and S-phase progression. PLoS Biol. 8, (2010).
  11. Borsook, H., Lingrel, J. B., Scaro, J. L., Millette, R. L. Synthesis of haemoglobin in relation to the maturation of erythroid cells. Nature. 196, 347-350 (1962).
זיהוי וניתוח של אבות עכבר Erythroid באמצעות CD71/TER119 Flow-cytometric Assay
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Koulnis, M., Pop, R., Porpiglia, E., Shearstone, J. R., Hidalgo, D., Socolovsky, M. Identification and Analysis of Mouse Erythroid Progenitors using the CD71/TER119 Flow-cytometric Assay. J. Vis. Exp. (54), e2809, doi:10.3791/2809 (2011).More

Koulnis, M., Pop, R., Porpiglia, E., Shearstone, J. R., Hidalgo, D., Socolovsky, M. Identification and Analysis of Mouse Erythroid Progenitors using the CD71/TER119 Flow-cytometric Assay. J. Vis. Exp. (54), e2809, doi:10.3791/2809 (2011).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter