Introduction
이 프로토콜에서, 우리는를 사용하여 siRNA를 마우스 대식 세포주에서 유전자를 억제하고 선천성 면역 반응에 대한 이러한 치료의 효과를 모니터링하는 효율적인 방법을 설명한다. 이러한 절차는 중간 또는 높은 처리량 방식 RNAi의 스크린을 허용 96- 웰 포맷에서 수행된다.
감염에 응답하여, 인간은 즉각적인 선천성 면역 반응과 더 느리지 만 특정 적응성 면역 반응을 탑재. 이 빠른 선천성 면역 반응은 대 식세포 (1)을 포함하여 식세포 선천성 면역 세포의 모집 및 활성화를 포함한다. 클래식 활성화 대 식세포는 급성 염증 반응에 관여하는 항균 단백질과 화합물, 사이토 카인과 케모카인 및 현재 항원 2,3를 생산하고 있습니다. 또는 활성화 된 대 식세포는 허용 오차, 조직 복구를 유지, 면역 조절에 중요한 역할을하고, 4-8 상처 치유. 때문에 기능의 그들의 다양한의대 식세포는 죽상 동맥 경화증, 관절염, 암 (9)을 포함하여 다수의 질병에서 역할을 할 수있다. 따라서, 대 식세포의 연구는 질병 다양한 분야에서 오랫동안 연구의 핵심 영역이었다.
선천성 면역 반응에서 그 중요성에도 불구하고, 대 식세포와 함께 작동하도록 세포를 도전 할 수 있습니다. 특히, 관련된 독성 10,11없이 식세포 지질 시약을 사용하여 형질 전환을 효율적으로 얻는 것이 곤란하다. 또한, siRNA를 효율적 식세포로 전달되는 경우에도, 종종 넉다운 RNAi를 유도 유전자의 견고성 상당히 온건 할 수 있고, 유전자로 유전자로부터 변할 수있다.
이러한 기술적 과제를 극복하기 위해, 우리는 두 마우스 대식 세포주 RAW264.7 17 J774A.1 18 형질 감염 및 녹다운 기술 12-16을 최적화했다. 이 방법은 형질 전환을위한 Amaxa Nucleofector 96 웰 셔틀 시스템을 사용합니다; 이 시스템96- 웰 포맷 (19)에서 세포를 형질 감염 할 특수 시약 및 전기의 조합을 사용한다. 형질 전환에 따라, 우리는 방법 세포 복구 및 생존 능력을 극대화하기 위해 이후의 siRNA에 의한 유전자 최저을 극대화하기 위해 설명합니다. 이 접근 방법의 유용성을 설명하기 위해 리포 폴리 사카 라이드 (LPS)로 이들 세포를 자극하고, 여러 가지 전 염증성 사이토 카인의 생산 수준에서의 선천성 면역 반응을 모니터링, 이들 대 식세포 세포주에 대한 siRNA의 전달을위한 프로토콜을 기술한다. 우리는 우리가 회원 LPS와 다른 병원체 관련 분자 패턴 (PAMPs가)를 감지, 선천성 면역을 조절하는 수신자 같은 수용체 (TLR) 가족을 대상으로하는 샘플 데이터를 제공합니다.
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Protocol
대 식세포 세포주 1. 유지 보수
- RAW264.7 성장 및 DMEM에서 J774A.1 세포주 5 % CO 2 존재하에 37 ºC에서 10 % 소 태아 혈청 (FBS)으로 보충. , 불임을 유지하는 데 도움이 (이 반드시 필요한 것은 아니지만) 미디어에 1 % 페니실린 / 스트렙토 마이신 (펜 / 연쇄상 구균)를 추가합니다.
- 중요한 단계 : 대 식세포는 효율적인 형질과의 siRNA에 의한 유전자 최저의 건강한 상태로 성장하고 있는지 확인합니다. 이들 대 식세포 라인 가장 형질 효율을 발휘하고,이 단계에서의 강력한 후 형질 생존을 유지하는 것처럼, 신선한 해동 후 유로 (3) 및 (10) 사이의 세포를 사용하여; 양이 크게 감소 녹다운 형질 전환 효율과 유전자로서, 높은 통로 번호 (> 20)을 사용하지 않는다.
- 세포가 더 이상 80 % 합류점에 도달하지 않을 때까지 최적화 된 siRNA 형질 감염의 경우, 플레이트 20 % 컨 플루 언시 세포는 하루 또는 이틀 성장. 자란 세포는 effic 트랜하지 않습니다iently.
