Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Medicine

挫傷、脊髄損傷の新規な製造脊椎安定化法

Published: January 5, 2015 doi: 10.3791/50149
* These authors contributed equally

Summary

椎骨の安定化は、変動性を最小化するための、一貫性の実験的脊髄損傷を生成するために必要である。 NYU / MASCISインパクター装置と組み合わせてカスタマイズされた安定化装置を使用して、我々はここに、成体ラットにおける再現性のヘミ挫傷子宮頸部(C5)脊髄損傷を生成するための適切な機器および手順を示した。

Abstract

臨床的に関連する動物頸椎脊髄損傷(SCI)のモデルは、潜在的な治療法の開発およびテストのために不可欠である。しかしながら、信頼性のある子宮頸部SCIを製造することにより、椎骨の安定化の良好な方法がないために困難である。背骨を安定させるための従来の方法は、子宮頸部の棘突起に取り付けるクランプ経由吻側および尾側頸椎を中断することです。しかし、この安定化方法は、頚椎のプロセスが効果的に( 図1)クランプによって固定することには短すぎるよう挫傷中に生じる組織を防止することができない。ここでは、完全に衝突損傷の同じレベルで頚椎を安定化するための新しい方法を紹介します。この方法は、効果的に非常に一貫性のあるのSCIの生産性が向上インパクトの部位で脊柱の動きを最小限に抑えることができます。私たちは、機器( 図2-4)の視覚的な説明を提供、方法sであり、成体ラットの子宮頸部椎骨5(C5)の安定化のためのステップバイステップのプロトコル、椎弓切除( 図5)を実行した後、挫傷性SCIを生成する。我々は唯一のNYU / MASCISインパクター装置を用いて子宮頸部ヘミ挫傷を実証するが、この椎骨安定化技術は、脊髄の他の領域に適用することができ、または他のSCIデバイスに適合させる。脊椎の安定化を通じて脊髄露出と固定を改善することは、脊髄への一貫性と信頼性の傷害を製造するための価値がある。この椎骨の安定化方法はまた、細胞およびトレーサーの定位注射、および様々な神経生物学的研究において二光子顕微鏡を用いた撮像のために使用することができる。

Introduction

ターゲット脊髄組織に一貫性のある複製可能な機械的な力は、機能的および組織学的変動性を最小にするための成功挫傷、脊髄損傷(SCI)モデル1-7を確立するために重要である。脊髄の標的領域に適用される力の量は、脊椎安定化のために利用される方法に依存する。インパクトプランジャと脊髄の間の接触時の目標背骨の位置ずれが生じた傷害力を変化させる。子宮頸部挫傷SCIモデルは、ヒトSCIの症例の約50%がこのレベル8で発生し、そしていくつかのSCI試験は、動物の子宮頸部損傷モデル9-14を使用して実施された、SCIの他の形態よりも多くの臨床的に関連するモデルである。挫傷性SCIモデルは、多くの場合、損傷部位に棘突起の前方および後方にクランプすることにより安定化のいくつかのフォームを利用しているが、この調製物は、子宮頸部SCIを製造することは困難である。  このデモに示すように、我々が開発した安定化方法は、挫傷の品質と再現性の両方を増加する能力において有利である。特に、脊椎の安定化のこの方法は、他のモデルの欠点や課題を改正しようとする試みに設立されました:1)衝撃力の下で得た椎の変動は、椎弓切除に吻側および尾側に隣接し、背棘突起をクランプすることによって発生する可能性があります。椎骨シフトの程度は影響した( 図1)安定化されている椎骨の間の椎骨の関節の数に依存する。そのため、複数の関節、脊椎になるあまり安定関与。 2)背側棘突起は壊れやすく、棘突起骨折またはプロセスの滑り落ちるクランプの結果、クランプ不良の原因。 3)これらの脊椎骨に棘突起は、胸部ヴェールのものと比較してT1椎骨C3との間で非常に短いです従来のクランプを使用してそれを困難にブレイは、頚椎を安定化するための棘突起を把握する。

