Abstract
La reazione corpo estraneo si verifica quando una superficie sintetica viene introdotto al corpo. Essa è caratterizzata da adsorbimento di proteine del sangue e la conseguente attaccamento e l'attivazione delle piastrine, monociti / macrofagi adesione, e gli eventi di segnalazione cellulare infiammatori, portando a complicazioni post-procedurali. L'Apparato Chandler Loop è un sistema sperimentale che permette ai ricercatori di studiare le interazioni molecolari e cellulari che si verificano quando grandi volumi di sangue sono perfusi su condotti polimerici. A tal fine, questo apparato è stato usato come modello ex vivo che consentano di valutare le proprietà anti-infiammatorie di varie modificazioni superficiali polimeriche. Il nostro laboratorio ha dimostrato che i condotti del sangue, covalentemente modificati via chimica fotoattivazione con CD47 ricombinante, possono conferire biocompatibilità alle superfici polimeriche. Aggiunta di CD47 alle superfici polimeriche potrebbe essere un mezzo efficace per promuovere l'efficacia dei condotti di sangue polimerici. Leiein è la metodologia in dettaglio la chimica fotoattivazione utilizzato per aggiungere CD47 ricombinante per clinicamente rilevanti condotti sanguigni polimerici e l'uso del Chandler Loop come modello sperimentale ex vivo per esaminare le interazioni di sangue con le CD47 modificato e controllo condotti.
Introduction
Molte procedure cliniche, come bypass cardiopolmonare e dialisi renale, richiedono l'uso di condotti sangue polimerici e sono spesso associati a complicanze post-procedurali 1. Quando perfusi con sangue, questi polimeri illeciti la reazione da corpo estraneo (FBR), con conseguente assorbimento di proteine del sangue e piastrine, monociti / macrofagi adesione, e il rilascio di citochine pro-infiammatorie, tutti che contribuiscono complicanze post-procedurali e / o guasto del dispositivo 2,3. Pertanto, le strategie per affrontare la questione rimane un settore importante e costante della ricerca biomateriali. Gli investigatori hanno cercato di affrontare questo problema modificando superfici sangue contatto con bioattivi o bioinerte molecole 4-6. La ricerca nel nostro laboratorio si è concentrata sulla aggiungendo CD47 ricombinante (recCD47) per biomateriali polimerici come strategia per mitigare la FBR e aumentare l'efficacia di questi materiali. CD47 è una transmembr ubiquitariamente espressaane proteina con un ruolo conosciuto in evasione immune, riconoscere il carattere "self" su cellule che esprimono 7-10 e mostra la promessa di conferire biocompatibilità quando aggiunto alle superfici polimeriche 11-13. Signal-normativo proteina alfa (SIRPα), il recettore affine per CD47, e un membro del motivo inibitorio a base di tirosina immunoreceptor (ITIM) -contenenti famiglia di proteine transmembrana, è espresso sulle cellule di origine mieloide 14. Abbiamo precedentemente dimostrato che CD47, tramite segnalazione cellulare SIRPα-mediata, down-regola le risposte immunitarie a poliuretano (PU) e polivinilcloruro (PVC) in in vitro, ex vivo e in modelli in vivo 11-13.