2. 형질의 96 웰 셔틀 시스템 프로그래밍
- 셔틀 버스에 연결된 컴퓨터의 96 웰 셔틀 소프트웨어를 시작합니다. 왼쪽 상단의 파일 메뉴에서 새로운 매개 변수 파일을 선택합니다.
- 표시 96 웰 플레이트 회로도에 형질 전환 될 우물을 강조 표시합니다. 녹색 상자가 선택되어있는 우물 표시됩니다.
- 개념도 96 웰 플레이트 아래에있는 (J774A.1에 대한 RAW264.7 또는 DS-130 DS-136)를 사용하고 적용을 선택 대식 세포주에 해당하는 프로그램을 선택합니다. 프로그램을 선택한 후, 회로도 접시에 우물이 어두운 푸른 색이 될 것이라고합니다. 빈 동그라미는 프로그램이 할당되지 않았으며 충격되지 않습니다 우물을 나타냅니다.
3. 형질에 대한 시약 준비
- SF 세포주 혼합하여 작업 Nucleofector ™ 솔루션을 준비 96 웰 Nucleofector ™ 솔루션동봉 보충 관의 전체 내용. 혼합 시약은 사용하기 전에 실온에서 평형을 허용합니다. 나중에 사용하기 위해 최대 3 개월까지 4 ºC에서 초과 완전한 Nucleofector ™ 솔루션을 저장합니다.
- 사전 따뜻한 형질 대한 대 식세포를 제조하기 전에 37 ºC에서 DMEM, RPMI-1640, 0.25 % 트립신 / EDTA, 인산염 완충 식염수 (PBS).
- 얼음에 해동에 의해 형질 전환에 대한 siRNA를 준비. 된 siRNA의 동결 녹아서의 수를 최소화하기 위해, 분취 그들이 사용되는 처음 새로운 siRNA를 동결.
- 초기 실험에서, (20 μM 종목에서 1:10 희석) 2 μM의 비교적 높은 투여 량의 siRNA를 사용한다. 일반적으로 더 높은 투여 량은 다른 세포 유형에 비해 대 식세포에서 효율적인 유전자 녹다운 필요한되지만이어서, 저용량까지 넉다운 강력한 유전자 유도 된 siRNA를 적정한다.
참고 : siRNA를 여러 소스에서 사용할 수 있습니다; 매우 강력한 유전자 녹다운을 얻을 수있다각각의 유전자를 대상으로 네 개의 siRNA를 풀을 수 있습니다 siGenome의 SMARTPOOLs를 사용. 음성 대조군으로, 다양한 비 대상으로 siRNA를 풀 또는 siRNA를의 사용. - , 형질 전환 효율을 모니터링 siRNA를 실험에 평행 pmaxGFP 제어 (Amaxa 키트에서 제공) 플라스미드 또는 형광 표지 된 siRNA를 형질한다. GFP 플라스미드의 30 % ~ 50 %의 형질 전환 (현미경으로 분석 또는 형질 전환 후 하루 유동 세포 계측법)과 (형질 전환 및 복구 후 세포 계측법 즉시 흐름에 의해 분석) 형광 표지 된 siRNA의> 99 %의 형질 전환을 기대합니다.
4. 형질의 대 식세포를 준비
- 트립신으로 세포 배양 접시에서 대 식세포를 분리합니다. 미디어를 대기음 10 ml의 PBS로 두 번 세포를 씻으십시오. PBS를 제거한 후, 함께 세포 배양 세포를 분리하기 시작 때까지 1-2 분 동안 0.25 % 트립신 / EDTA (1 ㎖ / 10cm 플레이트를) 미리 예열. 조심스럽게 접시를 누르고 SOLU 이동배양시 기는 트립신을 극대화한다.
- 배양 후, 멸균 튜브에 피펫 팅하여 세포를, 9 ml의 DMEM + FBS 미디어를 추가 위아래로 부드럽게 혼합하고 수집합니다.
- 혈구를 사용하여 고립 된 대 식세포의 수를 계산합니다. 10cm 접시 당 약 1000 만 대 식세포를 기대합니다. 필요한 식세포의 총 수를 계산; 잘 96 - 웰 셔틀에 각각 20 만 셀을 필요로한다. 피펫 손실을 허용하는 세포의 몇 가지 추가 우물 '의 가치를 추가해야합니다.