ここでは、成体雌Sprague-DawleyラットにおけるC5挫傷性SCIを製造するための脊椎を安定化する新規な方法を記載する。この方法は、ニューヨーク大学/多施設動物脊髄損傷の研究(NYU / MASCIS)を含め、他の挫傷SCIデバイスと同様に他の脊柱と脊髄のレベル、および複合体の安定化のために使用することができインパクター15( 図2) SCIの研究で広く使用を可能にする、高精度、システムおよび計装、LLC無限ホライゾン(IH)デバイス16、オハイオ州立大学/電磁脊髄損傷デバイス1、及びルイビル傷害システム装置(LISA)17、。

Protocol

頚椎ラミナの1.暴露

  1. 70%エタノール外科表面を洗浄、加熱パッドであらかじめ温めた。手術領域に滅菌ガーゼ、綿棒、およびオートクレーブ手術器具を配置する前に、滅菌外科用ドレープとの表面を覆う。手術器具の間手術滅菌用のマイクロビーズ滅菌器を使用してください。
  2. ケタミン(87.7 mg / kgを)/キシラジン(12.3 mg / kgを)を腹腔内(IP)を持つラットを麻酔。麻酔の適切な面は、動物がつま先のピンチ刺激に反応しなくなったときに到達した。皮下0.01-0.05 mg / kgをブプレノルフィン及び5mg / kgのカルプロフェン外科手術の前に注入する。ブプレノルフィンは、その後手術後最初の4-7日間、一日一回ごとに8〜12時間とカルプロフェンを投与すべきである。
  3. 手術中に角膜の乾燥を防ぐために動物の目に保護軟膏を適用します。
  4. 背側に手術領域を剃るバリカンで頭の後ろに半ば胸部領域からのラットの表面。 HEPAフィルターを装備した真空を使用して剃り毛皮を削除します。
  5. 70%のイソプロピルアルコールワイプでエリアを清掃した後、外科スクラブとして剃っエリアにベタジンソリューションを適用します。
  6. 尾半ば胸部に頭のベースから皮膚3-4センチ正中切開を行うために手術用メスの刃を使用してください。
  7. 下の首に冬眠腺に筋膜および皮下筋肉前方の正中線を特定する。出血を減らすために正中線に沿って僧と他の筋肉を切断。
  8. 筋肉の基礎となる脂肪組織の2つの領域の正中線を探す。棘突起に達する胸部T2のレベルまで、小さな組織開創器を用いて正中線に沿って尾側に厳密傍脊椎筋を切断し、個別の筋肉層。
  9. THIを利用するT2棘突起に接続されている筋肉を識別し、切り取る解剖学的ランドマークとしての構造。
  10. 頸椎の​​視認性を向上させるT2棘突起の軟骨先端を削除します。
  11. 棘突起とC4-T1のラミナから横方向に傍脊柱筋を分離。しかし、出血を防ぐために、C3のラミナでカバーする筋肉を惜しま。
  12. 脊柱の両側のファセットに向かって横方向にC4-T1からラミナの上の筋肉をカットします。
  13. 脊椎椎弓板が露出された後、安定剤のU字型チャネルでの腹側表面上に動物を置く。
  14. T1、C7、C6、そして最終的にはC5へのT2ランドマークから吻側棘突起をカウントすることにより、C5の椎骨を特定します。

