Summary
Isotherme Titrationskalorimetrie Maßnahmen Wärmestrom freigegeben oder in chemischen Reaktionen absorbiert. Dieses Verfahren kann verwendet werden, um Enzym-Katalyse zu quantifizieren. In diesem Papier, das Protokoll für die Instrumental Setup-Experiment läuft, und Datenanalyse wird allgemein beschrieben, und der Charakterisierung der enzymatischen Hydrolyse von Harnstoff Bohne Urease aufgebracht.
Abstract
Isotherme Titrationskalorimetrie (ITC) ist eine gut beschriebene Technik, die die Wärme freigesetzt oder während einer chemischen Reaktion aufgenommen, sie als eine intrinsische Sonde zur Charakterisierung praktisch jeden chemischen Prozess misst. Heutzutage wird dieses Verfahren weitgehend angewendet, um thermodynamische Parameter des biomolekularen Bindungsgleichgewichte bestimmen. Zusätzlich ITC wurde gezeigt, können direkt zu messen Kinetik und thermodynamischen Parameter (k cat, K M, &Dgr; H) von enzymatischen Reaktionen, obwohl diese Anwendung noch unzureichend genutzt werden. Als Wärme Änderungen spontan während der enzymatischen Katalyse kommen, die jedoch ITC keine Änderung oder die Kennzeichnung des Systems unter Analyse bedürfen und kann in Lösung durchgeführt werden. Darüber hinaus muss das Verfahren wenig Materialmenge. Diese Eigenschaften machen ITC eine unschätzbare, leistungsstarke und einzigartige Werkzeug zur Enzymkinetik in mehreren Anwendungen, wie zum Beispiel, Arzneimittelforschung studieren.
k cat und K M der enzymatischen Hydrolyse von Harnstoff durch Canavalia ensiformis (jack bean) Urease. Berechnung der intrinsischen molare Enthalpie (&Dgr; H int) der Reaktion durchgeführt. Die so erhaltenen Werte sind konsistent mit früheren Daten in der Literatur berichtet, was die Zuverlässigkeit der Methode.
Introduction
Quantitative Bestimmung von biochemischen Reaktionen Einblicke in die biologischen Prozesse auf der Grundlage des Lebens. Kalorimetrie bietet eine markierungsfreie Methode zur quantitativen Charakterisierung praktisch jede chemische Reaktion in Lösung. Dieses Verfahren misst die Wärme freigegeben oder im Laufe der Zeit absorbiert wird, und ist daher eine universelle Erfassungssystem und eine sehr bequeme Methode, um die Menge der reagierenden Moleküle (dh Bindung Thermodynamik), als auch die Reaktionsgeschwindigkeit (dh Kinetik) messen zu quantifizieren. Insbesondere hat isothermen Titrationskalorimetrie (ITC) als Methode der Wahl, um die Thermodynamik der biomolekularen Gleichgewichte zu charakterisieren, mit Protein-Ligand-Protein-Protein, Protein-Metallionen und Protein-DNA-Wechselwirkungen 6.1 verabschiedet. Darüber hinaus ist die Fähigkeit des ITC, um kinetische Informationen ist es ein sehr leistungsfähiges System zur Enzymkatalyse zu messen, obwohl das Potenzial dieser Anwendung ist nochunterschätzt 09.07.
Die Michaelis-Menten-Gleichung 10 ist eine quantitative Beschreibung von enzymatischen Reaktionen, da es eine Beziehung zwischen der Reaktionsgeschwindigkeit und der Substratkonzentration, in Abhängigkeit von zwei kinetischen Parameter: die Michaelis-Konstante (K M) und die katalytische Geschwindigkeitskonstante (k cat) . Die k cat / K M-Verhältnis ist als das katalytische Effizienz eines Enzyms bezeichnet. In der Praxis Bestimmung von K M und k cat für eine bestimmte Reaktion eine vollständige Beschreibung der Katalyse.
In einem typischen Enzymreaktion (Abb. 1), einem Substrat (S) mit dem Enzym (E) die Enzym-Substrat-(ES)-Komplex gebildet wird, der anschließend in den Übergangszustand aktiviert wird (ES *). Letzteres wird in das Enzym-Produkt (EP)-Komplex dissoziiert, die schließlich umgewandelt. Diese Schritts werden durch die folgende Reaktion beschrieben.
(1)
k 1 die Geschwindigkeitskonstante für die Bildung des Komplexes ES, k-1 die Geschwindigkeitskonstante für die Dissoziation des Komplexes ES, während k cat ist die katalytische Geschwindigkeitskonstante oder Umsatzzahl.
: Gemäß der Michaelis-Menten-Gleichung 10 kann die Geschwindigkeit der Reaktion berechnet werden
(2)
wobei K = M (k-1 + k cat) / k 1 und k cat = v max / [E], wobei V max die maximale Geschwindigkeit erreicht, wenn alle Enzyms an das Substrat gebunden.
Die isotherme Titrationskalorimeter ist das Instrument in dieser Studie verwendet, um die enzymatische Hydrolyse von Harnstoff zu charakterisieren. Dieses Instrument besteht aus einem adiabatischen Abschirmung, die zwei geprägte förmigen Zellen (Fig. 1) hergestellt. Diese sind nach außen mit schmalen Zugang Rohren verbunden. Die Probenzelle (ca. 1,4 ml) wird mit der Enzymlösung beladen, und die Referenzzelle wird in der Regel mit Wasser oder mit der für die Analyse verwendeten Lösungsmittel gefüllt. Eine rotierende Spritze mit langer Nadel und einem Rührstäbchen Paddel befestigt ist, die gewöhnlich ca. 0,3 ml Substratlösung wird auf die Probenzelle montiert. Eine thermoelektrische Vorrichtung mißt die Temperaturdifferenz zwischen der Probe und der Referenzzelle und mit einem "Zellrückkopplungsnetzwerk", behält er diese Differenz auf Null durch Addieren oder Subtrahieren Wärme. Während des Experiments wird das Substrat in der Enzymlösung bei einem konstanten gewählten Temperatur eingespritzt. Wenn die enenzymatische Reaktion stattfindet, die Menge an Wärme freigesetzt oder absorbiert wird, ist proportional zu der Anzahl von Substratmolekülen, die in Produktmoleküle umgewandelt werden. Darüber hinaus ist die Wärmestromrate direkt mit der Geschwindigkeit der Reaktion stehen. Die gemessenen Daten, wie eine Abweichung der Spur von der ersten Wärmegrundlinie (Fig. 1) erscheinen, (μcal / sec) durch das Instrument auf die Probenzelle, die proportional zu der in der Probenzelle auftretenden Wärmestrom versorgt sind der thermische Leistungs über die Zeit.
Fig. 1 ist. Schematische Darstellung der isothermen Titrationskalorimeter um enzymatische Reaktionen zu untersuchen. Einer enzymatischen Reaktion bei der Titration des Substrats (in der Injektionsspritze) auftritt in die Enzymlösung (in der Probenzelle) zu einer Änderung der thermoFehlleistung durch das Kalorimeter, notwendig, um die Temperaturdifferenz zwischen der Probenzelle und der Referenzzelle konstant zu halten veröffentlicht. Klicken Sie hier für eine größere Ansicht.
Insgesamt ist die Wärmeänderung (Q) proportional zum molaren Enthalpie der Reaktion (AH) und der Anzahl von Molen des Produkts erzeugt (n), die wiederum durch den Gesamtvolumen-fache der Konzentration gegeben:
(3)
Die Produktbildung über die Zeit (dP / dt), die die Reaktionsgeschwindigkeit entspricht, kann somit der Wärmemenge über die gleiche Zeit (dQ / dt) durch die Beziehung erzeugt verwandt sind:
(4)
Nach dieser Gleichung um eine Michaelis-Menten-Plot zu erhalten ist es notwendig, zu messen i) die Gesamtstoff Enthalpie AH, und ii) der Wärmestrom dQ / dt bei verschiedenen Substratkonzentrationen. Gewöhnlich wird dies auf zwei verschiedene Experimente durchgeführt: Im ersten Versuch (Methode 1, M1), wird das Substrat in der Enzymlösung injiziert und die Wärme zur vollständigen Substratumsatz gemessen wird; in dem zweiten Experiment (Methode 2, M2), werden mehrere Injektionen des Substrats durchgeführt und die Rate der Wärmeerzeugung bei verschiedenen Substratkonzentrationen gemessen. Diese zwei Sätze von Daten ausreichend sind, um die kinetischen Parameter K m und k cat abzuleiten.
Im vorliegenden Artikel wird eine allgemeine Protokoll, um die kinetischen Parameter für enzymatische Reaktionen unter Verwendung von ITC bestimmen beschrieben. Wir wendeten die Methode zur Harnstoff-Hydrolyse durch Canavalia ensiformis Harnstoffse als Bezugssystem. Die gute Übereinstimmung zwischen den mit dieser Methode erzielten Ergebnisse sowie die in der Literatur berichtet Daten zeigen die Zuverlässigkeit dieses Ansatzes.
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Protocol
1. Vorbereitung von Proben
- Herstellung von 2 ml Enzymlösung und 0,5 ml der Substratlösung für jede Versuchsreihe. Konzentriertes Stammlösungen von Enzym und Substrat in Pufferlösungen mit identischer Zusammensetzung, um die Wärme der Verdünnung und Durchmischung während der Substratzugabe zu minimieren.
- Wählen Sie die Pufferbedingungen, die ausreichend sind, um pH-Änderung während Experiment zu verhindern. Zum Beispiel ist 20 mM HEPES pH 7 ausreichend für Messungen bei neutralem pH-Wert.
HINWEIS: Wenn Protonenaustausch beteiligt ist, muss die Protonierung Enthalpien der verwendeten Puffer betrachtet werden, da sie die gemessene &Dgr; H der Reaktion beeinflussen. Möglichen spezifischen Auswirkungen der Puffer oder Zusatzstoffe Moleküle auf dem System unter Analyse berücksichtigt werden. Werden organische Lösungsmittel (z. B. DMSO) werden in der Enzymlösung enthalten, fügen sie in genau der gleichen Konzentration in der Substratlösung. - Für die M1 Experiment startenmit Enzym-Konzentration im nM-Bereich (beispielsweise 1 nM) und mit einer Substratkonzentration von mindestens drei Größenordnungen höher ist als die Enzymkonzentration und oberhalb der K M.
- Für das Experiment M2, beginnen Sie mit der Enzymkonzentration in der pM-nM-Bereich (zB 15 Uhr). Substratkonzentration in der Spritze ist im mm-Bereich (z. B. 400 mm).
HINWEIS: In der einzigen Injektion M1 Versuch sollten die Konzentrationen ausreichend sein, um die Gesamtsubstratumwandlung in das Produkt über die Versuchszeit zu erreichen. Daher ist die Konzentration des Enzyms hängt von dem Enzym ab: wenn Enzyme mit niedrigem k cat werden noch untersucht, höhere Enzymkonzentrationen (bis zu 10 &mgr; M) verwendet werden. Andererseits muss Enzymkonzentrationen in der M2-Experiment verwendet sicherzustellen, daß die eingespritzte Substrat nur geringfügig (weniger als 5%) verbraucht wird und daß die Enzymreaktion schreitet im stationären Zustand. Aus diesem Grund wird, je höher dieEnzymeffizienz, desto geringer ist die benötigte Enzymkonzentration. Am Ende des Experiments sollte der Substratkonzentration in der Probenzelle über K M sein.
- Wählen Sie die Pufferbedingungen, die ausreichend sind, um pH-Änderung während Experiment zu verhindern. Zum Beispiel ist 20 mM HEPES pH 7 ausreichend für Messungen bei neutralem pH-Wert.
- Sorgfältig zu prüfen, Enzym-und Substratkonzentrationen mit einem geeigneten Analyseverfahren (zB Absorption bei 280 nm, kolorimetrisch, BCA-Assays 11. Dies ist erforderlich, um genaue und zuverlässige Berechnung der thermodynamischen und kinetischen Parameter zu erhalten.
- Der pH-Wert der Lösung und sicherzustellen, dass der pH-Fehlanpassung sowohl dem Enzym und dem Substrat Lösungen minimal ist unter den Versuchsbedingungen (± 0,05 pH-Einheiten).
2. Durchführung des Experiments
HINWEIS: Das gleiche Verfahren ist sowohl für die M1-und M2-Experiment, das einen nach dem anderen durchgeführt werden, angewandt werden.
- Stellen Sie sicher, dass die Probenzelle und die Injektionsspritze sind nach der Hersteller gereinigtAnweisungen. Füllen Sie die Spritze mit der Be-Messgerät mit destilliertem Wasser vorgesehen ist, vorsichtig die Nadel in der Probenzelle, füllen Sie die Zelle aus und entfernen Sie die Flüssigkeit mit der gleichen Spritze. Mit dieser Methode, wäscht den Probenzelle zweimal mit destilliertem Wasser und zweimal mit dem Puffer.
- Laden der Probenzelle mit 2 ml einer Enzymlösung mit der zu ladende Spritze sorgfältig vermeidet die Bildung von Luftblasen. Langsam spritzen die Lösung in die Zelle, bis sie heraus schwappt die Oberseite der Zelle Stamm. Produzieren Sie ein Spurt von ca. 0,25 ml Lösung in die Zelle. Zweimal wiederholen. Dieser Schritt entfernt von Luftblasen in der Probenzelle eingeschlossen.
- Setzen Sie die Nadel der Spritze Laden auf der Leiste zwischen der Zelle und dem Zellstamm Port und entfernen überschüssige Lösung.
- Starten des VP-Viewer-Programm und von der Computerschnittstelle, die ITC äquilibrieren Instrument auf eine Temperatur 3 ° C unter die gewünschte Versuchstemperatur. Dies ist erforderlich, um Gleichgewichtseinstellung zu vermeiden langPerioden vor dem Experiment durch die passive Kühleinrichtung instrumental.