- 원심 분리 튜브에 세포의 수를 계산 피펫. 실온에서 150 XG에서 10 분 동안 세포를 원심 분리기. 이 대 식세포의 건강과 형질 전환 효율을 감소하므로 너무 빨리 원심 분리하지 마십시오.
siRNA의와 대 식세포의 5 Nucleofection
- (시약 손실을 최소화하면서 혼합을 용이) 멸균 96- 웰 둥근 바닥 플레이트를 사용하여 각 웰 될 TRANSF 각각의 siRNA의 2 μl를 추가반사 된.
주 : siRNA를 수에 따라, 이것은 식세포 원심 분리 단계 동안 달성 될 수있다. - 원심 분리하여 세포에서 미디어를 대기음. 부드럽게 펠렛 200,000 세포 당 20 μl를 이용하여, (보충 용액 함유) Nucleofector ™ 솔루션 SF에서 세포를 재현 탁. 재현 탁하면, 최적의 형질 즉시 세포를 사용합니다.
- 멸균 구유에 재현 탁 세포로 이동; siRNA가 들어있는 96- 웰 플레이트의 각 웰에 전사 재 부유 세포 혼합액 20 μL를, 멀티 채널 피펫을 사용. 부드럽게 피펫 아래로 섞는다.
- 이전 96 웰 Nucleocuvette ™ 플레이트에 세포 / siRNA의 혼합물의 20 μl의 중요한 단계 :.이 Nucleofection 동안 오류를 유도 할 수있는 전송 단계에서 기포가 발생하지 않도록.
- 형질 전환 플레이트에서 실험 모든 샘플을 배치 한 후, 제공된 뚜껑과 수직로드 96- 웰 플레이트 커버Y는 부드럽게 샘플에서 모든 거품을 제거하기 위해 딱딱한 표면에 누릅니다.
- 프로그램 화면의 오른쪽 아래에 '업로드 시작'96 웰 Nucleofector 셔틀에 뚜껑이있는 96 웰 플레이트를 놓고 선택합니다. Nucleofection 이전에 결과를 저장하기 위해 프로그램의 프롬프트를 따르십시오.
참고 : Nucleofection 과정에서 성공적으로 tranfected 우물 더하기 기호가있는 녹색 원으로 화면의 96 웰 회로도에 묘사됩니다. 마이너스 (-) 기호가있는 빨간색 원으로 인해 기포 나 잘못 피펫 팅 시약의 올바른 볼륨을, 가장 가능성이 오류를 나타냅니다.
6. 복구 및 대 식세포의 도금
- 즉시 Nucleofection 후, 멀티 채널 피펫을 사용하여, 각 웰에 RMP1-1640 미디어를 예열 (37 ° C)의 80 μl를 추가합니다. 미디어가 천천히이 단계에서 매우 섬세하고있는 형질 전환 된 세포와 혼합 할 수 있도록, 각 웰의 측면에 미디어를 추가합니다. 이 같이, 너무 빨리 미디어를 추가하지 마십시오크게 가능성을 감소시킨다.
- 2 분 5 % CO 2와 37 ºC 배양기로 형질 전환 된 샘플 및 RPMI-1640 96 웰 플레이트를 놓고; 이 세포가 조작을 발전하기 전에 복구 할 수 있도록하는 것이 중요합니다.
- 인큐베이터에서 96 웰 플레이트를 제거하고 신중 멀티 채널 피펫을 이용하여 96- 웰 조직 배양 플레이트에 각 웰로부터 혼합물을 전송.
- 멀티 채널 피펫을 사용하여, 각 웰에 예열 (37 ° C) DMEM + FBS 배지 100 μl를 추가합니다.
- 24 ~ 36 시간 동안 5 % CO 2 37 ºC 배양기에서 샘플을 96- 웰 조직 배양 플레이트 (이 시간 범위는 일반적으로 잘 작동하지만, 개개의 siRNA를위한 정확한 타이밍을 최적화) 부화.
LPS와 대 식세포의 7 자극
- 24 ~ 36 시간 후 Nucleofection 배양 한 다음, 새로운 미디어에 LPS (또는 다른 PAMPs가)를 준비합니다. 모든 우물에 대한 충분한 신선한 매체를 준비합니다 (200 μL의 media / 웰의 96 웰 플레이트 플러스 피펫에 대한 약간의 추가). DMEM + FBS 20 ng를 / ml의 최종 농도 LPS를 희석.