2.椎骨を安定化させ、インパクト傷害の実行

  1. Lateraの下にアームの鋸歯状の縁部を配置することによって、動物を一時停止する安定剤の2つのステンレス鋼の腕を位置決めするC5-6脊椎( 図1C)のLファセット。 ( 図2B)の場所に脊椎骨と腕を固定した後、脊柱がレベルと中央にあることを確認するために、安定化装置を調整します。最後に、安定剤のつまみネジを締めて腕をロックします。
  2. C5のラミナのマージンを識別するために、C 4-5とC5-6での脊髄プロセスとラミナ間の靭帯をカット。
  3. SCI( 図5C-E)のために意図したように、マイクロ骨鉗子を用いて、C5での右側のラミナの半分を離れてクリップ。椎弓切除した後に、傷害デバイスの下に安定剤で動物を輸送する。正確に横方向のマイクロマニピュレーター(図3)を使用して、脊髄ターゲットにプランジャーを整列させるためのマウント( 図3A-C)で安定剤と一緒に動物を固定します。
  4. 高倍率下では、デュずに露出背側脊髄表面にC5とC6後根エントリゾーン(DREZs)を見つけrotomy。 2特定さDREZsと正中線と脊髄( 図5B)の横方向の縁部との間の途中の中間にプランジャーを目指す。
  5. 2.5ミリメートル径の先端部( 図3A&B)でNYU / MASCISインパクターデバイスを使用して、10グラム棒X 12.5ミリメートルの高さの低下( 図2A)によりC5ヘミ挫傷( 図5B&E)を生成する。
  6. 図5(e)、矢印)脊髄にあざによって視覚的に損傷を確認し、NYUソフトウェア12,17( 図6)により提供される傷害のパラメータをチェック。
  7. 縫合糸の筋肉と無菌4-0ビクリル縫合糸により、軟組織は、その後、外科用ステープル(EZクリップ)で皮膚切開を閉じます。
  8. 手術部位への抗菌軟膏を適用します。
  9. 水分補給のために動物に滅菌0.9%生理食塩水を皮下の5.0ミリリットルを管理します。
  10. 暑さの中で動物を置きます湿った寝具(毎日交換)に設けられ、食品、およびケージの床に置か簡単にアクセスするための長い注ぎ口に水のボトルを持つ-controlled環境(加熱パッド上に温水padcageを再循環))。ホームケージに動物を返す前に十分な回復を確実にするためにケアを提供。
  11. これは一方的な頚椎挫傷傷害であるため、動物はおそらく損傷後の最初の数週間の間に回復し始める、一過性に、同側の前肢の機能を失うことになる。しかし、反対側の機能は、このように、動物が食べて、減損なしで飲むことができるはずです、そのまま残り、歩行やグルーミングでわずかな障害を持っている必要があります。

Representative Results

このプロトコルを、以下の時に、一貫して再現性の子宮頸部ヘミ挫傷性SCI( 図5および6)が生成される。 SCIのために意図されたレベルの同じ椎骨の横方向のプロセスを安定させる椎骨安定剤の使用は、満足な結果を可能にする。この方法を使用して、ターゲットC5椎骨が、隣接C4及びC6のみならず、堅く固定されている。

NYU / MASCISソフトウェアは、x及びy軸上に設定されたグラフで読み出しを提供し、我々の椎骨安定化方法の使用をサポートし、および装置( 図6)。安定化のこの方法は、標的組織及び脊柱( 図1)の下方へのシフトから生じる傷害の変動を減少させる。損傷後、C5とC6 DREZsの間の中心に明確な一方的な青みがかった血腫が見える( 図5E)です。これらの損傷パラメータは、動物から肛門に一致しているNYU / MASCISソフトウェアが提供する読み出しに従ってMAL( 図6)。

子宮頸ヘミ挫傷が明確前肢の赤字を作成するように、このモデルは、到達13グルーミング 、およびオブジェクトの操作18-19として前肢機能的能力を評価するのに理想的です。後肢運動障害はあまり顕著であるとして、バッソ、ビーティーとブレスナハン(BBB)運動スコアリングスケール4、このモデルでの使用には適していません。損傷後の機能転帰は、ラットは、すべての桁が18を屈曲して拳を「こん棒」発揮する同側の前肢の伸筋赤字、最も顕著です。同じ傷害の重症度および脊髄のレベルにさらさ​​れるすべての動物は正しい傷害の際に、このプロトコルに示した同側の前肢、同様の赤字を示すべきである。不適切に負傷した動物は、赤字13,18の非常に異なる症状と期間を呈することがある。