Centrale per le nostre indagini è una chimica fotoattivazione relativamente nuovo, qui descritto, in cui i gruppi tiolici chimicamente reattivi sono covalentemente aggiunti a tubo polimerico facendo reagire il tubo con un polimero multifunzionale (PDT-BzPh), composto da 2-pyridyldithio (PDT), il benzofenone fotoreattivo (BzPh) e un polyallylamine carbossi-modificata 11-13. Ridurre i gruppi PDT covalentemente allegati con tris (2-carbossietil) fosfina cloridrato (TCEP) 11 produce una superficie tiolati che può essere successivamente fatto reagire con porzioni terapeutiche. Particolareggiata in questa sede e in precedenza 12,13, recCD47, ulteriormente modificato con l'aggiunta di una poli-lisina coda C-terminale 12,13, viene fatto reagire con Sulfosuccinimidyl-4-[N -maleimidomethyl] cicloesano-1-carbossilato (solfo-SMCC) per 1 ora a generare gruppi tiolici-reattiva, consentendo una formazione di legami monosulfide tra il tubo e il recCD47 11. La capacità anti-infiammatoria delle superfici funzionalizzate CD47 è stato testato, ex viv o, utilizzando l'Apparato Chandler Loop con tutto il sangue umano, che è stato originariamente descritto nel 1958 come un modello in vitro della coagulazione trombotica 15. L'apparato si basa su unSistema di tubo chiuso parzialmente riempito di aria e un motore rotativo per far circolare il sangue attraverso il tubo 15. Questo modello sperimentale fornisce l'opportunità di esaminare l'effetto dell'esposizione sangue su superfici modificate e non modificate così come l'effetto di tali modificazioni superficiali sulla fisiologia delle cellule del sangue.
recCD47 può essere aggiunto a una varietà di superfici polimeriche utilizzando questa chimica fotoattivazione, e la sua capacità anti-infiammatoria può essere valutata utilizzando un modello clinicamente rilevante ex vivo imitando la perfusione di sangue sulle superfici polimeriche 11,12. Grade clinici condotti sanguigni modificati con recCD47 mostrano molto meno piastrinica e l'adesione delle cellule infiammatorie rispetto a polimeri modificati se esposti a sangue umano nell'apparato. Una descrizione step-by-step di questo processo di modifica è descritto di seguito.
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Protocol
1. Modifica polimerici Superfici con recCD47
NOTA:. Il protocollo è riassunta schematicamente in Figura 1 Figura 1A illustra generazione di superfici polimeriche tiolo reattivo Figura 1B illustra generazione di tiolo reattivo recCD47..
- Giorno 1
- Preparare una soluzione di PDT-BzPh (1 mg / ml) e bicarbonato di potassio (KHCO 3) (0,7 mg / ml) in acqua sterile. Mescolare notte a 4 ° C (riparo dalla luce).
- Giorno 2
- Tagliare il tubo polimerico a 40 centimetri pezzi lunghi (abbastanza a lungo per adattarsi intorno ruote girevoli).
- Bagnare i tubi in una soluzione acquosa 0,1% di hexacylpyridinium per 90 minuti a temperatura ambiente su un agitatore o su Chandler Loop Apparecchiatura. Sciacquare le provette con 3x acqua sterile dopo l'90 min ammollo.
- Acidificare la soluzione di PDT-BzPh dal 1 ° giorno aggiungendo il 15% di potassio fosfato monobasico acquosa (KH 2 4). Aggiungere 50 ml KH 2 PO 4 per ml di PDT-BzPh, formando una soluzione micellare nuvoloso.
- Bagnare i tubi nella soluzione PDT-BzPh acidificato per 40 minuti a temperatura ambiente su un agitatore o apparato.
- Sciacquare le provette con acido acetico diluito (1: 1.000) una volta.
- Esporre i tubi per irradiazione UV per una durata complessiva di 60 min. Ruotare i tubi ¼ di giro ogni 15 minuti per irradiare l'intera superficie.
- Bagnare i tubi in una soluzione di bicarbonato di potassio / ml 20 mg (KHCO 3) per 20 minuti a temperatura ambiente su un agitatore o apparato.
- Sciacquare le provette con 3x acqua sterile e conservare a 4 ° C in acqua sterile.
- Giorno 3
- Disciogliere 5 mg solfo-SMCC in 200 microlitri dimetilformammide (DMF) (Attenzione: Eseguire in cappa).
- Aggiungere 50 ml della soluzione di solfo-SMCC preparata al punto 1 a 0,1 mg / ml di soluzione di poli-lisina recCD47, e mescolare per 60 min a rotemperatura om.
- Durante 60 min mescolare, degas sterilizzato Dulbecco Phosphate Buffered Saline (DPBS) e mettere da parte.