- Füllen Sie die Referenzzelle mit destilliertem Wasser mit dem gleichen Verfahren oben. Wenn Puffer mit hoher Ionenstärke oder hohe Osmolalität in der Probenlösung, sollte derselbe Puffer als Referenzlösung verwendet werden.
- Verknüpfen einer Plastikspritze auf die Einfüllöffnung der Injektionsspritze, mit einem dünnen Silikonschlauch. Füllen der Injektionsspritze Platzierung der Nadelspitze in Wasser und Erstellung, bis Wasser aus dem oberen Einfüllöffnung, die anzeigt, dass die Injektionsspritze voll ist. Dann bewegen Sie die Spitze der Spritze aus dem Wasser und stellt Luft, um die Injektionsspritze zu entleeren. Mit diesem Verfahren, waschen Sie die Injektionsspritze mit Puffer und saugen Luft durch das System. Anschließend legen Sie die Injektionsnadel in einem engen Röhrchen mit 0,5 ml Substratlösung, sorgfältig auszuarbeiten und der Injektionsspritze vollständig zu füllen, so dass kleine Menge der Lösung an der Unterseite des Rohres.
- Von derComputer-Schnittstelle, drücken Sie auf "Schließen Einfüllöffnung". Entfernen Sie die Silizium Laderohr. Drücken Sie auf "Purge und Refill"-Taste, damit der Injektionsspritze, um Luftblasen zu entfernen und sie zurück in die Groß Lösung zu vertreiben. Zweimal wiederholen.
- Bewegen Sie die Injektionsspritze, wischen an den Seiten, alle Tropfen zu entfernen und die Nadel der Injektionsspritze in die Probenzelle.
- Auf dem Computer, legen Sie die entsprechenden Betriebsparameter. Die experimentelle Enzym und Substratkonzentrationen angegeben werden.
- In der M1-Experiment, müssen Sie mindestens zwei Zugänge (5-30 ul) Substrat, um die Reproduzierbarkeit zu überprüfen. Die Abstandszeit zwischen jeder Injektion (z. B. 1000 s) groß genug ist, um sicherzustellen, dass die Wärmesignal wieder auf die Grundlinie vor der nächsten Zugabe.
- In der M2 Experiment, setzen mehrere (z. B. 15 x 10.5 ul)-Injektionen. Das Intervall zwischen den Injektionen (z. B. 180 Sek.), so dass das System stabilize die Wärmeversorgung des neuen Baseline nach jeder Injektion.
HINWEIS: Der Zeitabstand zwischen den Injektionen in der M2 Experiment sollte kurz genug sein, um die Umwandlung einer bedeutenden Menge des Substrats zu vermeiden, so dass die Messungen unter stationären Bedingungen durchgeführt werden. - In der M2-Experiment verwendet kleine Mengen (z. B. 2 &mgr; l) für die erste Injektion, deren entsprechender Wert während der anschließenden Datenanalyse verworfen. Tatsächlich stellt es oft Artefakte aufgrund der anfänglichen Substratdiffusion durch die Spritzenspitze und das Vorhandensein von Luftblasen in der Spritze Nadel gefangen.
- Stellen Sie die Referenzleistung, die ungefähre Ebene, in der die Grundlinie wird vor der Umsetzung gelegt werden beginnt, bei einem Wert von 20. Dann definieren Sie die experimentelle Enzym-und Substratkonzentrationen und wählte einen Namen für das Experiment.
- Bestimmen die Versuchstemperatur, typischerweise bei 25 ° C. ITC ermöglicht Arbeitstemperaturen zwischen 2 ° C und 80 ° C. Das Experiment ist bereit für den Betrieb. Drücken Sie "Start"-Taste, um das Experiment zu starten.
- Nachdem das Experiment beendet ist, reinigen Sie die Probenzelle und die Spritze entsprechend den Anweisungen des Herstellers.
- Wiederholen Sie das Experiment, zumindest ein oder zwei Mal, um die Reproduzierbarkeit der Daten zu überprüfen.
3. Datenanalyse
- Aus der Analyse-Programm, klicken Sie auf die Schaltfläche "Daten lesen", und navigieren Sie zu dem Ordner, in dem die. Itc-Datei des Experiments durchgeführt M2 befindet. Klicken Sie auf den Pfeil nach unten scrollen der "Dateityp" und wählen Sie "Enzym-Assay (es?)". Anschließend klicken Sie auf und öffnen Sie die. Itc-Datei des M2-Experiment.
- Besorgen Sie sich die AH der Reaktion aus der Integration der Kurve der M1 Versuch gemäß Gleichung 5.