- 96- 웰 플레이트에서 조심 흡 미디어는 세포에 LPS를 함유하는 신선한 미디어를 추가.
- 자극 후 여러 번 LPS 또는 다른 PAMPs가에 대한 응답을 모니터링합니다. 6 시간에는 IL-6, TNFα와 같은 사이토 카인에 대한 강력한 염증성 사이토 카인 응답을 생성하기에 충분하다.
8 대 식세포에서 유도 타고난 면역 반응, 유전자 넉다운,과 생존을 모니터링
- LPS 유도 된 사이토 카인 생성을 모니터하기 위해, 96- 웰 저장 플레이트에 세포로부터 상등액을 피펫. 사이토 카인 생성 후 ELISA에 의해 측정 될 수있다.
- 상등액을 제거한 후에, 형광 디 아세테이트를 사용하여 세포 생존을 모니터 (생균 셀룰러 에스 테라 제에 의해 절단 될 때,이 화합물은 형광성된다). T를 사용하여 세포 생존을 조절하는 유전자를 대상으로 siRNA가를 확인그의 접근 방식. 주 : 제대로 수행 한 경우 형질 전환 과정 자체가 생존에 영향을 거의 미치지 않는다.
- (: PBS 100 최종 희석 1) 각 웰에 플루오 레세 인 디 아세테이트 (아세톤 5 ㎎ / ㎖ 주식을)를 추가합니다.
- 다섯 분에 한 시간 동안 실온에서 인큐베이션 한 후, 플레이트 판독기 (460 nm의 여기, 515 nm의 발광)를 사용하여 세포 내의 형광을 모니터링한다.
- 선택 사항 : 우물의 형광 균일 성을 확보하기 위해, 예를 RIPA로 버퍼를 사용하여를 Lyse 세포; 일부 플레이트 판독기가 웰의 작은 부분만을 모니터링하도록 구성되므로 이것은 잘 균일 한 형광 신호를 제공한다; 세포가 균일하게 도금되어 있지 않은 경우, 플루오 레세 인 디 아세테이트는 부정확 한 판독을 줄 수 있습니다.
- 세포 생존을 모니터링하는 대신에, 부착 세포로부터 유래 된 RNA를 사용하여 넉다운 qPCR의 siRNA에 의한 유전자를 모니터링.
- 상등액을 세포로부터 제거 된 후, 광고 (상기 단계 8.1)를 용해에 직접 부착 세포 (용해 및 RNA의 보존에 사용되는) D RLT 버퍼.
- 이러한 RNeasy 미니 키트로서 RNA 조제 키트를 사용하여 RNA를 분리하고, 유전자를 siRNA의 처리를 제어하는 넉다운 대해 모니터링하는 유전자 특이 적 프라이머를 사용 qPCR에. 정상화 Βactin에 프라이머 또는 GAPDH를 사용합니다.
- 다른 대안은 선천성 면역 반응의 다른 측면을 모니터링 할 때, FITC 표지 된 E. 추가하여 대 식세포의 탐식 기능을 모니터링 직접 키트를 사용하여 접착 세포 상 대장균 입자. 몇 시간 밖에 소요 제조자의 프로토콜을 따라, 플레이트 판독기 또는 현미경을 사용하여 식균 흡수를 모니터링.
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Representative Results
이 방법을 사용하여 형질 감염 효율을 입증하기 위해, 우리는 플로우 사이토 미터 (도 1)를 사용하여 FITC 표지 된 siRNA에의 흡수를 모니터링.
선천성 면역 반응을 모니터링하는 우리의 접근 방법의 유용성을 설명하기 위해, RAW264.7 대식 세포주에 공지 선천성 면역 조절 유전자를 타겟팅 된 siRNA를 형질 LPS로 세포를 자극 한 다음 - 염증성 사이토 카인의 생산을 모니터링 IL- 6, TNFα. TLR3 (22, 23)에 의해 인식 (C I) 다른 TLR에는 TLR4 (20)에 의해 인식 그람 음성균의 LPS와 같은 PAM3CSK4 등의 리포 펩타이드는 모방 폴리으로 바이러스로부터 TLR2 (21), 및 dsRNA에 의해 인식, 다른 PAMPs가 인식하고 있습니다. 도 2에 도시 된 바와 같이, TLR4 (그러나의 siRNA를 사용하지 다른 TLR들)의 억제 강하게 LPS 유도 된 IL-6 및 TNFα 생산을 감소시킨다. 또한, siRNA를 함께 IL-6의 억제는 IL-을 감소(6) 생산 TNFα 생산 (그림 2에서 B로 패널을 비교)에 영향을 미치는 것은 아니지만.