- Purificare solfo-SMCC reagito recCD47 utilizzando un 7K peso molecolare di cut-off di spin dissalazione colonna secondo le istruzioni del produttore. Raccogliere finale a flusso continuo (alta qualità tiolo reattivo recCD47) e portare a volume necessario per rivestire l'interno del tubo con DPBS.
- Sciacquare i tubi dal giorno 2 con sterile, degassata DPBS 3x.
- React superficie modificata dei tubi con una soluzione di 20 mg / ml di tris (2-carbossietil) fosfina cloridrato (TCEP) in DPBS degassati per meno di 2 min. Sciacquare le provette con sterili degassificato DPBS 4x.
- Aggiungere il recCD47 Sulfo-SMCC-reagito ai tubi e incubare una notte a 4 ° C su un agitatore o apparati.
2 Immunoassay Quantificazione dei recCD47 su superfici modificate
- Sciacquare i tubi modificati per essere quantificato dal Day 3 with DPBS 3x. Conservare le provette non utilizzate per la quantificazione in DPBS a 4 ° C.
- Utilizzare una biopsia 4 mm e fare i campioni del tubo duplicati e inserire pugni biopsia in pozzetti di una piastra a 96 pozzetti.
- Preparare un controllo negativo costituito da un tubo campione non modificato non trattato con l'anticorpo di rilevazione. Preparare un controllo dell'anticorpo costituito da un tubo campione non modificato trattati con l'anticorpo di rilevamento. Preparare i campioni di prova dei tubi modificati trattati con l'anticorpo di rilevazione.
- Campioni di blocco con albumina sierica bovina 0,4% (BSA) in DPBS per 60 minuti a temperatura ambiente su un agitatore.
- Dopo il blocco, aspirare BSA e sciacquare con tris-buffered saline più l'1% Tween-20 (TBST) 3x, 10 minuti ciascuna su un agitatore.
- Preparare una diluizione di lavoro degli anticorpi nel 0,4% di BSA secondo la diluizione raccomandata dal produttore per saggi immunologici. Diluire CD47 anticorpi umani B6H12-FITC 1: 100 in 0,4% di BSA.
- Aggiungere 200 ml di diluizione anticorpo per pozzetti. Incubate controlli negativi con il 0,4% solo BSA. Incubare a temperatura ambiente per 60 minuti su un agitatore (riparo dalla luce).
- Risciacquare con TBST 3x, 10 minuti ciascuna su un agitatore. Aspirare l'ultimo risciacquo TBST e aggiungere 200 microlitri di DPBS pozzetti del campione del tubo.
- Raccogliere il flow-through finale, che è di alta qualità tiolo-reattiva CD47 ricombinante e portare a un volume necessario per rivestire l'interno dei tubi con DPBS.
- Leggi intensità del segnale FITC utilizzando un lettore di micropiastre con FITC di eccitazione (485 nm) e di emissione impostazioni (538 nm).
- Calcola recCD47 destinato a superficie polimerica sulla base di valori standard, che rappresentano per auto-fluorescenza e non specifico vincolante dal campione di controllo dell'anticorpo.
3. Chandler Loop Apparato protocollo
Cercate Institutional Review Board (IRB) approvazione del protocollo di raccolta del sangue e informato consenso scartoffie prima di iniziare la raccolta dei campioni di sangue umano. Ottenere informazionirmed consenso da un donatore di sangue umano.
NOTA: Un diagramma raffigurante l'apparato è mostrato nella Figura 2.
- Riempire bagnomaria con acqua distillata fino a circa mezzo delle ruote di diametro sono sommerso. Aggiungere abbastanza candeggina al bagnomaria per ottenere una soluzione di candeggina al 10%. Set bagno d'acqua a 37 ° C e che la temperatura equilibrare.
- Raccogliere adattatori in metallo (indicati nella Figura 1B), tubi senza modifiche e tubi modificati, e assemblare attorno alle ruote apparecchi, come mostrato nella Figura 1C. Assicurarsi che il tubo si adatta snuggly intorno alla ruota con l'adattatore in metallo posto.
