Abstract
La reacción de cuerpo extraño se produce cuando una superficie sintética se introduce en el cuerpo. Se caracteriza por la adsorción de proteínas de la sangre y la posterior unión y activación de las plaquetas, monocitos / macrófagos de adhesión, y los eventos de señalización celular inflamatorios, dando lugar a complicaciones post-procedimiento. El Aparato Chandler Loop es un sistema experimental que permite a los investigadores estudiar las interacciones moleculares y celulares que se producen cuando grandes volúmenes de sangre son perfundidos sobre conductos poliméricos. Para ello, este aparato ha sido usado como un modelo ex vivo permite la evaluación de las propiedades anti-inflamatorias de diversas modificaciones superficie del polímero. Nuestro laboratorio ha demostrado que los conductos sanguíneos, modificados covalentemente a través de la química fotoactivación con CD47 recombinante, pueden conferir biocompatibilidad a superficies poliméricas. Al añadir CD47 a las superficies poliméricas podría ser un medio eficaz para promover la eficacia de los conductos sanguíneos poliméricos. Suein es la metodología que detalla la química de fotoactivación usado para anexar CD47 recombinante a los conductos sanguíneos poliméricos clínicamente relevantes y el uso de la Chandler Loop como modelo experimental ex vivo para examinar las interacciones de la sangre con las CD47 modificado y de control de conductos.
Introduction
Muchos procedimientos clínicos, tales como el bypass cardiopulmonar y la diálisis renal, requieren el uso de conductos de sangre poliméricos y, a menudo están asociados con complicaciones post-procedimiento 1. Cuando perfundido con sangre, estos polímeros ilícito reacción a cuerpo extraño (FBR), que resulta en la adsorción de las proteínas y plaquetas de la sangre, la adhesión de monocitos / macrófagos, y la liberación de citoquinas pro-inflamatorias, todos los cuales contribuyen a complicaciones post-procedimiento y / o 2,3 fallo del dispositivo. Por lo tanto, las estrategias para hacer frente a este problema siguen siendo un área importante de la investigación en curso y los biomateriales. Los investigadores han tratado de abordar este problema mediante la modificación de las superficies de contacto de la sangre con bioactivos o bioinertes moléculas 4-6. La investigación en nuestro laboratorio se ha centrado en añadiendo CD47 recombinante (recCD47) a biomateriales poliméricos como una estrategia para mitigar el FBR y aumentar la eficacia de estos materiales. CD47 es un transmembr de expresión ubicuaane proteína con un papel conocido en la evasión inmune, conceder el carácter de "sí mismo" en las células que expresan 7-10 y se muestra prometedor a conferir biocompatibilidad cuando anexa a superficies poliméricas 11-13. -Señal reguladora proteína alfa (SIRPα), el receptor afín para CD47, y un miembro del motivo inhibidor basado en tirosina inmunoreceptor (ITIM) que contienen familia de proteínas transmembrana, se expresa en células de origen mieloide 14. Anteriormente hemos demostrado que CD47, a través de la señalización celular mediada por SIRPα, abajo-regula la respuesta inmune a poliuretano (PU) y policloruro de vinilo (PVC) en in vitro, ex vivo e in vivo en modelos 11-13.