"Breite =" 126 "/> (5)- Klicken Sie auf die Schaltfläche "Daten lesen", und wählen Sie die Datei. Itc der durchgeführten Experiment M1. Mit Origin, teilen Sie die Kurve in verschiedenen Teilen enthalten jeweils einen Spitzenwert und speichern Sie jede Spitzen als. Opj Datei. Öffnen der Datei entsprechend dem ersten Peak Abweichung von der Grundlinie im Thermogramm der einzelnen Injektion M1 Experiment integrieren und verteilen die erhaltene Fläche resultierende Wert, ausgedrückt in μcal, durch die endgültige Substratkonzentration in der Probenzelle, ausgedrückt in uM, und durch die Zellenvolumen in Litern, Bestimmen, gemäß Gleichung 5, die &Dgr; H der Reaktion.
- Wiederholen Sie den Vorgang für den zweiten Höhepunkt der M1 Experiment und einen durchschnittlichen Wert für die beiden AH-Messungen zu erhalten.
- Bestimmen dQ / dt von der M2 Experiment Messen der Differenz zwischen der ursprünglichen und der neuen Basisgrundlinie nach der jeder Injektion. Konvertieren Sie die Experimental Daten an Reaktionsgeschwindigkeiten nach Gleichung 4, mit dem in der M1-Experiment erhalten Enthalpie-Wert und passen die Daten an die Michaelis-Menten-Gleichung.
- Aus der Analyse-Programm, klicken Sie auf die Schaltfläche "Daten lesen", und wählen Sie die Datei. Itc der durchgeführten Experiment M2. Klicken Sie auf den Pfeil nach unten scrollen der "Dateityp" und wählen Sie "Enzym-Assay (es?)".
- Das Dialogfeld Enzymassay öffnet, so dass die Auswahl einer der vier Modelle. Wählen Sie "Methode 2 - nur Erde" aus dem Fenster.
- In der AH-Fenster, geben Sie den Wert von AH in Schritt 4.2 erhalten.
- Klicken Sie auf die "Konzentration", um die Konzentrationswerte zu überprüfen, um in der Anpassungsprozedur verwendet werden. Klicken Sie auf den "Durchschnittszeit (P)"-Taste. Das Dialogfeld geöffnet, so dass die Möglichkeit zu ändern oder den Standardwert. Dieser Wert steht für die Zeit vor jeder spritzenIonen in der das Instrument mittelt das Leistungssignal an den Leistungspegel bei jeder Substratkonzentration zu bestimmen. Klicken Sie auf OK, um den Standardwert zu bestätigen.
- Klicken Sie auf die Schaltfläche "Zero-Y-Achse". Der Cursor verwandelt sich in ein Fadenkreuz so dass ein Doppelklick auf einen Punkt, bei y = 0 setzen. Doppelklicken Sie kurz vor dem ersten Einspritzstelle.
- Klicken Sie auf die Schaltfläche Rate berechnen. Betrag ist gegenüber der Substratkonzentration, durch Teilung der während der Titration der Probe Zellvolumen (unter Berücksichtigung von Verwässerungseffekten) aufgenommen Substrat abgeleitet aufgetragen. Diese Operation gibt eine typische Michaelis-Menten-Plot, ausgestattet können bis K und M k cat erhalten.
- Wenn einige Punkte sollten gelöscht werden, wählen Sie die Schaltfläche "Truncate Daten". Verschieben Sie die Daten Marker, um die schlechten Datenpunkte und klicken Sie doppelt auf eine der Markierungen oder drücken Sie die Eingabetaste auszuschließen.
- Mit der Funktion "Fit zu modellieren", um die Kurve zu passen underhalten die kinetischen Konstanten.
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Representative Results
Urease (EC 3.5.1.5; amidohydrolase Harnstoff) ist ein Multiunternickelhaltige Enzym in Archaea, Bakterien, einzelligen Eukaryoten und Pflanzen gefunden. Dieses Protein wirkt in der letzten Stufe von organischen Stickstoffmineralisierung und katalysiert die Hydrolyse von Harnstoff zu Ammoniak und Carbamat, das spontan zerfällt, um ein zweites Molekül Ammoniak und Bicarbonat (Gleichung 6) 12 zu ergeben.
