Summary

Modeling Spontan metastaserende renalcellecarcinom (MRCC) i mus efter nefrektomi

Published: April 29, 2014
doi:

Summary

Modeller af spontan metastatisk renalcellekarcinom (RCC) sygdomsprogression kan anvendes til at evaluere behandlinger i klinisk relevant indstilling. Denne protokol demonstrerer forskellige procedurer for ortotopisk nyre tumor celle implantation, ordentlig nefrektomi, og endelig skitserer en obduktion vejledning for visuel og selvlysende scoring af metastatisk byrde og lokalisering.

Abstract

En af de vigtigste udfordringer for forbedret afprøvning af nye eksperimentelle lægemidler i renalcellecarcinom (RCC) er udviklingen af ​​modeller, der trofast rekapitulere metastatisk sygdomsprogression tidlige og den sene fase. Typiske tumor implantation modeller udnytte ektopisk eller orthotopisk primær tumor implantation, men få indbefatter systemisk spontan metastatisk sygdom, der efterligner det kliniske miljø. Denne protokol beskriver de vigtigste skridt til at udvikle RCC sygdomsprogression stadier tilsvarende patienter. For det første anvender en meget metastatisk musetumor cellelinie i en syngen model til at vise ortotopisk tumorcelle implantation. Metoder omfatter overfladisk og intern implantation i sub-kapsulær rum med celler kombineret med matrigel at forhindre lækage og tidlig spredning. Derefter beskrives procedurerne for excision af tumor-bærende nyre (nefrektomi), med kritisk præ-og post-kirurgisk mus pleje. Endelig skitserer de nødvendige skridt til at overvåge og vurderemikro-og makro-metastatisk sygdomsprogression, herunder selvlysende billedbehandling samt giver en detaljeret visuel obduktion guide til at score systemisk sygdom distribution. Målet med denne protokol beskrivelse er at lette den udbredte brug af klinisk relevante metastatisk RCC modeller til at forbedre den prædiktive værdi af fremtidig terapeutisk test.

Introduction

Den største årsag til dødelighed hos patienter med renalcellecarcinom (RCC) er systemisk metastatisk sygdom, der typisk forekommer efter kirurgisk fjernelse af en primær tumor vokser i nyrerne. Men meget få prækliniske tumormodeller evaluering eksperimentelle lægemidler i mus har metastatisk sygdom, og endnu færre trofast rekapitulere de kliniske stadier af lokaliseret vækst, kirurgi og spontan mikro-metastatisk initiering og progression 1-3. Dette hul i test er blevet stadig vigtigere i evalueringen af nye behandlingsformer, som undertiden slående anti-tumor effekt set i dyremodeller har ikke altid oversat til tilsvarende vellykket behandling af patienter på 4. Sådanne forskelle i resultaterne kan stamme fra differentierede efficacies narkotika mellem lokaliserede ektopiske eller ortotopisk primær tumor modeller og sen-fase metastatisk sygdom 5-7. I tilfælde af RCC, har kun få undersøgelser anvendte etableret enNimal protokoller, der omfatter spontane tilbagevendende sygdom, der efterligner patienter, der typisk har haft tumor-bærende nyrer helt eller delvist fjernet 2,3. Årsagerne til denne mangel i musemodel test varierer. Først er der den høje dyr omkostninger og iboende variabilitet af tumorcelle udvælgelse og metastatisk potentiale. For eksempel humane nyrecellelinier tendens til sjældent metastaserer, og skal udvælges over flere runder af orthotopisk primære implantation og metastatisk valg at udlede varianter, der konsekvent udbrede og danner fjerne læsioner (se beskrivelse af en sådan human cellelinie afledning 8-10) . Omvendt museceller i immunkompetente modeller tendens til at opføre sig aggressivt og lavt celleantal skal injiceres med Matrigel at reducere øjeblikkelig spredes systemisk 3. For det andet, de tekniske vanskeligheder med at udføre korrekt implantation kirurgisk resektion (nephrectomy), og sporing (og kvantificere) spontan metastatic vækst kan være udfordrende og flere kritiske variabler skal tages i betragtning ansætte denne teknik (se Diskussion for detaljer). Formålet med denne protokol er at beskrive de væsentlige skridt (samt potentielle faldgruber) af ortotopisk implantation, resektion (nefrektomi), og overvågning af spontan metastatisk RCC sygdom og tilbyde en guideline for standardiseret (og mere udbredt) bruger blandt videnskabelige laboratorier at vurdere effekten af ​​eksperimentelle lægemidler.

Protocol

1. Ortotopisk Nyre Tumor Implantation Celledyrkning Før orthotopisk implantation vokse muse RENCA LUC-celler som et monolag til 75% konfluens. Efter trypsinisering og resuspension i 5% FBS, der indeholder medier, centrifuger cellerne ved 1.000 rpm, 4 ° C i 5 minutter, gentagelse 3 gange for at vaske i PBS. Derefter resuspenderes cellerne i serumfrie medier til en koncentration på 5 x 10 4 RENCA LUC / 5 pi serum-frie medier. Bemærk: Afhængig a…

Representative Results

Figur 1A viser en skematisk skitserer de procedurer, der er beskrevet i denne protokol resumé. Flere vigtige faktorer skal overvejes for hvert trin. For eksempel er det i trin 1 viser to metoder til sub-kapsulær tumorcelle implantation i nyrerne. Tumorceller kan implanteres i sub-kapsulær rum med en lille hvid-bubble bekræfter lokaliseret placering af celler med lækage forhindres ved omhyggelig fjernelse af nålen og pensling overskydende væskeudslip (Figur 1B-i). For at forhindre…