組織学的には、このモデルは、脊髄の傷害を受けた側の中、ほぼ独占的に含まれているかなりの病変と空洞形成につながる、損傷部位への傷害の震源地と吻側および尾側での大規模なグレーと白質の損傷を生成します。大規模な神経細胞死18病変の境界で大きな、主にアストロサイトベースのグリア性瘢痕が形成される。

図1
図1:異なるクランプ方法挫傷SCI中の脊柱の柔軟性のイラスト。図ABは、柔軟性や棘突起が不適切な影響と一貫性のないデータを考慮して、背側クランプされている背骨の「降伏」。 Aに示す図は、インパクト時より柔軟(赤い破線が表示されますそして大きい曲線の矢印に)B(小さ ​​な曲線の矢印で示されたものと比較して)、クランプは、椎弓切除および損傷部位から離れているように、 図Cはしっかりの横断プロセスの下で締め付けの安定化アームを我々の記載された装置との横方向の安定性を示すインパクトのサイトが実行されます椎骨。興味の椎骨が完全に安定するように、この手順の間に背骨のない柔軟性が、ありません。

図2
図2:NYU / MASCISインパクとカスタム安定化コンテナ。図Aは、損傷の重症度(挿入)するための複数の棒の高さの設定で、NYU / MASCIS脊髄損傷装置の部品と機能を表示する。 図B及びCが保持するU字型の容器を示しているラット、及び安全に手術やけがの際に脊柱を安定させる鋸歯状の安定化アーム(YP張によって設計され、生成される)。

図3
図3:NYU / MASCISインパクター上のカスタムマウントシステムと横microadjuster図Aは、脊髄損傷のためのU字型ラットの安定剤用のカスタム実装システムのさまざまなコンポーネントについて詳しく説明します。傷害ラット脊髄の正確な位置合わせのために重要な、 図形Aの横microadjusterに注意してください。 図B及びCは、(B)を使用せずに、その他の重要なに対してU字型ラットコンテナ(C)と安定剤のさらなる描写を提供傷害装置の構成要素は、(実装システム設計、YP Zによって生成ハング)。

図4
図4:外科安定化装置と添付ファイルの個々の成分の測定は、カスタム安定化システムの各構成要素は、寸法およびスケール(A、C、およびD)を示すために強調表示される。胸部安定化アーム(B)は 、異なる脊椎外科モデルにおける使用のためのこの装置の潜在的なアプリケーションを示すことが示されている。

図5
図5:手術のランドマークと子宮頸ヘミ挫傷、脊髄損傷のための準備。図ABは 、適切IMPAの正しいランドマークを描く暴露ラットの脊髄上のCTアラインメント。適切な衝撃点は、C5とC6背側神経根(吻側-尾側)と正中線と脊髄(B)の側縁部との間に直接的である。 図CEを示し、より高い倍率で、所望の半分を露出させる工程慎重な一方的椎弓切除を通して怪我のために頸髄、。また、D及びEは、直前および脊髄挫傷損傷後のコードを実証する数字 。インパクト(黒矢印)によって引き起こされる目に見える出血(E)に注意てください。

図6
図6 :. NYU / MASCISインパクとの衝突以下の容認できないデータ読み出しに対する許容できるの例。上のグラフ(A)と、先頭のデータセット(C) (B)の安定化誤差に起因する不適切な衝撃によって生成されたデータを示してい(C)。赤い矢印と下線で示したように、かなりの誤差は、初期の高さのために示され、インパク降下の開始時刻に注意してください。ソフトウェアは、エラーが、これらのパラメータ(パネルCの下部)が検出されたことを警告する。