도 1 :. FITC 표지 된 siRNA를 효율적으로 즉시 형질 후, 세포가 파라 포름 알데히드로 고정, 여러 번 세척하여 기술 된 방법을 사용하여 마우스 대식 세포주 J774A.1 내로 형질 감염되어, 형광을 유동 세포 계측법에 의해 모니터링 하였다. 그림은 하나 형질 전환 된 FITC-의 siRNA의 존재 (파란색 곡선) 또는하지 (빨간색 곡선)에서 배양 된 세포를 비교합니다.
마우스 대 식세포에서의 siRNA의 효과와 특이도 : 그림 2세포주 RAW264.7. RAW264.7 세포 (제어 비응 타겟팅 된 siRNA 풀 # 1 또는 2 또는 TLR4, TLR3, TLR2, 또는 IL-6 바와 같이 타겟팅 된 siRNA) 지시 된 siRNA로 형질 감염시켰다. 24 시간 후, 세포가 이후 ELISA에 의해 모니터링 된 6 시간 및 사이토 카인 생산을위한 20 NG / ml의 LPS (중 IL-6 패널 B에서 패널 또는 TNFα 자극했다. 별표 제어 처리 (P 크게 다른 값 <0.05를 나타냅니다 , t-test를).
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Discussion
수많은 연구하는 개별 유전자가 쥐의 대 식세포에 siRNA를 표적이되어 발표되었다. 지질 - 매개 형질 감염이 개별적으로 대 식세포 세포주에 siRNA를 전달하기 위해 사용되었지만, 이러한 방법은 유전자의 유전자 생존 제한된 유전자 녹다운 및 변동에 미치는 잠재적 영향 겪는다. 중간 또는 높은 처리량 방식으로 유전자를 대상으로 사용할 수있는보다 강력한 분석을 개발하기 위해, 우리는 유전자 최저에 더 일관성과 생존에 제한 효과 (이보다 강력한 전시 Amaxa nucleofector 96 웰 셔틀 시스템을 사용하여, 기술을 최적화 시스템) 지질 중재 방법보다 더 비싸다. 많은 변수가이 절차를 최적화하기 위해 시험 하였다. 우리는 효율적으로 많은 다른 1 차 대 식세포로의 siRNA를 전달하기 위해 이러한 시스템을 사용할 수 있었다 대식 세포주 불멸 (이 Amaxa 96 웰 세포주 최적화 키트를 사용하여 필요로 경우에 따라). 내가N이 다른 마우스 대식 세포주 (RAW264.7, J774A.1 및 MH-S) 및 일차 전지와 예비 시험은 (티오 글리콜 레이트 - 유도 및 골 식세포를 골수 유래), 우리는 발견 RAW264.7 및 J774A.1 세포 그 가장 강력한 siRNA에 의한 유전자 녹다운 나타냈다 (MH-S 및 일차 전지를 다음에, 각각의 데이터는 도시되지 않음). 이러한 두 불멸화 대식 세포주 일반적 연구에 사용되는 바와 같이, 우리는 또한 이러한 라인을 사용 우리의 RNAi 과정을 최적화.
형질 전환 효율을 모니터링하기 위해, 우리는 하나 nucleofector 키트 또는 FITC 표지의 siRNA의 제어 GFP 플라스미드를 사용합니다. 현미경 또는 유동 세포 계측법에 의해 분석으로 GFP 플라스미드가 30 % ~ 50 %의 형질 감염 효율, 형질 감염 후 하루 강한 형광을 나타낸다 (데이터 미도시). 된 siRNA-FITC로 표지 유세포 분석에 의해, 우리는> 99 %의 형질 전환 효율을 관찰 (dsRNA를 플라스미드 DNA보다 transfects). 그것은에 형광을 기다리는 중요하지만형광 신호가 시간이 약화되므로 GFP 플라스미드를 사용하는 경우, 개발, 형광 siRNA를 형질 감염 후 비교적 빨리 모니터링해야한다.