- Ottenere 30 ml di campione di sangue usando un protocollo IRB-approvato, in un flaconcino preriempita con 2 ml di citrato o altro anticoagulante, e mescolare per inversione per prevenire la coagulazione una volta che il campione è stato raccolto.
- Aggiungere circa 10 ml di sangue per ciascun tubo con la valvola di metallo e la siringa, lasciando un po 'd'aria nel tubo. Fissare il tappo della valvola e rotate per 3 ore.
- Drenare il sangue in un bicchiere reflue trattate con una soluzione di candeggina al 10% (o come richiesto dalla politica istituzionale).
- Lavare delicatamente il tubo interno con DPBS per rimuovere tutte le tracce di sangue. Raccogliere flusso continuo nel becher rifiuti. Smaltire sangue in conformità con la politica istituzionale.
- Disinfettare l'apparato e il sangue di contattare superfici utilizzando una soluzione di candeggina al 10% o in base alla politica istituzionale.
- Campioni di processo per microscopia a fluorescenza o la scansione microscopia elettronica come descritto di seguito.
4. fluorescente Microscopia e conteggio delle cellule
- Preparare una soluzione al 4% paraformaldeide (PFA) (Attenzione: Eseguire in cappa).
- Incubare il tubo in una soluzione PFA 4% per una notte a 4 ° C.
- Dopo incubazione overnight, rimuovere 4% PFA e risciacquare film molto delicatamente con DPBS.
- Tagliare il tubo in sezioni per esporre la superficie del lume per la colorazione.
- Stainuna sezione del tubo con alcune gocce di mezzo di montaggio con 4 ', 6-diamino-2-fenilindolo (DAPI) per 30 minuti a temperatura ambiente (proteggere dalla luce). Dopo la colorazione, sciacquare il tubo molto delicatamente con DPBS per ridurre il segnale DAPI sfondo.
- Immagine utilizzando un microscopio a fluorescenza dotato di un filtro DAPI e fotocamera digitale per contare il numero di cellule in 9 settori ciecamente selezionati di vista sotto 200 ingrandimenti.
- Cella Record conta per campo visivo ed eseguire appropriate analisi statistiche per determinare la significatività statistica dei risultati.
5. Microscopia Elettronica a Scansione
- Preparare una soluzione di glutaraldeide al 2% (Attenzione: Eseguire in cappa).
- Incubare il tubo in una soluzione di glutaraldeide al 2% notte a 4 ° C.
- Dopo incubazione overnight, lavare delicatamente la 3x tubi con DPBS.
- Preparare una soluzione all'1% di tetrossido di osmio (Attenzione: pericolo di inalazione grave! Utilizzare in cappa).
- Incubare il tubo in una soluzione all'1% di tetrossido di osmio per 15 min a temperatura ambiente.
- Lavare delicatamente il tubo 3x con DPBS.
- Preparare una serie di concentrazioni di etanolo (25%, 50%, 75%, 95% e 100% etanolo).
- Disidratare il tubo mediante incubazione nella serie di concentrazioni di etanolo. Incubare a 25%, 50%, 75% e 95% di etanolo per 20 minuti ciascuno. Incubare a 100% di etanolo per 30 min.
- Punto supercritico asciugare il tubo con CO 2 per 45 minuti per rimuovere tutta l'umidità.
- Sezioni del tubo Montare su un stub campione con pasta d'argento o grafite.
- Sezioni del tubo cappotto con 12,5 nm di oro-palladio.
- Esaminate in un microscopio elettronico a scansione.
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Representative Results
Generazione di superfici polimeriche tiolo reattivo attraverso l'uso di PDT-BzPh e TCEP insieme tiolo reattivo recCD47 poli-lisina utilizzando SMCC permette il fissaggio di recCD47 a superfici polimeriche. Il processo di modifica è riassunta schematicamente in figura 1. La comodità di questo processo di modifica è che può essere applicato a molte proteine differenti e molteplici superfici polimeriche, assumendo la proteina può essere modificato con sufficienti gruppi chimicamente reattivi come lisine-ammina contenente e che il polimero ha idrocarburi sufficientemente disponibili.