Central con nuestras investigaciones es relativamente nueva química de fotoactivación, descrito en el presente documento, en el que los grupos tiol químicamente reactivos se añaden covalentemente a un tubo polimérico por reacción de la tubería con un polímero multifuncional (PDT-BzPh), compuesto de 2-piridilditio (PDT), la benzofenona fotoreactivo (BzPh) y una polialilamina modificado carboxi-11-13. La reducción de los grupos PDT covalentemente adjuntas con tris (2-carboxietil) fosfina clorhidrato (TCEP) 11 produce una superficie tiolada que puede ser posteriormente se hace reaccionar con restos terapéuticos. Detallada en el presente documento y anteriormente 12,13, recCD47, además modificado con la adición de un poli-lisina C-terminal cola 12,13, se hace reaccionar con sulfosuccinimidilo-4-[N -maleimidomethyl] ciclohexano-1-carboxilato (sulfo-SMCC) durante 1 h para generar grupos reactivos con tiol, lo que permite una formación de enlace monosulfuro entre la tubería y recCD47 11. La capacidad anti-inflamatoria de las superficies funcionalizadas CD47 fue probado, ex viv o, usando el aparato de Chandler Loop con sangre humana total, que fue descrito originalmente en 1958 como un modelo in vitro de la coagulación trombótico 15. El aparato se basa en unasistema de tubo cerrado parcialmente lleno de aire y un motor giratorio para hacer circular la sangre a través del tubo 15. Este modelo experimental ofrece la oportunidad de examinar el efecto de la exposición sangre sobre superficies modificadas y no modificadas, así como el efecto de esas modificaciones de la superficie sobre la fisiología de las células de la sangre.
recCD47 se puede añadir a una variedad de superficies poliméricas usando esta química fotoactivación, y su capacidad antiinflamatoria se puede evaluar mediante la utilización de un modelo clínicamente relevante ex vivo imitando perfusión de la sangre sobre superficies poliméricas 11,12. Conductos sanguíneos grado clínico modificados con recCD47 muestran significativamente menos de plaquetas y la fijación de células inflamatorias en comparación con los polímeros no modificados cuando se expone a la sangre humana en el aparato. Una descripción paso a paso de este proceso de modificación se detalla a continuación.
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Protocol
1. modificación polimérico Superficies con recCD47
NOTA:. El protocolo se resume esquemáticamente en la Figura 1 La Figura 1A ilustra la generación de superficies poliméricos reactivos con tiol Figura 1B ilustra la generación de recCD47 reactivo con tiol..
- Día 1
- Preparar una solución de PDT-BzPh (1 mg / ml) y bicarbonato de potasio (KHCO3) (0,7 mg / ml) en agua estéril. Revuelva la noche a 4 ° C (protegerlo de la luz).
- Día 2
- Cortar tubo polimérico en 40 cm piezas largas (suficiente largo para caber alrededor de las ruedas giratorias).
- Remojar tubos en una solución acuosa al 0,1% de hexacylpyridinium durante 90 min a temperatura ambiente en un agitador o en el aparato de Chandler Loop. Enjuague los tubos con 3x de agua estéril después de la 90 min remojo.
- Se acidifica la solución de PDT-BzPh desde el día 1 por la adición de fosfato monobásico de potasio acuoso al 15% (KH 2 4). Añadir 50 l KH 2 PO 4 por ml de PDT-BzPh, formando una solución micelar nublado.
- Remojar los tubos en la solución PDT-BzPh acidificada durante 40 min a temperatura ambiente en un agitador o en el aparato.
- Enjuagar los tubos con ácido acético diluido (1: 1000) una vez.
- Exponer los tubos a la irradiación UV para una duración total de 60 min. Gire los tubos de ¼ de vuelta cada 15 min para irradiar toda la superficie.
- Remojar los tubos en una solución de 20 mg / ml de bicarbonato de potasio (KHCO3) durante 20 min a temperatura ambiente en un agitador o en el aparato.
- Enjuague los tubos con 3x agua estéril y se almacena a 4 ° C en agua estéril.
- Día 3
- Disolver 5 mg de sulfo-SMCC en 200 l de dimetilformamida (DMF) (Precaución: Realice en campana de extracción).
- Añadir 50 l de la solución de sulfo-SMCC preparado en la etapa 1 a 0,1 mg / ml de solución de poli-lisina recCD47, y se agita durante 60 min a rotemperatura om.
- Durante 60 minutos de agitación, desgasifique estériles tampón fosfato salino de Dulbecco (DPBS) y reservar.
- Purificar sulfo-SMCC reaccionó recCD47 usando una columna de desalación 7K peso molecular de corte de giro según las instrucciones del fabricante. Recoger el flujo a través de final (de alta calidad recCD47 reactivo con tiol) y diluir a un volumen necesario para recubrir el interior del tubo con DPBS.
