腎摘出後のマウスにおける自発転移性腎細胞癌（MRCC）をモデル化する
Summary
自発的な転移性腎細胞癌（RCC）、疾患進行のモデルは、臨床的に関連する設定で治療を評価するために使用することができる。このプロトコルは、同所腎臓腫瘍細胞移植、適切な腎摘出のためのさまざまな手順を示していて、最終的には転移性の負担とローカリゼーションの視覚的および生物発光採点のための剖検ガイドの概要を説明します。
Abstract
腎細胞癌（RCC）の新実験治療の改善されたテストの重要な課題の一つは、忠実に早期及び後期転移性疾患の進行を再現モデルの開発である。典型的な腫瘍移植モデルは、異所性または同所原発腫瘍移植を利用しますが、いくつかは、臨床設定を模倣全身自発転移性疾患が含まれる。このプロトコルは、患者さんに似腎細胞癌疾患の進行段階を開発するための重要な手順について説明します。まず、同所性腫瘍細胞移植を示すために同系モデルにおいて、高転移性マウス腫瘍細胞株を使用する。方法は、漏れや、早期の広がりを防ぐために、マトリゲルと組み合わせた細胞のサブ莢膜空間に表面的で、内部の移植が含まれています。その横には、重要な前と手術後のマウスの注意を払って、腫瘍を有する腎臓（腎摘出）の切除のための手順について説明します。最後に、監視し、評価するために必要な手順の概要を説明生物発光イメージングなどのミクロおよびマクロ転移性疾患の進行は、同様に全身性疾患の分布を獲得するための詳細な視覚的剖検ガイドを提供します。このプロトコル記述の目標は、将来の治療試験の予測値を改善するために臨床的に関連する転移性RCCモデルの普及を促進することである。
Introduction
腎細胞癌（RCC）を有する患者における死亡の主な原因は、典型的には、腎臓中で増殖する原発腫瘍の外科的切除後に生じる全身性の転移性疾患である。しかし、マウスでは実験的な治療法を評価する非常に少数の前臨床腫瘍モデルは、転移性疾患が含まれており、少数の、まだ忠実にローカライズされた成長、手術、および自発的なマイクロ転移開始および進行1-3の臨床病期を再現。テスト中のこのギャップは時々 、動物モデルで見られる顕著な抗腫瘍効果は、常に患者4の同様に治療の成功に翻訳されていない新しい治療法の評価においてますます重要になってきた。結果におけるこのような差異は、ローカライズされた異所性または同所原発腫瘍モデルと後期転移性疾患5-7間の差動薬効に由来する。 RCCの場合には、少数の研究のみが確立採用している一般的に、腫瘍を有する腎臓を受けた患者は全体的または部分的に2,3を削除模倣自発的再発が含まニマルプロトコル。マウスモデルのテストで、この不足の理由は様々である。まず、高コスト動物および腫瘍細胞の選択および転移能の固有の変動性が存在する。 （例えば、ヒト細胞株導出8-10の説明を参照）、例えば、ヒト腎細胞株はめったに転移していない傾向があり、一貫し普及および遠隔病変を形成する変異体を導出するために同所一次注入及び転移複数回の選択にわたって選択されなければならない。逆に、免疫応答性モデルでマウスの細胞では積極的に行動する傾向があり、低細胞数はすぐに全身スプレッド3を減らすためにマトリゲルを注入しなければならない。第二に、技術的な適切な注入、外科的切除（摘出術）を実施し、追跡の困難（かつ定量）自発metastatiCの成長は挑戦することができますし、（詳細については説明を参照）、この手法を採用する場合、いくつかの重要な変数は、検討が必要です。このプロトコルの目的は、同所移植、切除（腎摘出）、および自発的な転移性腎細胞癌疾患のモニタリングの重要なステップ（および潜在的な落とし穴）を記述するために、標準化され（そしてより広範な）のための指針を提供するために科学的な研究室の中で使用しているそれは、実験的治療法の有効性を評価する。
Protocol
Representative Results
Discussion
このプロトコルの目的は、注入/切除技法を説明するために同系腫瘍マウスモデルを用いて、臨床的に関連する自発的な転移性疾患を評価することである。現在、新たな実験的な治療法を評価する前臨床試験の大半は、転移性疾患の研究が含まれていないと、わずか数は、原発腫瘍の増殖、外科的切除、および最終的な自発的な転移拡散の段階を再現。現在までに、遺伝子操作したマウスモデ…
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
我々は、この手順の開発で技術的なヘルプと専門知識のためのロバートS.カーベル（トロント大学、サニーブルック研究所、トロント、カナダ）の研究室に感謝しています。また、博士はサンドラ·セクストンや実験動物資源のロズウェルパークがん研究所部門に感謝したいと思います。この作品は、（JMLEへ）ロズウェルパークアライアンス財団から賞によってサポートされていました。
Materials
| DMEM-high glucose with Pyr. And L-Glutamine | Corning | 10-013-CV | |
| FBS | Invitrogen | 10437-028 | |
| 0.25% Trypsin EDTA | Corning | 25-053-CL | |
| 1x DPBS without Calcium & Magnesium | Corning | 21-031-CV | |
| Matrigel | BD Biosciences | 354234 | must be kept on ice |
| Artifical tears-lubricant opthalmic ointment | Akorn Animal Health | 17478-162-35 | |
| Pocket pro pet trimmer | Braintree scientific | CLP9931B | |
| Alcohol swab | VWR | 326895 | |
| Betadine solution swab | VWR | 67618-152-01 | |
| MICRO DISSECTING sissors straight,blunt – 25mm blades – 4.5" | Southpointe surgical | RS-5982 | |
| Iris Forceps, serrated, curved, 10cm long | Kent scientific | INS15915 | need two of these |
| 10µl Hamilton syringe | Hamilton | 7635-01 | |
| 30G, 45 degree, RN needle | Hamilton | 7803-07 | |
| Sterile cotton tipped appicator | VWR | 10805-144 | |
| High temperature cautery kit | Kent scientific | INS500392 | |
| 5-0 coated Vicryl, conventional cutting needle | Ethicon | J834 | |
| Reflex clip applier for 7mm clips | Kent scientific | INS500343 | |
| Reflex clips, 7mm, non-sterile | Kent scientific | INS500344 | |
| Removing forceps, 12cm lone | Kent scientific | INS500347 | |
| 0.9% Sodium Chloride | Baxter Healthcare | 2B1322 | |
| Buprenorphine 0.01mg/mL | |||
| 25G 5/8" needle | VWR | BD305122 | |
| 1mL syringe w/out needle | VWR | BD309659 | |
| D-Luciferin | Gold Bio technology | LUCK-1G |
References
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