Discussion

ここでは、C5での一方的な挫傷性SCIを製造するための頸椎の安定化方法を示した。この安定化法は、解剖学的に外傷の精度が向上し、一貫性のある機能的な赤字の13,18を生成ます。棘突起の背側のクランプに依存する他のモデルでは、椎骨からクランプの棘突起の損傷または剥離の危険性が非常に高い。これらのモデルには、かなりの背骨がシフトし挫傷力と背骨の柔軟な性質及びせき柱( 図1AおよびB)から得可能にすることができる。組織を変化させるプランジャ組織接触時間をもたらすと予測不可能な損傷力( 図1A-B&6B)をもたらす。私たちの記載された椎安定化はまた、外科準備に他の利点を提供します。1)このメソッドは完全に下にC5を中心とした脊椎骨を安定させる椎弓切除術( 図1C)の精度を向上させる外科用顕微鏡。 2)動物がU字型の安定剤内に取り付けSCIデバイス上で動物を再装着の手順を回避し、時間を節約し、カスタマイズされた取付金具に外科場所から直接取り出すことができる。別の尺度は、変動性を減少させ、3)傷害レベルで椎骨を安定化し、直接大きく呼吸に起因する身体の動きを減少させることができる損傷の意図された部位に背側及び尾。

この安定化方法を利用する主な利点は、降伏の減少量、または衝突時脊髄および列の腹側の移動である。挫傷の単純な物理学に基づいて、衝撃力とエネルギーは、理想的にインパクトのサイトでこのエネルギーを吸収するコードを使用して、脊髄へのロッドから転送されます。しかし、コードの下の背骨の利回り場合、可能であるなら背側棘クランプ方式( 図1A&B)において、コードに適用される実際の力は減少し、変数、歩留まりの程度に応じている。

このビデオは、子宮頸部挫傷SCIモデルの全体の手順を示しているが、この記事の本質は、特にSCI研究のために、私たちは私たちの研究室で様々な用途に使用する脊椎安定化方法の紹介です。この安定化装置及び方法の修正版は、マウスSCI 23で使用されてきた。脊椎安定化のこの簡単な方法は、SCIの研究のために非常に有用であり、我々は以前に胸部挫傷など裂傷SCIモデルを実行するには、この方法と装置を使用している。もう一つの研究室では最近、このジャーナル22で頸椎損傷のための安定化のこの形態の変化を説明した。要約すると、我々はいくつかのsurgicにこの新規椎体安定化方法をご紹介椎弓切除から傷害の生産に至るまで再現可能な実験的なSCIを生成するためのアル手続き。この安定化方法は、大槽、片側切断および離断損傷から内、脊髄内注射、細胞移植、CSFのコレクションとして実験の多種多様のために適合されているように、この安定化装置の利点は、子宮頸部脊髄挫傷に限定されないが、 in vivoイメージングの胸部挫傷は、二光子顕微鏡、および脊髄電気生理学的記録を使用する。脊椎外科と傷害手続きの質を高め、実験的なばらつきを低減することは傷害と回復の真のメカニズムへの洞察を提供するのに役立つ、とSCIの壊滅的な障害に対する異なる治療の効果を選別します。

Disclosures

私たちは、開示することは何もない。

Acknowledgments

この作業は、[X-MXにNS36350、NS52290、およびNS50243]国立衛生研究所によってサポートされていました。マリ·ハルマン·ジョージ基金基金。インディアナ州。とルースL.キルシュシュタイン国立研究サービス賞(NRSA)CLWに1F31NS071863