- Enjuagar los tubos del día 2 con estéril, desgasificada DPBS 3x.
- Reaccionar la superficie modificada de los tubos con una solución de 20 mg / ml con tris (2-carboxietil) fosfina clorhidrato (TCEP) en DPBS desgasificó durante menos de 2 min. Enjuague los tubos con estéril desgasificado DPBS 4x.
- Añadir la recCD47 reaccionado-sulfo-SMCC a los tubos e incubar durante la noche a 4 ° C en un agitador o en el aparato.
2. Inmunoensayo Cuantificación de recCD47 en superficies modificadas
- Enjuague tubos modificados para ser cuantificado a partir del día 3 ingenioh DPBS 3x. Tubos Store no utilizados para la cuantificación en DPBS a 4 ° C.
- Utilice un punzón de biopsia de 4 mm para hacer muestras de tubos duplicados y colocar golpes de biopsia en pocillos de una placa de 96 pocillos.
- Preparar un control negativo que consiste en un tubo de muestra sin modificar no tratadas con el anticuerpo de detección. Preparar un anticuerpo de control que consiste en un tubo de muestra sin modificar tratado con el anticuerpo de detección. Preparar las muestras de ensayo modificados de tubos tratados con el anticuerpo de detección.
- Muestras de bloque con albúmina de suero bovino 0,4% (BSA) en DPBS durante 60 min a temperatura ambiente en un agitador.
- Después del bloqueo, BSA aspirado y enjuague con solución salina amortiguadora tris más 1% (TBST) 3x-20 Tween, 10 min cada uno en un agitador.
- Prepare una dilución de trabajo del anticuerpo en el 0,4% de BSA de acuerdo a la dilución recomendada por el fabricante para los inmunoensayos. Diluir CD47 humano Anticuerpo B6H12-FITC 1: 100 en 0,4% de BSA.
- Añadir 200 l de dilución de anticuerpo a los pocillos apropiados. Incubacontroles negativos del te con 0,4% sólo BSA. Incubar a temperatura ambiente durante 60 min en un agitador (protegerlo de la luz).
- Enjuague con TBST 3x, 10 min cada uno en un agitador. Aspirar el último aclarado TBST y añadir 200 l DPBS a pocillos de muestras de tubo.
- Recoger el flujo a través final, que es CD47 recombinante reactivo con tiol de alta calidad y diluir a un volumen necesario para recubrir el interior de los tubos con DPBS.
- Leer intensidad de la señal FITC utilizando un lector de microplacas con FITC de excitación (485 nm) y emisión (538 nm) ajustes.
- Calcular recCD47 unido a la superficie polimérica basada en valores estándar, lo que representa para auto-fluorescencia y la unión no específica de la muestra de control del anticuerpo.
Protocolo Aparato 3. Chandler Loop
Busque la Junta de Revisión Institucional (IRB) la aprobación del protocolo de extracción de sangre e informado consentimiento papeleo antes del inicio de la recolección de muestras de sangre humana. Obtener informaciónrmado el consentimiento de un donante de sangre humana.
NOTA: Un diagrama que representa el aparato se muestra en la Figura 2.
- Llene la bañera con agua destilada hasta aproximadamente media de las ruedas de diámetro están sumergidos. Agregar suficiente cloro para el baño de agua para hacer una solución de lejía al 10%. Establecer baño de agua a 37 ° C y permitir que la temperatura se equilibre.
- Reunir adaptadores de metal (que se muestran en la Figura 1B), sin modificar la tubería y la tubería modificado, y montar alrededor de las ruedas del aparato, como se muestra en la Figura 1C. Asegúrese de que la tubería se ajusta apretadamente alrededor de la rueda con el adaptador de metal en su lugar.
- Obtener 30 ml de muestra de sangre usando un protocolo aprobado por el IRB, en un vial pre-llenado con 2 ml de citrato u otro anticoagulante, y mezclar por inversión para prevenir la coagulación una vez que la muestra se ha recogido.