(6)
Diese Reaktion führt zu einem Gesamtanstieg der pH-Wert der Umgebung, die verantwortlich von negativen Auswirkungen auf die menschliche Gesundheit und die Landwirtschaft 13 ist. In Pflanzen ist die primäre Rolle von Urease zur Stickstoffanreicherung von Arginase-abgeleiteten Harnstoff 14 recyceln. Pflanzen Ureasen sind in der Regel Homo-Hexamere ein 6 mit jeder Untereinheit, die eine aktive Website mit zwei Ni 2 +-Ionen 15. Unter ihnenCanavalia ensiformis (Bohne) Urease (JBU) war das erste Protein, um im Jahr 1926 16 kristallisiert werden. Seitdem haben mehrere Studien wurden die strukturelle und enzymatische Aktivität der Ureasen aus mehreren Quellen 13, 17 gekennzeichnet. Daher wurde die Aktivität der ureolytischen JBU als Vertreter Reaktion auf die Anwendbarkeit von IKT in der quantitativen Bestimmung der enzymatischen Katalyse zeigen, gewählt. Ein Wert von &Dgr; H = -10.5 kcal / mol wurde in einem Experiment M1 (Fig. 2A) durch die Integration der Wärmekraft resultierende durch Einspritzen von Harnstoff Urease-Substrat in die Lösung, und man die Reaktion vollständig ablaufen gemessen. Die in einem Experiment M2 (2B) registriert Wärmeleistung an die Reaktionsgeschwindigkeit unter Verwendung von Gleichung 4 (Fig. 2C) umgewandelt. Form der erhaltenen Daten an die Michaelis-Menten-Gleichung, sofern die kinetischen Parameter für die JBU in20 mM HEPES pH 7 als k cat = 30200 s -1 und K M = 3,45 mM, in Übereinstimmung mit den zuvor berichteten Daten 18, 19.
2. Harnstoff-Hydrolyse durch Urease von ITC. JBU (Typ C3) bestimmt wurde, als lyophilisierte Enzym (Nennaktivität 1.538 U / mg) bezogen und mit 20 mM HEPES pH 7 auf die Endkonzentration verdünnt. Die Konzentration des Enzyms in dem Reaktionsgemisch wurde durch Vergleich der ermittelten Aktivität des gekauften Produkt der Aktivität des reinen Enzyms berechnet, berichtet, 6.200 U / mg reines Enzym 20 und ein Molekulargewicht von 545 kDa, entsprechend die Homo-hexamere Protein. (A) in der M1-Experiment beobachtet Thermische Leistung, bei 25 ° C mit 2 x 5 ul Injektion durchgeführtgen von 20 mM Harnstoff (in der Injektionsspritze) in 1 nM JBU (in der Probenzelle). Ein Abstand von 750 sec zwischen den Injektionen wurde angewandt, um die Grundlinie zurückkehrt, um den Anfangswert zu ermöglichen. Die Enthalpie der Reaktion wird durch die Integration von jeder Spitze und Mitteln der zwei Werte berechnet wird, gemäß Gleichung 5. Der Wert wird im Text angegeben. (B) in der M2-Experiment beobachtet thermische Energie, durch Titration von 400 mM Harnstoff (20 x 5 ul Injektionen) in 15 pM JBU erhalten. Ein Abstand von 180 Sekunden wurde zwischen den Injektionen angewandt wird, um damit das System den stationären Niveau zu erreichen und zu halten. DQ / dt bei verschiedenen Substratkonzentrationen als Verschiebung der Grundlinie nach jeder Zugabe erhalten. Die Verdünnungswärme wird als Blindversuch (grau), durch Titration Substrat in den Puffer alleine durchgeführt angezeigt. (C) Die Baseline-Verschiebung in 2B wurde mit der Reaktionsrate umgewandeltGleichung 4. Form der erhaltenen Daten (ausgefüllte Quadrate) wurde unter Verwendung von Gleichung 2 und wird als durchgezogene Linie dargestellt. Der Wert von K M und k cat von der Passform erzielt werden im Text angegeben.
Die in der M1-Experiment gemessenen Gesamtwärmeänderung stellt die Summe aller Ereignisse während der Reaktion unter Analyse auftreten und ist abhängig von der molaren Enthalpie aller Prozesse, auch ggf. Protonenabgabe oder Aufnahme aus dem Puffer. In einem allgemeinen Verfahren, bei dem das Reaktionssystem erwirbt Protonen in einer gepufferten Lösung, die Puffer Protonen freigesetzt, wodurch zusätzliche Wärme innerhalb der Reaktionszelle. Daher ist die gemessene scheinbare &Dgr; (&Dgr; H app) und schließt die intrinsische &Dgr; H der Reaktion (&Dgr; H int) sowie die Ionisationsenthalpie des Puffers (&Dgr; H Ion), und ii) die Anzahl der Tauscherten Protonen (n) gemäß Gleichung 7:
(7)
Unter Verwendung dieser Gleichung in M1 Experimente können wir n und &Dgr; H int bestimmen, indem das gleiche Experiment in Puffern mit unterschiedlichen Ionisierung Enthalpien und Auftragen der gemessenen &Dgr; H app als Funktion der Ionen &Dgr; spezifisch für den Puffer. Aus der resultierenden linearen Regression, n wird aus der Steigung abgeleitet: eine negative Steigung reflektiert Protonen durch den Puffer erworben, während eine positive Steigung darstellt Protonen aus dem Puffer freigesetzt; &Dgr; H int aus dem Schnittpunkt auf der Y-Achse abgeleitet wird.