Discussion

Formålet med denne protokol er at vurdere klinisk relevant spontan metastatisk sygdom ved hjælp af en syngen tumor musemodel til at beskrive implantation / resektion teknikker. I øjeblikket har de fleste af prækliniske studier, som evaluerede nye eksperimentelle behandlingsformer omfatter ikke undersøgelse af metastatisk sygdom, og kun få rekapitulere stadier af primær tumor vækst, kirurgisk resektion, og eventuel spontan metastatisk spredning. Til dato gensplejsede musemodeller (GEMMs) genereret at fremkalde sp…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi er taknemmelige for laboratoriet af Dr. Robert S. Kerbel (University of Toronto, Sunnybrook Research Institute, Toronto, Canada) for teknisk hjælp og ekspertise inden for udvikling af denne procedure. Vi vil også gerne takke Dr. Sandra Sexton og Roswell Park Cancer Institute Department of Laboratory Animal Resources. Dette arbejde blev støttet af en pris fra Roswell Park Alliance Foundation (til JMLE).

Materials

DMEM-high glucose with Pyr. And L-Glutamine Corning 10-013-CV
FBS Invitrogen 10437-028
0.25% Trypsin EDTA Corning 25-053-CL
1x DPBS without Calcium & Magnesium Corning 21-031-CV
Matrigel BD Biosciences 354234 must be kept on ice
Artifical tears-lubricant opthalmic ointment Akorn Animal Health 17478-162-35
Pocket pro pet trimmer Braintree scientific CLP9931B
Alcohol swab VWR 326895
Betadine solution swab VWR 67618-152-01
MICRO DISSECTING sissors straight,blunt – 25mm blades – 4.5"  Southpointe surgical RS-5982
Iris Forceps, serrated, curved, 10cm long Kent scientific INS15915 need two of these
10µl Hamilton syringe Hamilton 7635-01
30G, 45 degree, RN needle Hamilton 7803-07
Sterile cotton tipped appicator VWR 10805-144
High temperature cautery kit Kent scientific INS500392
5-0 coated Vicryl, conventional cutting needle  Ethicon J834
Reflex clip applier for 7mm clips Kent scientific INS500343
Reflex clips, 7mm, non-sterile Kent scientific INS500344
Removing forceps, 12cm lone Kent scientific INS500347
0.9% Sodium Chloride Baxter Healthcare 2B1322
Buprenorphine 0.01mg/mL
25G 5/8" needle VWR BD305122
1mL syringe w/out needle VWR BD309659
D-Luciferin Gold Bio technology LUCK-1G

References

  1. Francia, G., Cruz-Munoz, W., Man, S., Xu, P., Kerbel, R. S. Mouse models of advanced spontaneous metastasis for experimental therapeutics. Nat. Rev. Cancer. 11, 135-141 (2011).
  2. Souza, B. M., Chaves, K. B., Chammas, R., Schor, N., Bellini, M. H. Endostatin neoadjuvant gene therapy extends survival in an orthotopic metastatic mouse model of renal cell carcinoma. Biomed. Pharmacother. 66, 237-241 (2012).
  3. Amagai, Y., et al. Combination therapy of interleukin-2 and sorafenib improves survival benefits and prevents spontaneous pulmonary metastasis in murine renal cell carcinoma models. Jpn. J. Clin. Oncol. 40, 503-507 (2010).
  4. Steeg, P. S., et al. Preclinical Drug Development Must Consider the Impact on Metastasis. Clin. Cancer Res. 15, 4529-4530 (2009).
  5. Guerin, E., Man, S., Xu, P. A model of postsurgical advanced metastatic breast cancer more accurately replicates the clinical efficacy of antiangiogenic drugs. Cancer Res. 73, 2743-2748 (2013).
  6. Day, C. P., Carter, J., Bonomi, C., Hollingshead, M., Merlino, G. Preclinical therapeutic response of residual metastatic disease is distinct from its primary tumor of origin. Int. J. Cancer. 130, 190-199 (2012).
  7. Ebos, J. M., Kerbel, R. S. Antiangiogenic therapy: impact on invasion, disease progression, and metastasis. Nat. Rev. Clin. Oncol. 8, 210-221 (2011).
  8. Naito, S., Walker, S. M., Fidler, I. J. In vivo selection of human renal cell carcinoma cells with high metastatic potential in nude mice. Clin. Exp. Metastasis. 7, 381-389 (1989).
  9. Fidler, I. J., Naito, S., Pathak, S. Orthotopic implantation in essential for the selection, growth and metastasis of human renal cell cancer in nude mice. Cancer Metastasis Rev. 9, 145-165 (1990).
  10. Saiki, I., et al. Characterization of the invasive and metastatic phenotype in human renal cell carcinoma. Clin. Exp. Metastasis. 9, 551-566 (1991).
  11. Mohanty, S., Xu, L. Experimental metastasis assay. J. Vis. Exp. 42 (1942), (2010).
  12. Nunez-Cruz, S., Connolly, D. C., Scholler, N. An orthotopic model of serous ovarian cancer in immunocompetent mice for in vivo tumor imaging and monitoring of tumor immune responses. J. Vis. Exp. (45), (2010).
  13. Ebos, J. M., et al. Accelerated metastasis after short-term treatment with a potent inhibitor of tumor angiogenesis. Cancer Cell. 15, 232-239 (2009).
  14. Yang, O. C., Maxwell, P. H., Pollard, P. J. Renal cell carcinoma: translational aspects of metabolism and therapeutic consequences. Kidney Int. 84 (4), 667-681 (2013).

Play Video

Cite This Article
Tracz, A., Mastri, M., Lee, C. R., Pili, R., Ebos, J. M. L. Modeling Spontaneous Metastatic Renal Cell Carcinoma (mRCC) in Mice Following Nephrectomy. J. Vis. Exp. (86), e51485, doi:10.3791/51485 (2014).

View Video