- Añadir aproximadamente 10 ml de sangre a cada tubo usando la válvula de metal y la jeringa, dejando un poco de aire en el tubo. Asegure la tapa de la válvula y la rOtate durante 3 horas.
- Drenar la sangre en un vaso de residuos tratados con una solución de lejía al 10% (o como lo requiere la política institucional).
- Enjuague suavemente el interior de tubos con DPBS para eliminar todos los rastros de sangre. Recoger el flujo a través en el vaso de precipitados de residuos. Deshágase de la sangre, de acuerdo con la política institucional.
- Desinfectar el aparato y cualquier contacto con la sangre superficies con una solución de lejía al 10% o de acuerdo con la política institucional.
- Procesar muestras para microscopía o microscopía electrónica de barrido fluorescente como se describe a continuación.
4. fluorescente Microscopía y Recuento celular
- Preparar un 4% de paraformaldehído (PFA) solución (Precaución: Realice en campana de extracción).
- Incubar los tubos en una solución de PFA 4% durante la noche a 4 ° C.
- Después de la incubación durante la noche, quitar 4% PFA y enjuague películas muy suavemente con DPBS.
- Corte el tubo en secciones para exponer la superficie del lumen para la tinción.
- Manchasuna sección de la tubería con unas gotas de medio de montaje con 4 ', 6-diamino-2-fenilindol (DAPI) durante 30 min a temperatura ambiente (proteger de la luz). Después de la tinción, enjuague el tubo muy suavemente con DPBS para reducir el fondo de la señal DAPI.
- Imagen utilizando un microscopio de fluorescencia equipado con un filtro DAPI y la cámara digital para contar el número de células en 9 campos seleccionados a ciegas de vista bajo un aumento de 200X.
- Celular Registros diarios por campo de visión y realizar análisis estadísticos adecuados para determinar la significación estadística de los resultados.
5. Microscopía Electrónica de Barrido
- Preparar una solución de glutaraldehído al 2% (Precaución: Realice en campana de extracción).
- Incubar los tubos en una solución de glutaraldehído al 2% durante la noche a 4 ° C.
- Después de la incubación durante la noche, lavar suavemente el tubo de 3x con DPBS.
- Prepare una solución al 1% de tetróxido de osmio (Precaución: peligro de inhalación severa! Uso en campana de extracción).
- Incubar los tubos en una solución de 1% de tetróxido de osmio durante 15 min a temperatura ambiente.
- Enjuague suavemente el tubo de 3x con DPBS.
- Preparar una serie de concentraciones de etanol (25%, 50%, 75%, 95% y 100% de etanol).
- Deshidratar el tubo por incubación en la serie de concentraciones de etanol. Incubar en 25%, 50%, 75% y etanol al 95% durante 20 min cada uno. Incubar en etanol al 100% durante 30 min.
- Punto supercrítico seque el tubo con CO 2 durante 45 minutos para eliminar toda la humedad.
- Secciones de tubos de montaje sobre un trozo espécimen con pasta de plata o grafito.
- Secciones de tubo de capa con 12,5 nm de oro-paladio.
- Examinar en el microscopio electrónico de barrido.
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Representative Results
Generación de superficies poliméricos reactivos con tiol mediante el uso de la TFD-BzPh y TCEP junto con reactivo con tiol recCD47 poli-lisina usando SMCC permite la fijación de recCD47 a las superficies poliméricas. El proceso de modificación se resume esquemáticamente en la Figura 1. La conveniencia de este proceso de modificación es que se puede aplicar a muchas proteínas diferentes y muchas superficies poliméricas diferentes, suponiendo que la proteína puede modificarse con grupos químicamente reactivos suficientes tales como lisinas y que contienen aminas que el polímero tiene hidrocarburos suficientemente disponibles.