Wie in Gleichung 6 beobachtet, die insgesamt Harnstoffhydrolysereaktion führt die Übernahme eines Protons H + aus dem Puffer. Dementsprechend wird, wie deoben beschrieben, enthält die Reaktionswärme der Beitrag der Puffer Deprotonierung. Um die intrinsische &Dgr; H der Hydrolysereaktion zu berechnen, wurden drei Experimente M1 in verschiedene Puffer (HEPES, Tris-HCl, Phosphat), gekennzeichnet durch drei verschiedene &Dgr; Ionen durchgeführt. &Dgr; H int und die Zahl der Protonen von dem Puffer freigegeben wird, aus der berechneten Achsabschnitt und die Steigung der linearen Anpassung der experimentellen Daten (Fig. 3) nach Gleichung 7 wurden -14.7 kcal / mol bzw. 0,98, in voller Übereinstimmung mit Daten, die vorher für die gleiche Reaktion, die durch Helicobacter pylori Urease katalysiert 7 gemeldet. Nach unserer Kenntnis sind keine thermodynamischen Daten für JBU berichtet worden, so weit.
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Discussion
Bedeutung der ITC, um die enzymatische Aktivität gegenüber bestehenden Methoden zu studieren
Zusätzlich zu den klassischen Anwendungen, verbindliche Gleichgewichte zu untersuchen, bietet isothermen Titrationskalorimetrie eine zuverlässige und schnelle Methode, um enzymatische Reaktionen in Lösung charakterisieren, mit der Reaktionswärme als Sonde, ohne Systemänderung oder die Kennzeichnung erfordern. Die kinetischen Parameter k cat und K M werden in der Regel durch eine Reihe von Zeitverlaufsexperimente, in denen die Produktbildung (oder Substratverbrauch) in kontinuierlichen oder diskontinuierlichen Tests überwacht erhalten. Typischerweise wird das Substrat bzw. Produktkonzentration durch Lichtabsorption oder Fluoreszenz bei charakteristischen Wellenlängen gemessen. , Die meisten Substrate und / oder Produkte sind jedoch nicht spektroskopisch aktiv und daher ein Chromophor oder Fluorophor enthalten sein müssen, um die Reaktion zu folgen. Alternativ gekoppelten Assays mitdas Produkt der Katalyse ein Substrat für eine weitere Reaktion mit messbaren Produkts, verwendet werden könnten. Diese Verfahren sind jedoch zusätzliche Variablen einführen, die die Genauigkeit der ermittelten Werte von K M und k cat reduzieren. Darüber hinaus könnte die Charakterisierung der Enzymhemmung durch kleine Liganden mit traditionellen Methoden der Extinktion oder der Fluoreszenz des kleinen Liganden selbst, was die Zuverlässigkeit des spektroskopischen Assay verändern können kompliziert sein. Alternative Verfahren umfassen Stopped-Flow-Techniken, bei denen die Menge des Produktes wird unter Verwendung von Massenspektrometrie oder Chromatographie quantifiziert. Diese Techniken sind sehr präzise und zuverlässig, sind aber zeitaufwendig und teuer für Routineuntersuchungen. Die Sonde, die in ITC Experimenten, dass die Wärme freigesetzt oder absorbiert wird, ist eine intrinsische Eigenschaft fast alle chemischen Reaktionen. Daher ITC keine Änderung oder die Kennzeichnung des Systems unter Analyse. Außerdem tseine Technik ist einfach und schnell, erfordert wenig Material und kann in der Lösung 22, 23 durchgeführt werden.
Kritische Schritte im Rahmen der Protokoll und mögliche Änderungen
Die Reaktionsanalyse wird im allgemeinen in zwei unterschiedlichen Experimenten, die die gesamte molare Enthalpie der Reaktion und der Wärmeänderung über die Zeit bei verschiedenen Substratkonzentrationen durchgeführt bereitzustellen. Um Daten von guter Qualität zu erhalten, muss das Experiment im Detail zu Beginn der Untersuchung geplant werden. Die Protein-und Substratkonzentrationen müssen sorgfältig bestimmt werden, wie ihre korrekte Wert ist wichtig für die Berechnung der zuverlässigen Parameter in die Datenanalyse. Die Pufferzusammensetzung und der pH-Wert von sowohl dem Enzym und dem Substrat Lösungen müssen identisch sein, um die Mischungswärme während der Substratzugabe zu minimieren. Dieser ist in der Regel, indem eine Dialyse oder eine Größe ausschließlich sichergestelltsion Chromatographieschritt auf die Enzymlösung vor Durchführung des Experiments, und mit dem Puffer von der Säule eluiert, um das Substrat aufzulösen. Ein Kontrollversuch muss mit identischen Lösungen von Substrat in Abwesenheit des Enzyms in dem Reaktionspuffer injiziert geführt werden, um die Verdünnungswärme abzuziehen oder zu überprüfen, dass es vernachlässigbar ist.
