Summary
可植入大脑中闭塞小鼠模型中，本文提出的。脑梗塞的程度进行评估，神经行为学评分和甲酚紫染色，染色，TTC替代，提供了巨大的优势，以测试在并行的兴趣标记。
Abstract
中风是第三大死亡原因和在世界上的残疾的首要原因。缺血性中风占所有中风的约80％。然而，溶栓组织型纤溶酶原激活剂（tPA）治疗急性缺血性中风的存在是唯一的。这使研究人员开发了几个缺血性中风模型，在不同的物种。两种主要类型的啮齿类动物模型已经开发全脑缺血或局灶性脑缺血模型。为了模拟缺血性中风的患者中，约80％的人在血栓形成或栓塞性中风发生在大脑中动脉（MCA），管腔内的大脑中动脉闭塞（MCAO）模型是非常相关的中风研究的领土。此模型的大鼠Koizumi 等人首先开发于1986年1。由于在小鼠体内的遗传操作的容易性，这些模型也被开发在这一物种2-3。
内容“>在这里，我们提出在C57/BL6小鼠大脑中动脉闭塞的瞬态过程。以前的研究报告的封堵器的物理特性，如齿顶圆直径，长度，形状和灵活性是至关重要的重现性梗死体积的4。这里，一个商业硅涂覆的单丝（Doccol公司）已被使用。另一个很大的优点是，这种单丝诱导蛛网膜下腔出血的风险降低。使用蔡司立体显微镜STEMI 2000，硅涂布的单丝导入颈内动脉（ICA）的外颈动脉（ECA），直到单丝通过一个切割阻塞MCA的基础上恢复血流量，1小时后除去的单丝，以模仿裂解后的血栓栓塞血块中的血流恢复人类。脑梗塞的程度，可以首先计算由神经系统的得分和所测量的梗死体积。因此，分析他们的神经行为学评分在再灌注后不同时间缺血小鼠。为了评估梗死体积，2,3,5 - 氯化三苯基四氮唑（TTC）染色，通常执行。在此，我们用甲酚紫染色，因为它提供了一个机会来测试许多重要的标志物免疫组化。在这段视频中，我们报道了MCAO程序;神经甲酚紫染色的梗死体积分数和评价。Protocol
短暂性大脑中动脉闭塞（MCAO）
1。外科手术（ 图1）
短暂性大脑中动脉的阻塞（tMCAO）上进行2 - 3个月大的雄性C57BL / 6小鼠（22-28G）。 IRCM生物伦理委员会动物护理批准该协议。外科工具被灭菌，高压灭菌（121℃60分钟，在15 psi）。每只动物之间，他们使用热珠灭菌器（15秒）消毒。用70％的乙醇消毒的外科手术和其他设备。
手术前两小时，的小鼠，analgesized与丁丙诺啡（0.03毫克/公斤BWIP的）。
图1A中。
- 深麻醉小鼠异氟醚5％，然后维持在2.5％异氟醚麻醉。的体温的小鼠的是，用加热垫的外科手术过程中保持恒定。
- 消毒的皮毛和sk在用70％乙醇或聚维酮碘。由于剃须产生头发片段释放，微打磨和炎症，可能对脑卒中病理生理的影响，我们，不刮胡子鼠标毛皮。
- 中线颈部切口，然后轻轻的拉开的软组织。
- 在立体显微镜（STEMI 2000年，蔡司），钝性分离暴露气管和收回的肌肉来定位的颈动脉。
- 仔细解剖的左颈总动脉（CCA）从周围组织和CCA的暂时闭塞的一个临时的缝合线（1），用5-0丝线缝合切成20毫米分部。大应当谨慎行事，不伤害迷走神经。
- 分离分叉内部的左侧颈总动脉（ICA）和外部颈总动脉（ECA）。被放置的永久缝合线（2）周围的ECA，为尽可能向远侧，和稍紧另一个临时缝合线（3）被放置在远端的ECA分叉。
- 剪辑的左ICA（4）是使用反向动作镊子避免出血。大应当谨慎行事，不伤害迷走神经。
- 到ECA（5）之间永久（2）和临时（3）缝合切开一个小口。
图1B。
- 介绍一个12毫米长的6-0硅涂层（约9-10mm的涂硅）的单丝的缝合（Doccol公司）的ECA（6），完全切断远端永久缝合的非洲经委会和反转的封堵器到ICA 。紧缚缝合线的单丝，以防止出血和周围的反向动作镊子除去。
- 封堵器，Willis环的MCA闭塞的起源。停止其插入超出ECA和CCA分叉处约9-10毫米。封堵器被堵塞，不能动了。必须小心渗透到翼腭动脉。 （3）在ECA的缝合是TIGhtly绑在固定的单丝的位置。
- 关闭的皮肤的autoclip伤口闭合系统。
- 注入1毫升生理盐水溶液皮下和放置在红外加热灯的小鼠在所有的时期（60分钟）后闭塞。
2。大脑中动脉血流的恢复
在reanesthesia之前，neuroscore可以进行检查，以评估成功的手术。
- 麻醉小鼠如前所述，，并移除autoclips。
- 稍微打开缝合到ECA（3），允许单丝撤销和血液灌注。
- 永久的的ECA，以防止失血临时缝合结扎。的单丝保持重用。
- 删除临时缝合（1）到CCA，让血液循环。
- 关闭伤口。这些老鼠应该接受另1 mL生理盐水皮下注射。
- 将小鼠1小时下的红外加热灯。检查的动物重新获得流动性后，鼠标将返回到它的笼子，遗留下72小时的加热垫和毛巾。请注意，只有一半的笼放置在加热垫，以允许选择他们的环境的小鼠。由于手术后的重量损失一般观察，捣碎食物放在培养皿中，鼓励进食。
12小时的手术后，小鼠接受了另一种剂量丁丙诺啡（0.03毫克/公斤BWIP的）。
3。假手术
假手术，所有的程序都是相同的，只是，封堵器未插入。
4。 Neuroscore
神经功能缺损允许再灌注后不同程度的伤害程度后，估计成功的tMCAO的评价。神经功能缺损评分如前所述5 </ SUP> 1，24，48和72小时再灌注后执行。扩大的六分：
- 0：正常。
- 1：轻度或没有不一致旋转时捡到的尾巴转圈行为，<50％到对侧旋转。
- 2：轻度一致盘旋，> 50％到对侧旋转。
- 3：持续强劲，立即盘旋，鼠标拥有超过1-2秒的旋转位置，用鼻子几乎达到了它的尾巴。
- 4：严重的旋转推进到装桶，步行或翻正反射的损失。
- 5：昏迷或奄奄一息。
5。甲酚紫染色（ 图2）
的PBS溶液灌注之后，大脑快速冷冻在异戊烷中，并贮存于-80℃C.小鼠大脑也可以灌注，用4％多聚甲醛（PFA）取决于计划的免疫组化研究。冠状脑切片（17微米）的低温恒温器的快捷方式进行。一节收集了每30同一张幻灯片上有代表性的脑损伤。量量化，2张幻灯片被染成甲酚紫染色和图像分析系统（Scion的公司，冯检基，MD）是用来评估病变。以任意单位（像素）计算损伤体积，并作为每个区段对侧非损伤的面积的百分比表示。其他的幻灯片保持在-80°C免疫组化研究。另外，PFA固定的大脑可以减少在30-50微米，，使用vibratome和脑梗死体积测量的建议，Han 等人（2009）6。
Representative Results
的neuroscore评价证实的tMCAO脑卒中后的成功，并且确定的tMCAO再灌注后的效率。在我们的手中，所有的老鼠至少有一个温和的一致卷曲（neuroscore 2）和神经功能缺损一般是稳定的72小时腔内的过程。大多数小鼠表现出轻度一致的卷曲（neuroscore 2）。没有卷曲的小鼠被排除在研究之外。然而，neuroscore评估不允许我们能够区分小鼠海马受伤的，一个完整的海马。
没有观察到的死亡率在手术当天，表明蛛网膜下腔出血没有发生。当确定在小鼠蛛网膜下腔出血，这个系统从分析中排除。从Doccol公司，这是比家庭自制的单丝光滑，增加了使用的硅涂层单丝成功tMCAO，并降低蛛网膜下腔出血。在这个模型中，24小时和72小时后的死亡率是14％，一般报道为60分钟的阻塞。可能是由于一个大梗死体积的这个小鼠品系的死亡率。还观察到一个强大的病变可重复性（标准偏差为15％），这是非常有趣的研究神经保护作用的分子，可以隐藏他们的影响（S）的模型的变化。
的程度脑损伤tMCAO的评估，我们选择使用甲酚紫染色（ 图2），而不是TTC有大量的材料测试相关的标记6。病变的程度是相对一致的。然而，我们注意到，在一些小鼠，海马受伤（约30％的小鼠）。有趣的是，要注意，甲酚紫染色法可以应用至1周以后。在文献中，脑梗死的百分比从一个不同的研究的。这取决于选择的小鼠品系，麻醉，脑切片的厚度，所用的单丝，或使用6，7的染色。
图1。计划使用硅涂层的管腔内的单丝中脑动脉的闭塞。 A。简化方案的小鼠大脑和脑动脉连续缝合和剪辑的硅涂层，以准备采用单丝。B.通过Willis环的位置，单丝表示。单丝通过 ECA引入ICA，MCA，ACA，大脑前动脉闭塞的基础上，BA，基底动脉，颈总动脉CCA C.威利斯，Willis环; ECA，颈外ARTERY ICA，颈内动脉，MCA，大脑中动脉; PCA，后交通动脉; PPA，翼腭动脉。
图2。甲酚紫染色后72小时再灌注后梗死面积（主要是纹状体，大脑皮层相邻的脑区） 的小鼠脑组织的代表冠状面显示白色（不染甲酚紫）。的损伤体积（白色部分，大脑右半球）分隔和对侧非损伤区域（左侧大脑半球）的百分比表示。
Discussion