Se ha demostrado previamente que recCD47 se puede añadir a las superficies poliméricas que utilizan este protocolo 11-13. Como se muestra en la Figura 3A, la tinción FITC significativo es visible para recCD47, usando un anticuerpo conjugado con FITC para el dominio Ig extracelular de CD47, que se localiza específicamente a la película como se muestra mediante formación de imágenes DIC(Figura 3B). Estos resultados demuestran que recCD47 se puede unir covalentemente a películas de poliuretano. Medición de las unidades de fluorescentes y comparando con una curva estándar determina la concentración de superficie con destino recCD47. Hemos demostrado que recCD47 se puede añadir a las superficies poliméricas en niveles superiores a 500 ng / cm 2,11-13. Estos resultados confirman que este protocolo modificación polímero basado en tiol se puede utilizar para añadir proteínas recombinantes modificados con poli-lisina a las superficies poliméricas.
CD47 se ha demostrado que ser un marcador de "auto", la prevención de la unión celular inflamatoria y la activación del sistema inmune 7-13. Para imitar las condiciones in vivo tanto como sea posible en un entorno ex vivo, sangre humana entera puede ser perfundido a través de tubo polimérico sin modificar y modificado en el aparato de Chandler Loop (se muestra en la Figura 2). La unión celular a la tubería se puede evaluar a través de DAPI (
Figura 1. esquemática de modificación de la superficie. A) superficies de polímero tiolado se generaron mediante la incubación de la superficie polimérica con el reticulante fotoactivable PDT-BzPh y posterior reducción con TCEP. B) </ Strong> SMCC se utilizó para producir reactivo con tiol recCD47, que después se hace reaccionar con la superficie sintética tiolado para producir recCD47 superficies funcionalizadas.
Figura 2 Diagrama de Aparato Chandler Loop. A) El aparato consiste en un baño de agua caliente a 37 ° C, ruedas giratorias fijas en un poste de metal unido a un motor rotativo. Esta configuración permite que el motor giratorio para girar las ruedas, sumergiendo de este modo partes de la tubería en el baño de agua a 37 ° C y la perfusión de la sangre a través del tubo. B) adaptadores de metal se utilizan para conectar los extremos de los tubos que forman un bucle alrededor de una de las ruedas giratorias. La sangre se añadió a los tubos a través del puerto de la válvula de metal y se tapó con el tapón de la válvula. C) Una vez montado, la válvula de la tubería de metal y debe encajar cómodamente around la rueda giratoria, como se muestra aquí con un tubo vacío.
Figura 3. Cuantificación de recCD47 en películas de poliuretano. Los anticuerpos dirigidos contra el dominio Ig externa de CD47 se usaron para cuantificar la cantidad de recCD47 unido a películas de poliuretano. Imágenes de microscopio de fluorescencia tomadas con una lupa 200X con juegos de filtros adecuados que muestran la detección de FITC recCD47 anexa al poliuretano (A). Imágenes (B) DIC muestran que la señal FITC es específico de la película de poliuretano.
Figura 4. adhesión celular al poliuretano no modificado y modificado-recCD47. La sangre humana total se recogió y se perfundió sobre modificado o no modificado-recCD47Películas PU durante 3 horas. Tras la perfusión de 3 hr, las películas se enjuagaron con DPBS y las células adheridas se fijaron con PFA al 4% durante la noche a 4 ° C y DAPI se tiñeron durante 30 min a temperatura ambiente. Células teñidas con DAPI se contaron usando un microscopio de fluorescencia bajo una ampliación de 200X y conjuntos de filtros adecuados. (A) 9 campos seleccionados al azar de vista fueron contados para cada modificación. (B) Los datos son representativos de 9 campos de vista y se expresan como media ± error estándar (p = 0,004).
Figura 5. análisis SEM de recCD47 modificado y superficies de control siguiente análisis ex vivo. La sangre humana total se recogió y se perfundió sobre la tubería de PVC modificado o no modificado-recCD47 durante 3 horas. Imágenes representativas muestran la unión celular significativa a unmodified superficies mientras que las superficies modificadas recCD47 muestran sólo una célula adjunta ocasional.