Datenanalyse wird in der Regel mit der Entstehung Programm ITC des Herstellers durchgeführt. Ein alternatives Programm der Wahl für die Datenanalyse verwendet werden, falls erforderlich.
Fehlersuche und Grenzen der Technik
Ein gutes Signal-Rausch-Verhältnis erhalten wird, wenn die Reaktion mit einer Geschwindigkeit, die das System, um genügend Wärme in der ITC Zelle erzeugen, um den instrumentNachweisGrenze überwinden kann. Dies ist in der Regel bei Systemen mit höheren k cat als 1 min -1 erreicht. In diesem Fall,Origin-Software für die ITC berechnet automatisch die Michaelis-Menten-Plot aus den Rohdaten und mit nichtlinearen Least-Squares-Regression, es k cat und K M-Werte berechnet. Diese Analyse geht davon keine signifikante Produkthemmung. Letzteres ist in der Regel sichtbar, wenn folgenden Injektionen in der M1-Experiment erzeugen Spitzen mit unterschiedlichen Formen und vor allem mit der Macht Spur von dem zweiten Peak dauert länger, um zur ursprünglichen Ausgangswert zurück. Wenn Produkthemmung auftritt, eine andere Software der Wahl, mit zweckspezifischen Gleichungen implementiert, verwendet werden.
In Anbetracht der inhärenten Unterschied von jeder Enzymsystem und die unterschiedlichen Wärme durch verschiedene Reaktionen, die a priori nicht quantifiziert werden können, Bestimmen der optimalen Betriebsbedingungen (z. B. Enzym-und Substratkonzentrationen, die Anzahl und das Volumen der Injektionen, Zeitabstand usw.) für die erzeugte ein spezifisches System manchmal r notwendig machen einige Sondierungs Titrationen.
Während der Analyse muss Sorgfalt angewendet werden, um die Versuchsbedingungen gemäß dem System unter Analyse auswählen. So hemmt Phosphat Harnstoff-Hydrolyse durch Urease, und daher der Durchführung des Experiments in Phosphatpuffer verringert die Gesamtgeschwindigkeit der enzymatischen Reaktion 24, 25.
Anwendungen
Sobald die Kinetik der Enzymreaktion bestimmt worden ist, kann die Reaktion in Gegenwart von verschiedenen Typen und Konzentrationen von Enzyminhibitoren in der Probenzelle wiederholt werden, um zu messen, unter Verwendung der allgemeinen Hemmung Gleichung 8 26, Wettbewerbs (K IC) und nicht wettbewerbsfähig (K UIC) Hemmkonstanten, so dass es uns, zu unterscheiden, zwischen verschiedenen Arten von Hemmung.
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Im Ergebnis kann dieses Verfahren als eine schnelle und wirtschaftliche Weise eine große Zahl von Enzyminhibitoren für pharmazeutische und industrielle Anwendungen, wie etwa in der Arzneimittelscreeningtest verwendet werden.
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Disclosures
Die Autoren haben nichts zu offenbaren.
Acknowledgments
Der Spezialdünger Products Company (SFP) ist für die Bereitstellung der erforderlichen Mittel für diese Studie bestätigt.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| HEPES | Sigma | H3375 | dissolving in water and adjusting pH with NaOH |
| TRIZMA-Base | Sigma | T1503 | dissolving in water and adjusting pH with HCl |
| Sodium dihydrogen phosphate | Riedel-de-Haen | 4270 | dissolving in water |
| Sodium phosphate dibasic | Riedel-de-Haen | 30427 | dissolving in water |
| Urea | Sigma | U4128 | dissolving in water at 40 °C |
| Canavalia ensiformis urease (type C-3) | Sigma | U0251 | dissolving in 20 mM HEPES pH 7 and stored at -80 °C |
| VP-ITC on Origin 7.0 | MicroCal (GE Healthcare) | SYS13901 | instrument |
| VPViewer2000 1.30.00 on Origin 7.0 | MicroCal (GE Healthcare) | data acquisition software supplied with the instrument |
References
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