E 'stato dimostrato in precedenza che recCD47 può essere aggiunto alle superfici polimeriche che utilizzano questo protocollo 11-13. Come mostrato in Figura 3A, significativo colorazione FITC è visibili recCD47, utilizzando un anticorpo coniugato con FITC al dominio Ig extracellulare del CD47, che è localizzata specificamente alla pellicola come mostrato da imaging DIC(Figura 3B). Questi risultati dimostrano che recCD47 può essere covalentemente a film di poliuretano. Misurare le unità fluorescenti e il confronto con una curva standard determinato la concentrazione di superficie vincolata recCD47. Abbiamo dimostrato che recCD47 può essere aggiunto a superfici polimeriche in quantità superiori a 500 ng / cm 2,11-13. Questi risultati confermano che questo protocollo modifica polimero a base tiolo-può essere utilizzato per aggiungere poli-lisina proteine ricombinanti modificato per superfici polimeriche.
CD47 ha dimostrato di essere un marker di "sé", impedendo l'adesione delle cellule infiammatorie e l'attivazione del sistema immunitario 7-13. Per simulare le condizioni in vivo il più possibile in un ambiente ex vivo, tutto il sangue umano può essere perfuso attraverso modificato e modificato il tubo polimerico nel Apparato Chandler Loop (mostrato in Figura 2). Attaccamento cella per il tubo può essere valutata mediante colorazione DAPI (
Figura 1 Schema di modificazione superficiale. A) superfici polimeriche tiolati sono stati generati incubando la superficie polimerica con il reticolante fotoattivabile PDT-BzPh e successiva riduzione con TCEP. B) </ Strong> SMCC è stato utilizzato per la produzione di tiolo-reattiva recCD47, che è stato poi fatto reagire con la superficie sintetica tiolati cedere recCD47 superfici funzionalizzate.
Figura 2 Schema di Chandler Loop Apparatus. A) L'apparecchiatura consiste in un bagno d'acqua riscaldata a 37 ° C, ruote rotanti fissati su un palo di metallo collegato a un motore rotativo. Questa impostazione permette al motore rotativo a girare le ruote, submersing così porzioni del tubo nel bagno d'acqua a 37 ° C e la perfusione del sangue attraverso il tubo. B) adattatori metallici sono utilizzati per collegare le estremità del tubo formando un loop circa una delle ruote girevoli. Il sangue viene aggiunto ai tubi attraverso la porta valvola in metallo e ricoperto con il cappuccio della valvola. C) Una volta montata, la valvola di tubi e metallo dovrebbe inserirsi agevolmente around la ruota in rotazione, come mostrato qui con un tubo vuoto.
Figura 3 Quantizzazione recCD47 su film di poliuretano. Gli anticorpi diretti contro il dominio Ig esterno di CD47 sono stati usati per quantificare la quantità di recCD47 legata ai film di poliuretano. Immagini al microscopio a fluorescenza prese sotto ingrandimento 200X con appositi set di filtri che mostrano il rilevamento FITC di recCD47 allegata al poliuretano (A). Immagini (B) DIC mostrano che il segnale FITC è specifico per il film di poliuretano.
Figura 4 celle adesione al poliuretano non modificato e recCD47 modificati. Il sangue umano intero è stato raccolto e perfuso sopra non modificato o modificato recCD47-Film PU per 3 ore. Dopo la perfusione 3 ore, film venivano lavate con DPBS, e le cellule attaccate sono state fissate con 4% PFA notte a 4 ° C e DAPI colorate per 30 min a temperatura ambiente. Cellule DAPI-colorate sono state contate utilizzando un microscopio a fluorescenza sotto 200X di ingrandimento e appositi set di filtri. (A) 9 campi selezionati in modo casuale di vista sono stati contati per ogni modifica. (B) I dati rappresentativa 9 campi di vista ed è espresso come media ± errore standard (p = 0,004).
Figura 5 SEM analisi di recCD47 modificato e superfici di controllo seguente analisi ex vivo. Il sangue umano intero è stato raccolto e perfuso su tubi in PVC non modificato o recCD47-modificato per 3 ore. Immagini rappresentative mostrano l'attaccamento delle cellule significativo unmodifiEd superfici mentre le superfici recCD47 modificati mostrano solo una cellula collegata occasionale.