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Discussion
La química de fotoactivación (que se resumen en la Figura 1) permite la modificación de prácticamente cualquier superficie de polímero que tiene hidrocarburos suficientes para facilitar PDT-BzPh unión y la posterior irradiación UV para la foto-activar el PDT-BzPh. Funcionalización de la superficie polimérica con grupos tiol reactivos permite la posterior unión de una serie de moléculas de interés comprobables. En nuestros estudios particulares elegimos recombinante CD47 11-13. La química de conjugación particular que hemos utilizado involucrados la reacción de los grupos amino de la proteína con el agente de entrecruzamiento bifuncional SMCC 11-13. Esto proporcionó recCD47-tiol reactivo para la reacción posterior con la superficie polimérica tiolado. El producto final fue una vinculación mono-sulfuro de la unión covalente de la recCD47 al polímero. Para ayudar a asegurar que los grupos amino de los aminoácidos de CD47 no estaban siendo utilizados para la reacción, y mitigando así la eficaciadel CD47 inmovilizado, modificamos aún más la recCD47 insertando una etiqueta poli-lisina en la proteína C-terminal. Sería factible que una estrategia molecular similar se puede aplicar con otras proteínas. Así, la química de conjugación presenta aquí y en otras partes 11-13 ofrece una importante oportunidad para evaluar la capacidad de las moléculas potencialmente terapéuticas para conferir biocompatibilidad sobre superficies sintéticas.
Una desventaja de este protocolo es que la exposición de ciertos tipos de polímeros, como el poliuretano, a períodos prolongados de irradiación UV puede causar decoloración. Esto puede evitarse mediante la colocación del polímero en platos de poliestireno (de uso común en el cultivo de tejidos) para evitar la decoloración del polímero sin impedir la fotoactivación de la PDT-BzPh. La longitud de onda de la luz UV se utiliza en este protocolo es 302 nm; desviación de esta longitud de onda puede resultar ineficaz en la foto-activación de PDT-BzPh. Si se utiliza una longitud de onda diferente deLuz UV, la optimización del tiempo de exposición UV es necesaria para asegurar significativa la foto-activación.
Siguiendo este protocolo permite la fijación de recCD47 a superficies poliméricas, para el propósito de la evasión inmune y transmitir el estado de "auto" a la superficie polimérica para evitar la reacción de cuerpo extraño. Cuantificación de la recCD47 adjunta a la superficie se completa con un anticuerpo marcado con FITC para el dominio Ig de CD47 usando un inmunoensayo y microscopía fluorescente (Figura 3). Esta metodología podría ser adaptado a otras proteínas adjuntas a las superficies poliméricas asumiendo la disponibilidad de anticuerpos. La falta de obtener apéndice significativa de recCD47 (u otra proteína) podría ser debido a una variedad de factores que incluyen, la falta de fotoactivar PDT-BzPh, hidrocarburos libres suficientes sobre la superficie del polímero, la hidrofobicidad de la superficie del polímero, o el polímero podría ser demasiado grueso o opaco para permitir que la luz pase a través de quantific adecuadaación. Todas estas variables pueden ser experimentalmente probado y optimizado para un polímero particular.
El Aparato Chandler Loop es una herramienta única para el análisis ex vivo de toda exposición a la sangre humana a las superficies poliméricas. Este sistema se asemeja mucho a la perfusión de sangre a través de conductos de sangre clínicos utilizados en diversos procedimientos médicos, lo que permite el análisis de muchos puntos finales fisiológicos asociados con las superficies de contacto con la sangre. Como puntos finales fisiológicos para el apéndice de recCD47 a las superficies poliméricas, se utilizaron los recuentos de células mediante la tinción de DAPI (Figura 4) y microscopía electrónica de barrido (Figura 5). Otros puntos finales también se pueden utilizar, dependiendo de la disponibilidad del equipo, por ejemplo, el recuento de células antes y después de la perfusión de sangre a través de conductos de sangre poliméricos también se podría utilizar. Superficies Independientemente, modificado-recCD47 mostraron significativamente menos células adheridas en comparación con las superficies de control no modificados. Estos data sugieren que recCD47 biocompatibilidad transmite a las superficies poliméricas y potencialmente podría ser utilizado para prevenir la FBR en procedimientos clínicos que utilizan conductos sanguíneos poliméricos.