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Purdue Products Betadine Surgical Scrub Fisher Scientific 19-027132
Dukal Gauze Sponges Fisher Scientific 22-415-490
Ketamine (87.7 mg/kg)/Xylazine (12.3 mg/kg) Webster Veterinary 07-881-9413, 07-890-5745
Decon Ethanol 200 Proof Fisher Scientific 04-355-450
Artificial Tears Eye Ointment Webster Veterinary 07-870-5261
Antiobiotic Ointment Webster Veterinary 07-877-0876
Cotton Tipped Applicators Fisher Scientific 1006015
Rongeur Fine Science Tools 16000-14
Surigical Scissors Fine Science Tools 15009-08
Scissors (blunt dissection) Fine Science Tools 14040-10
Surgical Retractor Fine Science Tools 17005-04
Large Forceps Fine Science Tools 11024-18
Fine Forceps Fine Science Tools 11223-20
Hemostat Fine Science Tools 13004-14
Scalpel Fine Science Tools 10003-12
Scalpel Blade #15 Fisher Scientific 10015-00
EZ Clips Fisher Scientific 59027
Sterile sutures Fine Science Tools 12051-10
Instrument Sterilizer Fine Science Tools 14040-10
Surgical Stabilizer Custom Manufactured N/A Contact Y. Ping Zhang for details. (yipingzhang50@gmail.com)
Vertebral Stabilization Bars (clawed endfeet) Custom Manufactured N/A Contact Y. Ping Zhang for details. (yipingzhang50@gmail.com)
NYU/MASCIS Impactor Device Custom Manufactured W. M. Keck Center for Collaborative Neuroscience
Rutgers, The State University of New Jersey
e-mail: impactor@biology.rutgers.edu