不同的行程模型已经发展到模仿患者中风的后果。中风模型的选择取决于对生物的问题。管腔内的MCAO模型模仿患者缺血性脑卒中的最常见的类型之一是微创和更一致的比田村模型4,7。这是一个非常有趣的神经保护作用，neurorepair和细胞死亡的分析模型。腔内模型的成功取决于许多因素，如动物的性别，年龄和体重，温度，麻醉和手术的时间，以进行控制的。封堵器（尖端直径，长度，形状和fexibility）的物理礼模型4的一致性的关键。在此，我们使用12毫米长的6-0单丝上涂有硅Doccol公司从9-10毫米。这种单丝的巨大优势是减少蛛网膜下腔出血，因为它的长度覆盖了所有的ICA长，残留的血流量，其中来自威利斯和PPA圈的前，后交通动脉，防止梗死体积减小的变化（在我们手中15％的变异）。 CCA的缝合线也降低了变异的心肌梗死卷9。
可以通过不同的方式评估脑损伤的程度tMCAO。如前面提到的，可以测量神经功能缺损。然而，这是难以通过这种方式，有一个有效的措施。 TTC染色程度的心肌梗死是常见的表现。最近，磁共振技术也用于神经保护治疗的一个特别有趣的技术。要了解参与行程，如neurorepair，细胞死亡或细胞增殖的细胞机制的基础，不同的标志物免疫组化的研究是至关重要的，内容非常丰富。因此，我们的协议传输醇的脑切片的准备工作，让这些分析具有很大的优势，并最大限度地减少了所用的小鼠。此外，Tureyen 等 10报道，有良好的相关性，间甲酚紫染色法和TTC。
Disclosures
作者有没有利益冲突披露。
生产和免费使用这篇文章是由蔡司公司
Acknowledgments
这项研究是由82946一个CIHR队授予＃CTP，CIHR授予的＃MOP 102741，以及一个加拿大的椅子＃216684和施特劳斯基金会的支持。 ER得到了从加拿大心脏及中风基金会的奖学金。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Stereo microscope |  Zeiss |
Stemi 2000 | |
| Fiber-Light High Intensity Illuminator | Dolan-Jenner Industries Inc. | ||
| Anesthesia system for isoflurane | |||
| Isoflurane | CDMV | 108737 | |
| Heating blanket | Gaymar Medsearch | TP22G | |
| Infrared heating lamp | |||
| Ultra fine tweezers, style 5 | Electron Microscopy Sciences | 78320-5TI | |
| Vannas Scissors 3 mm Cutting Edge, Straight | Electron Microscopy Sciences | 72932-01 | |
| Style LA-1 and MPF-1 All smooth blades | Electron Microscopy Sciences | 77926-5S | |
| Negative action tweezers, style KOPINC 5 | Electron Microscopy Sciences | 72850-F | |
| Dissecting scissors 5 1/2" Straight | Cedarlane | 72960 | |
| Autoclip starter set | Harvard apparatus | 34-0557 | |
| BD Autoclip Wound Closing Syst., 9mm long,100/pk | Fisher | 01-804-5 | |
| 5-0 suture | Harvard apparatus | 517763 | |
| Suture material PDS II monofilament violet, 5-0, RB-1; Z303H | CDMV | 6167 | |
| 12 mm-long 6-0 silicon-coated monofilament suture | Doccol Corporation | 60SPRePK5 | |
| Seringes 1ml | Fisher | 14-823-2F | |
| Needles 26G1/2 | Fisher | BD-305111 | |
| C57BL/6 mice | IRCM |
References
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