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Discussion
La chimica fotoattivazione (riassunto nella Figura 1) consente la modifica di qualsiasi superficie polimerica che ha idrocarburi sufficienti per facilitare il fissaggio PDT-BzPh e la successiva irradiazione UV per foto-attivare il PDT-BzPh. Funzionalizzare la superficie polimerica con gruppi tiolici reattivi consente la successiva collocazione di una serie di molecole di interesse testabili. Nei nostri studi particolari abbiamo scelto ricombinante CD47 11-13. La particolare coniugazione chimica che abbiamo usato coinvolti la reazione di gruppi amminici della proteina con la croce linker bifunzionale SMCC 11-13. Questo ha fornito tiolo reattivo recCD47 per la successiva reazione con la superficie polimerica tiolati. Il prodotto finale è un legame mono-solfuro covalentemente impegnare la recCD47 al polimero. Per garantire che i gruppi amminici di aminoacidi a CD47 non sono stati utilizzati per la reazione, e riducendo così l'efficaciadel CD47 immobilizzato, abbiamo ulteriormente modificato il recCD47 inserendo un tag poli-lisina al di proteina C-terminale. Sarebbe possibile che una strategia molecolare simile può essere applicato ad altre proteine. Così la chimica coniugazione presentata qui e altrove 11-13 offre un'occasione importante per valutare la capacità delle molecole potenzialmente terapeutici per conferire biocompatibilità su superfici sintetiche.
Uno svantaggio di questo protocollo è che esponendo alcuni tipi di polimeri, come il poliuretano, a periodi di irradiazione UV prolungati può causare scolorimento. Ciò può essere evitato inserendo il polimero in piatti di polistirene (comunemente usato in coltura tissutale) per impedire lo sbiadimento del polimero senza ostacolare fotoattivazione della PDT-BzPh. La lunghezza d'onda della luce UV utilizzata in questo protocollo è 302 nm; deviazione da questa lunghezza d'onda può causare inefficiente foto-attivazione di PDT-BzPh. Se si utilizza una diversa lunghezza d'onda diLuce UV, ottimizzazione del tempo di esposizione UV è necessario garantire significativo fotoattivazione.
Seguendo questo protocollo permette il fissaggio di recCD47 alle superfici polimeriche, allo scopo di evasione immune e convogliamento stato "sé" alla superficie polimerica per impedire la reazione da corpo estraneo. Quantificazione del recCD47 allegata alla superficie viene completata usando un anticorpo marcato con FITC al dominio Ig di CD47 utilizzando un saggio immunologico e microscopia a fluorescenza (Figura 3). Questa metodologia potrebbe essere adattato ad altre proteine annesse alle superfici polimeriche assumendo disponibilità di anticorpi. Il mancato ottenimento significativa appendice di recCD47 (o altre proteine) potrebbe essere dovuto ad una serie di fattori tra cui, la mancata photoactivate PDT-BzPh, idrocarburi libero insufficiente sulla superficie del polimero, idrofobicità di superficie del polimero, o il polimero potrebbe essere troppo spesso o opaco per permettere alla luce di passare attraverso un'adeguata quantificzione. Tutte queste variabili possono essere sperimentalmente testati e ottimizzati per un particolare polimero.
L'Apparato Chandler Loop è uno strumento unico per l'analisi ex vivo di tutta l'esposizione sangue umano alle superfici polimeriche. Questo sistema ricorda da vicino la perfusione di sangue attraverso condotti di sangue clinici utilizzati in varie procedure mediche, consentendo l'analisi di molti endpoint fisiologici associati a superfici a contatto del sangue. Come endpoint fisiologici per l'appendice di recCD47 a superfici polimeriche, sono stati usati conta delle cellule con colorazione DAPI (Figura 4) e microscopia elettronica a scansione (Figura 5). Altri endpoint possono anche essere utilizzati, a seconda della disponibilità di attrezzature, per esempio, la conta delle cellule prima e dopo perfusione di sangue attraverso i condotti sanguigni polimerici potrebbe essere utilizzato anche. Indipendentemente da superfici, recCD47 modificato esposti significativamente le cellule meno aderito rispetto a superfici di controllo non modificati. Questi data suggeriscono che recCD47 trasmette biocompatibilità di superfici polimeriche e potrebbe potenzialmente essere usato per prevenire il FBR in procedure cliniche utilizzando condotti di sangue polimerici.