설명한 조건 하에서 형질 감염은 세포 생존에 중요한 영향을 미치지 않는다. 우리는 일반적으로 플루오 레세 인 디 아세테이트를 사용하여 우리의 siRNA를 처리 다음 세포 생존 능력을 모니터링 할 수 있습니다. 이 화합물은 형광성 아니다; 생균의 에스 테라 제에 의해 절단 셀룰러 때 그러나, 형광이된다. 또한, 형광 형태는 본래 세포막 24 세포에서 유지된다. 예를 들어, 셀룰러 ATP 수준을 모니터링 다른보다 정교한 분석이 있지만 이것은 형광 계 분석은, 세포 생존을 모니터링하는 비교적 간단 신속하고 저렴한 분석이다.
우리는 일반적으로 다른 세포주에 비해 RNAi에 대한 초기 측에 형질 다음과 같은 선천성 면역 기능을 24 ~ 36 시간에 대한 우리의 세포를 분석. ㅁILE 하나의 유전자 최저을 용이하게하기 위해 넘겨 내인성 단백질 기다려야합니다, 하나는 siRNA의 효능의 손실이 균형을해야하며, 우리는 다른에 사용되는 전형적인 48 ~ 72 시간보다 약간 이른 시간에 이러한 대 식세포 라인에서보다 강력한 최저을 찾을 세포 유형. 그것은 서양 얼룩에 의해 단백질 수준을 모니터링하는 것이 바람직하지만, 우리는 일반적으로 여러 항체와 서양 말은 실용적이지 않을 수있는 한 번에 여러 개의 유전자를 연구의 목표로, qPCR에 의한 mRNA 수준을 모니터링 할 수 있습니다. 우리는 염증성 사이토 카인의 생산을 최대화하는 최소한의 용량으로 LPS를 사용합니다.
siRNA를 새로운 유전자를 타겟팅 할 때, 우리는 프로토콜에 기재된 siRNA를 비교적 높은 투여 량으로 시작하고 표현형을 유도 된 siRNA 아래로 적정한다. 오프 - 타겟 효과를 방지하기위한 후속 제어 GE을 qPCR에 또는 웨스턴 블롯하여 유전자 녹다운을 확인하고, 사용하는 둘 이상의 siRNA를가 동일한 표현형을 유도 할 수 있는지를 결정하기 위해 여러 siRNA 이중 가닥의 사용을 포함NE 과발현 연구는 RNAi의 접근 방식을 보완한다. 이러한 접근 방식은 마우스 대 식세포에 타고난 면역을 조절하는 유전자의 신속한 식별을 위해 허용해야합니다.
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Disclosures
저자는 그들이 더 경쟁 재정적 이익이 없다는 것을 선언합니다. 이 문서는 론자, Inc.에서 후원
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Amaxa nucleofector 96-well shuttle system | Lonza | AAM-1001S | |
| Amaxa SF cell line 96-well nucleofector kit | Lonza | V4SC-2096 | |
| RAW264.7 mouse macrophage cell line | ATCC | TIB-71 | |
| J774A.1 mouse macrophage cell line | ATCC | TIB-67 | |
| siGenome smartpool siRNA | Dharmacon | varies depending on gene | |
| Non-targeting control siRNA pool | Dharmacon | D-001206-13-20 | |
| Block-iT fluorescent oligo for electroporation | Invitrogen | 13750062 | |
| Ultrapure E. coli O111:B4 LPS | List Biological Laboratories | 421 | |
| DMEM, high glucose | Invitrogen | 11995-065 | |
| RPMI-1640 | Invitrogen | 11875-093 | |
| Penicillin-streptomycin solution (Pen/Strep) | Fisher | SV30010 | |
| 0.25% Trypsin-EDTA | Invitrogen | 25200072 | |
| 96-well tissue culture plates | Fisher | 07-200-89 | |
| 96-well round bottom sterile plates (not coated) | Fisher | 07-200-745 | |
| Mouse IL-6 Duoset ELISA kit | R&D Biosystems | DY406 | |
| Mouse TNFα Duoset ELISA kit | R&D Biosystems | DY410 | |
| Fluorescein diacetate | Sigma-Aldrich | F7378 | |
| RLT buffer | Qiagen | 79216 | |
| RNeasy mini kit | Qiagen | 74134 | |
| Vybrant Phagocytosis Assay Kit | Invitrogen | V-6694 |
References
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