Aunque este es un modelo ampliamente utilizado en vitro para estudios de perfusión sanguínea, es limitada en algunos aspectos. Los dos principales desventajas de este método surgen de la necesidad de incluir aire en el tubo con la muestra de sangre. La interacción de sangre frecuentes con el aire puede causar leucocitos y agregación de plaquetas y la desnaturalización de las proteínas 16-18, que puede interferir con ciertos criterios de valoración. En segundo lugar, el aire se mantiene en el punto más alto del circuito, lo que limita la tasa de circulación de la sangre 19. A pesar de las aparentes limitaciones de este método, induce menos daño arterial que los métodos que compiten 19 y sirve como una forma de detección de la biocompatibilidad de biomoléculas potenciales en conductos sanguíneos poliméricos. Una vez biomoléculas candidatos son identificados a travéseste método, un análisis más detallado se puede conseguir a través de modelos animales in vivo. En última instancia, la biocompatibilidad de los polímeros modificados deben ser confirmadas mediante un adecuado sistema de modelo in vivo.
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Disclosures
Las investigaciones realizadas en esta publicación fue apoyada por el Instituto Nacional de Imágenes Biomédicas y Bioingeniería, con el número de adjudicación R21 EB015612 (SSJ), y el Instituto Nacional del Corazón, los Pulmones y la Sangre, con el número de adjudicación T32 HL007915 (JBS y RJL), de la Nacional Instituto de Salud.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 16% Paraformaldehyde (PFA) | Thermo Scientific | 58906 | Caution! Use in fume hood |
| 25% Glutaraldehyde | VWR | AAA17876-AP | Caution! Use in fume hood |
| 2-pyridyldithio,benzophenone (PDT-BzPH) | Synthesized in lab | N/A | |
| Bovine Serum Albumin (BSA) | Sigma | A3059-100G | |
| Citrate | Sigma | S5770-50ML | |
| Digital Camera | Leica | DC500 | Out of production |
| Dimethylformamide (DMF) | Sigma | 270547-100ML | Caution! Use in fume hood |
| Dulbecco’s Phosphate Buffered Saline (DPBS) | Gibco/Life Technologies | 14190-136 | |
| Fluorescent Microscope | Nikon | TE300 | |
| Glacial Acetic Acid | Fisher Scientific | A38-212 | Caution! Use in fume hood |
| Human CD47 (B6H12) – FITC Antibody | Santa Cruz Biotechnology | SC-12730 | |
| Osmium Tetroxide | Acros Organics | 197450050 | Caution! Use in fume hood |
| Potassium Bicarbonate (KHCO3) | Sigma | 237205-100G | |
| Potassium Phosphate Monobasic (KH2PO4) | Sigma | P5655-100G | |
| PVC Tubing (Cardiovascular Procedure Kit) | Terumo Cardiovascular Systems | 60050 | Most clinical-grade tubing will work |
| Scanning Electron Microscope | JEOL | JSM-T330A | |
| Sodium Chloride (NaCl) | Fisher Scientific | BP358-212 | |
| Microplate Reader | Molecular Devices | Spectramax Gemini EM | |
| Sulfo-SMCC | Sigma | M6035-10MG | Moisture Sensitive! |
| tris (2-carboxyethyl) phosphine (TCEP-HCl) | Thermo Scientific | 20491 | |
| Tween-20 | Bio-Rad | 170-6531 | |
| Vectashield with DAPI | Fisher Scientific | H-1200 | Light sensitive! |
| Zeba Spin Desalt Columns – 7 K MWCO | Thermo Scientific | 89891 |
References
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