Anche se questo è un modello ampiamente usato in vitro per studi di perfusione di sangue, è limitato in alcuni aspetti. I due principali svantaggi di questo metodo derivano dalla necessità di includere aria nel tubo con il campione di sangue. L'interazione frequente di sangue con l'aria può causare dei leucociti e l'aggregazione piastrinica e la denaturazione delle proteine 16-18, che possono interferire con alcuni punti finali. In secondo luogo, l'aria rimane nel punto più alto del circuito, limitando la velocità di circolazione del sangue 19. Nonostante le apparenti limitazioni di questo metodo, induce meno danni sangue rispetto ai metodi concorrenti 19 e serve come un modo di screening della biocompatibilità dei potenziali biomolecole su condotti di sangue polimerici. Una volta biomolecole candidati sono identificati attraversoquesto metodo, ulteriori analisi può essere ottenuta tramite modelli animali in vivo. In definitiva, la biocompatibilità dei polimeri modificati deve essere confermata utilizzando un idoneo sistema modello in vivo.
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Disclosures
La ricerca riportata in questa pubblicazione è stato sostenuto dal National Institute of Biomedical Imaging e Bioingegneria, con il numero premio R21 EB015612 (SJS), e il National Heart, Lung, and Blood Institute, con il numero premio T32 HL007915 (JBS e RJL), della Nazionale Istituto Superiore di Sanità.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 16% Paraformaldehyde (PFA) | Thermo Scientific | 58906 | Caution! Use in fume hood |
| 25% Glutaraldehyde | VWR | AAA17876-AP | Caution! Use in fume hood |
| 2-pyridyldithio,benzophenone (PDT-BzPH) | Synthesized in lab | N/A | |
| Bovine Serum Albumin (BSA) | Sigma | A3059-100G | |
| Citrate | Sigma | S5770-50ML | |
| Digital Camera | Leica | DC500 | Out of production |
| Dimethylformamide (DMF) | Sigma | 270547-100ML | Caution! Use in fume hood |
| Dulbecco’s Phosphate Buffered Saline (DPBS) | Gibco/Life Technologies | 14190-136 | |
| Fluorescent Microscope | Nikon | TE300 | |
| Glacial Acetic Acid | Fisher Scientific | A38-212 | Caution! Use in fume hood |
| Human CD47 (B6H12) – FITC Antibody | Santa Cruz Biotechnology | SC-12730 | |
| Osmium Tetroxide | Acros Organics | 197450050 | Caution! Use in fume hood |
| Potassium Bicarbonate (KHCO3) | Sigma | 237205-100G | |
| Potassium Phosphate Monobasic (KH2PO4) | Sigma | P5655-100G | |
| PVC Tubing (Cardiovascular Procedure Kit) | Terumo Cardiovascular Systems | 60050 | Most clinical-grade tubing will work |
| Scanning Electron Microscope | JEOL | JSM-T330A | |
| Sodium Chloride (NaCl) | Fisher Scientific | BP358-212 | |
| Microplate Reader | Molecular Devices | Spectramax Gemini EM | |
| Sulfo-SMCC | Sigma | M6035-10MG | Moisture Sensitive! |
| tris (2-carboxyethyl) phosphine (TCEP-HCl) | Thermo Scientific | 20491 | |
| Tween-20 | Bio-Rad | 170-6531 | |
| Vectashield with DAPI | Fisher Scientific | H-1200 | Light sensitive! |
| Zeba Spin Desalt Columns – 7 K MWCO | Thermo Scientific | 89891 |
References
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