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Noyes, D. H. Electromechanical impactor for producing experimental spinal cord injury in animals. Med. Biol. Eng. Comput. 25 (3), 335-340 (1987).
  2. Behrmann, D. L., Bresnahan, J. C., Beattie, M. S., Shah, B. R. Spinal cord injury produced by consistent mechanical displacement of the cord in rats: behavioral and histologic analysis. J. Neurotrauma. 9 (3), 197-217 (1992).
  3. Stokes, B. T., Noyes, D. H., Behrmann, D. L. An electromechanical spinal injury technique with dynamic sensitivity. J. Neurotrauma. 9 (3), 187-195 (1992).
  4. Basso, D. M., Beattie, M. S., Bresnahan, J. C., Anderson, D. K., Faden, A. I., Gruner, J. A., Holford, T. R., Hsu, C. Y., Noble, L. J., Nockels, R., Perot, P. L., Salzman, S. K., Young, W. MASCIS evaluation of open field locomotor scores: effects of experience and teamwork on reliability. Multicenter Animal Spinal Cord Injury Study. J. Neurotrauma. 13 (7), 343-359 (1996).
  5. Jakeman, L. B., Guan, Z., Wei, P., Ponnappan, R., Dzwonczyk, R., Popovich, P. G., Stokes, B. T. Traumatic spinal cord injury produced by controlled contusion in mouse. J. Neurotrauma. 17 (4), 299-319 (2000).
  6. Young, W. Spinal cord contusion models. Prog. Brain Res. 137, 231-255 (2002).
  7. Ghasemlou, N., Kerr, B. J., David, S. Tissue displacement and impact force are important contributors to outcome after spinal cord contusion injury. Exp. Neurol. 196 (1), 9-17 (2005).
  8. DeVivo, M. J., Chen, Y. Trends in new injuries, prevalent cases, and aging with spinal cord injury. Arch. Phys. Med. Rehabil. 92 (3), 332-338 (2011).
  9. Onifer, S. M., Rodríguez, J. F., Santiago, D. I., Benitez, J. C., Kim, D. T., Brunschwig, J. P., Pacheco, J. T., Perrone, J. V., Llorente, O., Hesse, D. H., Martinez-Arizala, A. Cervical spinal cord injury in the adult rat: assessment of forelimb dysfunction. Restor Neurol Neurosci. 11 (4), 211-223 (1997).
  10. Schrimsher, G. W., Reier, P. J. Forelimb motor performance following cervical spinal cord contusion injury in the rat. Exp. Neurol. 117 (3), 287-298 (1992).
  11. Soblosky, J. S., Song, J. H., Dinh, D. H. Graded unilateral cervical spinal cord injury in the rat: evaluation of forelimb recovery and histological effects. Behav. Brain Res. 119 (1), 1-13 (2001).
  12. Pearse, D. D., Lo, T. P. Jr, Cho, K. S., Lynch, M. P., Garg, M. S., Marcillo, A. E., Sanchez, A. R., Cruz, Y., Dietrich, W. D. Histopathological and behavioral characterization of a novel cervical spinal cord displacement contusion injury in the rat. J. Neurotrauma. 22 (6), 680-702 (2005).
  13. Gensel, J. C., Tovar, C. A., Hamers, F. P., Deibert, R. J., Beattie, M. S., Bresnahan, J. C. Behavioral and histological characterization of unilateral cervical spinal cord contusion injury in rats. J. Neurotrauma. 23 (1), 36-54 (2006).
  14. Anderson, K. D., Sharp, K. G., Steward, O. Bilateral cervical contusion spinal cord injury in rats. Exp. Neurol. 220 (1), 9-22 (2009).
  15. Gruner, J. A monitored contusion model of spinal cord injury in the rat. J. Neurotrauma. 9 (2), 123-126 (1992).
  16. Scheff, S. W., Rabchevsky, A. G., Fugaccia, I., Main, J. A., Lumpp, J. E. Jr Experimental modeling of spinal cord injury: characterization of a force-defined injury device. J. Neurotrauma. 20 (2), 179-193 (2003).
  17. Zhang, Y. P., et al. Spinal cord contusion based on precise vertebral stabilization and tissue displacement measured by combined assessment to discriminate small functional differences. J Neurotrauma. 25 (10), 1227-1240 (2008).
  18. Walker, C. L., Walker, M. J., Liu, N. K., Risberg, E. C., Gao, X., Chen, J., Xu, X. M. Systemic bisperoxovanadium activates Akt/mTOR, reduces autophagy, and enhances recovery following cervical spinal cord injury. PLoS One. 7 (1), e30012 (2012).
  19. Irvine, K. A., Ferguson, A. R., Mitchell, K. D., Beattie, S. B., Beattie, M. S., Bresnahan, J. C. A novel method for assessing proximal and distal forelimb function in the rat: the Irvine, Beatties and Bresnahan (IBB) forelimb scale. J. Vis. Exp. (46), 2246 (2010).
  20. Martinez, M., Brezun, J. M., Bonnier, L., Xerri, C. A new rating scale for open-field evaluation of behavioral recovery after cervical spinal cord injury in rats. J Neurotrauma. 26 (7), 1043-1053 (2009).
  21. Cao, Q., Zhang, Y. P., Iannotti, C., DeVries, W. H., Xu, X. M., Shields, C. B., Whittemore, S. R. Functional and electrophysiological changes after graded traumatic spinal cord injury in adult rat. Exp. Neurol. 191 Suppl 1, S3-S16 (2005).
  22. Lee, J. H., Streijger, F., Tigchelaar, S., Maloon, M., Liu, J., Tetzlaff, W., Kwon, B. K. A Contusive Model of Unilateral Cervical Spinal Cord Injury Using the Infinite Horizon Impactor. J. Vis. Exp. (65), e3313 (2012).
  23. Zhang, Y. P., Walker, M. J., Shields, L. B. E., Wang, X., Walker, C. L., Xu, X. M., et al. Controlled Cervical Laceration Injury in Mice. J. Vis. Exp. (75), e50030 (2013).

Tags

医学、問題95、脊椎、椎骨、脊椎、脊髄損傷、モデル、安定化
挫傷、脊髄損傷の新規な製造脊椎安定化法
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Walker, M. J., Walker, C. L., Zhang, More

Walker, M. J., Walker, C. L., Zhang, Y. P., Shields, L. B. E., Shields, C. B., Xu, X. M. A Novel Vertebral Stabilization Method for Producing Contusive Spinal Cord Injury. J. Vis. Exp. (95), e50149, doi:10.3791/50149 (2015).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter