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Neuroscience

doi: 10.3791/51903 Published: October 21, 2014

Abstract

多成核的小神经胶质细胞的确切功能,称为球状的细胞,即是在球状细胞脑白质营养不良(GLD)的中枢神经系统中唯一地丰富目前还不清楚。在认识这个差距已经阻碍了缺乏适当体外研究模型。在这里,我们描述了一个主要的鼠神经胶质培养体系中,治疗psychosine结果在小神经胶质细胞的多核类似GLD中发现的特征球状细胞。使用这个新系统,我们定义的条件和分析模式弧面细胞的研究。可能利用此模型系统在我们以前的研究,其中确定了基质金属蛋白酶(MMP)的潜在作用进行了验证-3 GLD。这种新颖的体外系统可以是其中以研究这些独特的细胞的形成和功能,而且还潜在治疗操纵,一个有用的模型。

Introduction

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球细胞脑白质营养不良(GLD),也被称为克拉伯病,是一种致命的脱髓鞘疾病的功能突变的galatocerebrosidase(GALC)1基因造成的损失。政府物流服务署的最普遍的形式是由发生在儿童早期代表,往往前五年2,3岁特点是运动和认知能力下降,导致过早死亡的一个积极的临床过程中,婴儿的变体。基因检测是用来验证GLD 4的诊断。政府物流服务署的神经病理学发现广泛脱髓鞘,神经萎缩,星形胶质细胞增生和肿胀多有核小胶质细胞的存在被称为球状细胞5-7。弧面细胞的鉴定,常含在细胞质筒状包裹体,一直是政府物流服务署的定义特征,在过去97年虽然这些显眼细胞的特异功能一直难以实现。

非MYEL的参与GLD中的发病inating神经胶质细胞(小胶质细胞和星形胶质细胞),一直被认为是本病8到深刻的脱髓鞘二级响应。有趣的是,这种疾病的最初描述,在1916年5由克努兹克拉贝,包含已命名的脂质碎片多核巨噬细胞的报道形成“球状细胞'并且是本病的决定性特征。

球状​​细胞病理学(GLD)的共同特征,虽然他们在政府物流服务署的角色长期以来被忽视了。有趣的是,这些细胞中,GLD的CNS组织中的最早的特性的变化。这种知识的缺乏可能是由于该多核巨噬细胞,称为巨核细胞中的其他疾病的形成中,通常认为是病理学的结果,而不是一个初始致病驱动力9的假设。因此,很少有研究调查了WHI机制CH弧面细胞是从吞噬细胞形成,特别是在政府物流服务署的中枢神经系统。本报告中所述的程序集中于球细胞的形成在CNS中的重要性和我们先前示范体外小胶质细胞以及这些细胞的那psychosine诱导的多核化表现出较高水平的细胞吞噬活性的。根据这些意见,球状细胞鸟类观察者的大脑经常含有PAS阳性的碎片,暗示高水平的吞噬活性。球状细胞也发现免疫阳性铁蛋白(一小胶质细胞标记物)10,KP-1 / CD68(单核细胞标记物),有的还积极为波形蛋白(一种中间丝蛋白,星形胶质细胞的标志物和激活的小胶质细胞),11, HLA-DRA(一个MHCII表面受体),和TNF-α7IBA-112(用于识别的小胶质细胞钙结合蛋白)。基于标记这个集合,球状细胞从培养小胶质细胞起源独特的表型。

尽管他们的独特性,具体功能和选区于GLD发病的贡献已经在很大程度上被忽视。球状​​细胞已被认为是慢性脱髓鞘的次要结果。然而,过去的研究探讨球状细胞的时序关联到政府物流服务署的脑白质病变​​已经确定球状细胞在胚胎后期存在于出生后早期阶段;时间少突胶质细胞凋亡和公开脱髓鞘13前。因此,在GLD的神经病理学发展的时间顺序显示,球状细胞形成预先脱髓鞘在此疾病14。这导致我们在GLD早期形成球状的细胞可能代表一个决定性致病事件,而不是次要的,反应要少突胶质细胞受损15回应假设。此外,在政府物流服务署小胶质细胞活性的失调也被认为是事实上的R限流的hematopeotic干细胞疗法的远期疗效治疗本病16。因此,调查的细胞功能和小胶质细胞的调节,球状的细胞,以应对psychosine预计将提供在政府物流服务署的发病机制的新见解。

直到最近,缺乏在其中,研究球状细胞形成一个合适的模型已经限定的确切功能及这些细胞GLD的病理作用的了解。在最近的研究中,确定该弧面状细胞可被形成在直接响应psychosine,积聚在GLD病原脂质毒素。我们发现,小胶质细胞,但不巨噬细胞,被激活并转化成球状的细胞在初级胶质细胞培养响应于psychosine 15。该转化成球状的细胞被发现的胞外蛋白酶,基质金属蛋白酶(MMP)-3 15介导。最近,我们扩展了这些调查结果,并决定在此体外模型系统,开发出psychosine激活的小胶质细胞和球状细胞强效有毒的少突胶质细胞和少突胶质祖细胞。因此,当在GLD,psychosine和地层之前脱髓鞘将支持在该疾病的小胶质细胞的新兴初级和可能的致病作用弧面细胞的早期积累的上下文中考虑。

我们建议的球细胞形成的研究将揭示政府物流服务署的发病机制,这将有助于我们对这个疾病的认识新的信息。此外,政府物流服务署对这种新的细胞模型可提供一种新的形式从中新的治疗方法,以解决这种疾病的病理变化可以进行测试。因此,在本报告中,我们提供了体外发育非髓鞘神经胶质细胞的原代培养psychosine诱发球状细胞的详细协议。

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Protocol

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所有涉及动物的程序是按照人文关怀和使用实验动物的政策执行提出了实验动物福利办公室(NIH),只有从大学的机构动物照顾及使用委员会(IACUC)批准康涅狄格卫生服务中心。

1,制备混合胶质细胞培养

  1. 消毒在使用前所有的仪器。加入3毫升含无阳离子的冰冷无菌Hank氏平衡盐溶液(HBSS)(Mg 2 +的钙离子 ),以保持在冰上,以保持冷3无菌60毫米培养皿。
  2. 隔离从出生后P0-P2小鼠幼仔的皮质,如前所述17,18。
    注意:皮层下结构,如海马,不包括在这些培养物中。
  3. 小心地取出脑膜,然后分离出皮层转移到新鲜的HBSS和游离组织酶,使用NE根据制造商的协议尤勒尔组织解剖工具包。
  4. 板中的细胞在无菌的T-175烧瓶中,并在媒体孵育过夜[Dulbecco改良的Eagle培养基(DMEM)中,用10%胎牛血清(FBS)的含有1x青霉素/链霉素。
  5. 第二天用新鲜培养基更换所有的媒体。继续培育文化,和普通媒体的变化,约3周,直到细胞单层成立。
    注意:此单层将被包括星形胶质细胞和小胶质细胞与约10:1的比例19。

2球细胞诱导混合胶质细胞培养

  1. 准备ECM包被的盖玻片。
    1. 浸泡圆形盖玻片用在无菌培养皿中30分钟,无菌1N的盐酸(HCl)。用无菌水冲洗3次盖玻片,然后浸泡在95%EtOH中至少20分钟。然后让空气干燥。
    2. 稀释外MATR的地方滴IX(ECM)的蛋白质涂层材料上的封口膜一张(层粘连蛋白10微克/ EG 150-250微升/滴毫升溶解在无菌磷酸盐缓冲液[PBS])。分配液滴,使盖玻片不会碰的时候放在这些液滴。每个干盖玻片轻轻将上使用镊子液滴。
    3. 留在液滴在盖玻片约。 4-6小时的培养罩的窗扇内关闭。
    4. 将ECM包被的盖玻片(ECM涂覆的一面朝上),在每个24孔板的孔中。每次用无菌PBS 3X以及洗净,直到需要保持在4℃。
  2. 准备胶质细胞镀上盖玻片。
    1. 从胶质细胞培养物吸媒体,轻轻地用10ml无菌PBS洗胶质细胞单层3倍。接着,加入8-10毫升胰蛋白酶-EDTA溶液与T-175,并孵育5-10分钟,在37℃。
    2. 当大多数的单层已经分离,加入20 ml完全传媒到该烧瓶中,以停止胰蛋白酶消化。收集含脱落细胞的培养基到50毫升锥形管中并旋转10分钟,在300 XG在室温下。
    3. 吸出上清液,而不会干扰沉淀,然后轻轻吹打使用P1000吸管的溶液重悬所述细胞于2ml的新鲜完全培养基。
    4. 确定使用血球细胞的数量,然后重新悬浮的细胞在完全培养基中在所希望的密度( 例如,10 5个细胞/ ml)。板中的细胞上的细胞外基质包被的盖玻片( 例如,500微升到24孔板的每孔)。添加额外的新鲜完全培养基中,以每孔3-5天的潜伏期,在37℃,或直至细胞生长至所需的视觉汇合。
  3. 治疗Psychosine。
    1. 每瓶psychosine A股浓度(108.3毫米)的二甲基亚砜(DMSO)。稀释此股票在100%乙醇作工作股票可以在n为加入到24孔板各孔中以达到10μM的最终浓度。
    2. 在加入psychosine的时间,轻轻摇动培养板以混合psychosine到培养基中。通过加入隔日10μM的等效一周补充psychosine。
  4. 经过7天psychosine处理,收集媒体和吸管500微升冷的4%多聚甲醛(PFA)到每口井的。在室温下孵育20分钟,固定细胞。然后,洗涤​​各孔3次,用PBS,然后保持板在4℃下直到处理用于免疫细胞化学(见下文)。
    注:细胞培养基可以被收集为酶促或酶联免疫吸附测定法在这一点上,如果需要的。

3,免疫细胞化学(ICC)的可视化弧面细胞

  1. 更换PBS以封闭缓冲液[PBS + 0.3%Tween-20的±5%正常山羊血清(NGS),并孵育细胞1小时,于室温下。
  2. 在cubate固定细胞在初级抗血清伊巴-1 [(1:1,000)稀释在PBS +0.3%Tween-20的±2%NGS]为至少1小时,在室温下,然后用PBS 3×5分钟,洗每个孔/洗。
  3. 添加适当的次级荧光缀合的抗体来识别第一抗体标记和反染色用4',6 - 二脒-2 - 苯基吲哚(DAPI,1:1000),以确定细胞核。孵育在二次抗体溶液1小时,在室温下,并用PBS中3×5分钟。
  4. 挂载每个玻璃罩,以显微镜使用的安装介质的幻灯片。查看幻灯片上的荧光显微镜的视觉和定量分析。

4,分析和弧面细胞的原代培养的表征

  1. 使用以下三种形态的标准来确定文化球细胞:
    1. 确定使用荧光显微镜球状细胞免疫阳性标记的小胶质细胞的标记,IBA-1 +。
    2. 确定弧面细胞作为polynucleated( 含有两种或两种以上的DAPI阳性细胞核)。
    3. 由一个圆形的形态,从静止小胶质细胞的高度支化的外观独特的识别球状细胞。
      注:细胞也可通过流式细胞术从这些培养物中收集到的细胞表面标记物的分析和定量分析。
  2. 测量小胶质细胞和弧面细胞的吞噬活性
    1. 评估psychosine处理的小胶质细胞的吞噬活性,按照制造商的说明添加FITC标记的胶乳珠的孔中。固定之前用PFA添加荧光标记的乳胶珠48小时。修复珠处理(如上文第2.4节)细胞和流程免疫细胞(如第3节所述)。
    2. 选择荧光基团标记的第二抗体,使它们不重叠的荧​​光团标记的珠粒的荧光发射光谱。
    3. Analyzë伊巴-1 +小胶质细胞通过识别那些细胞的吞噬型材共定位与荧光标记的珠子。
      注:Psychosine将激活小胶质细胞。吞噬的小珠将单核和多核伊巴-1 +细胞在此培养环境内识别。

5,感应距离纯化小胶质文化弧面细胞

注:另一种方法来破译星形胶质细胞和小胶质细胞之间的细胞间信号是体外球细胞模型的另一个优势。初级小胶质细胞为replating或共同培养的纯化可以通过降低粘附性的培养来实现,如下面的步骤(参见第5.2节)中描述。

  1. 收集从集流混合胶质细胞培养介质到50ml锥形管中,并于37℃培养箱中保持它。
  2. 小胶质细胞的分离,从初级混合胶质细胞培养。
    1. 从汇合混合胶质细胞培养T175烧瓶中除去培养基后,加入温水摇动媒体[组成的完全培养基+的25mM 4-(2 - 羟乙基)-1 - 哌嗪乙磺酸(HEPES)+的25mM碳酸氢钠(Sigma公司)]。摇动烧瓶3-4小时,在轨道摇床上以100rpm(37℃)。收集这些摇瓶媒体到50ml锥形管。
      注:该媒体将包括从烧瓶少贴小胶质细胞。
    2. 旋转介质,在300×g离心10分钟,在室温下进行。吸出上清液,然后重悬浮细胞于2ml的星形胶质细胞条件培养基(在步骤5.1收集)。
    3. 建立使用血细胞计数器,然后板的小神经胶质细胞上衬底涂覆的盖玻片上获得的细胞数量(参见第2.1节),用于免疫细胞化学,或镀到超低粘附孔板弧面细胞共培养与其他细胞类型的将来采集,如少突胶质细胞(如递减在下面的部分进项税)。
      注意:一旦镀金的小胶质细胞可以与如上所述(见2.3节)psychosine(10微米)来治疗。
  3. 共培养基层少突胶质细胞的细胞毒性分析。
    注:收集从低粘附片用于随后的共培养到少突胶质细胞的原代培养物,或者少突胶质细胞祖细胞psychosine处理的小胶质细胞,可用于检查这些弧面状细胞在体外的潜在细胞毒性作用。
    1. 开发利用已建立的方法18,20初级少突胶质细胞的培养。收集psychosine处理的小胶质细胞,轻轻地吸取到从孔的底部分离的松散的贴壁细胞。收集细胞,离心分离机,在300×g离心10分钟,然后小心地重新悬浮在少突胶质细胞分化培养基[的Neurobasal介质组成,L-谷氨酰胺(1倍),B-27补充剂(1×),和三碘甲状腺氨酸(T3中,10纳克/毫升)]。
    2. 计数使用血球细胞的数量,然后播种的小胶质细胞上的少突胶质细胞培养在1×10 5个细胞/ ml,从而以近似1:2的小胶质细胞/少突胶质细胞的比例。孵育作为共培养3天。
    3. 固定细胞的免疫细胞化学(见2.4节)。收集的细胞培养基用于ELISA或根据需要进行化学分析。

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Representative Results

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这个协议,因为写的,预计需时约36天,从开始到结束(参见图1:实验工作流程计划)来完成。一直以来,我们经历了'弧面状“细胞的这种原代培养体系的发展是既可靠和可重复性:多核细胞的响应psychosine的形成始终7天的治疗观察。

使用IBA-1在用核反染色结合将使识别的大小胶质细胞的免疫细胞化学染色,圆形多核细胞( 图1b)。在某些情况下在这些弧面状细胞的核含量会出现明显的细胞核。然而,在许多情况下,核的大小的总放大反映这些细胞( 图1b)的多核状态。弧面状细胞的数目可以从视场变化,以视场,但值得注意的是,球状细胞在体外形成的比例表示<总小胶质细胞群体的5-10%。同样重要的是要指出,psychosine治疗也唤起小胶质细胞的一般化激活(在吞噬活性可测量增加)发生响应于psychosine治疗单核小胶质细胞和在这些培养物中的多核球状细胞(GCS)之间。如示于图1c中,伊巴-1 +胶质phagocytically活性配置文件可以很容易地鉴别在与少突胶质细胞祖细胞(OPCs的)放置在共培养。

该细胞培养系统是适合于实验操作,以评估球状细胞生物学的手段。例如,我们最近证明了胞外蛋白酶的新型作用,基质金属蛋白酶-3(MMP-3 /基质溶素-1)作为psychosine诱导GC形成的重要介体使用本尽头TURE法15。

图1
图1:在球细胞形成的原代培养的体外模型实验工作流程(一)流程图描述的主要步骤和干预时间(天数)为球状细胞培养的发展。每个步骤都标有从协议及其关联的文本部分。该工作流提供了从混合两者的逻辑进程(星形胶质细胞和小胶质细胞培养,第1节)和小胶质细胞的纯化(第5)(b)在 psychosine连续7天多核胶质细胞的代表immuncytochemical染色的替代开始培养(10。 μM)处理,确定由Iba1(绿色)和DAPI(蓝色)(C)根据推定的吞噬小胶质细胞的实施例(绿色)以下在共培养OLIG2 +(红色)的OPC psychosine治疗。比例尺(面板B)= 90微米的'B'和= 150微米为“C”。 请点击这里查看图1B的放大版本,此处查看图1C的放大版本。

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Discussion

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这里所描述的协议提供了一种新的模式系统,其中研究开发和激活小胶质细胞和球状细胞的功能特性。通过QQ,MSN 前期工作。使用HEK293细胞系提供本协议的发展为球细胞形成21学习的模板。同样重要的是要指出,来自在该模型中的球状细胞来自原弧面细胞识别在GLD不同。举例来说,我们经常观察到小神经胶质细胞在我们的鼠文化quadranucleation,而球状细胞(GLD)经常被发现含有超过10核。其次,形成在体外系统中的球状细胞还小的直径而相对于在体内观察到的。有可能是几个原因,这些表型差异可包括所使用的培养系统的相对简单性。例如,不存在神经元或期间球细胞形成使用这个主胶质培养过程中的诱导期目前少突胶质细胞。另外,在七天协议的定时产生球状细胞显著密度;然而,较长的处理时间,可以进一步提高由该协议与GLD中观察到的球状的细胞的天然特性形成鼠弧面细胞的相似性。

该模型的一个重要特征是,它使用主混合胶质细胞培养物,它包括两个星形胶质细胞和小胶质细胞15,19。这是本球细胞模型及其在评估星形胶质细胞和小胶质细胞之间的贡献和互动工具的一个重要优势。这两个非髓鞘形成的细胞类型中GLD被激活,尽管其在这种疾病中的作用是,迄今为止,不良特征。重要的是,我们已经预先确定,在GLD的星形胶质细胞表达更高水平的MMP-3的表达,并且这大概是星形细胞DERIV编着的因素是对小胶质细胞在响应于psychosine转变是至关重要的。的球状细胞形成本体外模型的未来的应用可以采用星形胶质细胞的嵌合体培养物和不同的遗传背景,这可能被用来增进我们对psychosine的小胶质细胞的致病作用的细胞特异性的贡献的认识的小胶质细胞。

综上所述,该协议提供了一个学习GLD的发病机制的新途径。该球状细胞的作用一直神秘莫测,并在政府物流服务署的保护性或有害作用的假说已被提出。早期识别球状细胞GLD的自然史,将进一步支持我们的看法,在这个时候,在激活小胶质细胞(GLD)是一个主要致病性反应和髓鞘病变中本病的一个可能的调停人。这种体外模型系统的适应有望进一步蜂窝E在我们的理解tiology政府物流服务署。

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Materials

Name Company Catalog Number Comments
Hank’s balanced salt solution (HBSS) containing no cations (Mg2+ and Ca2+). Life technologies 14175-095
Neural Tissue Dissociation Kit Miltenyi 130-092-628
40 μm cell-strainer Fisherbrand 22363547
Hank’s balanced salt solution (HBSS) containing cations (Mg2+ and Ca2+). Gibco 14025-092
Dulbecco's modified eagle medium (DMEM) Gibco 11995-065
fetal bovine serum (FBS) Atlanta Biologicals S11150
Penicilin/Streptomycin Life technologies 15070-063
Laminin Sigma L2020
Trypsin-EDTA solution Life technologies 25299-056
Psychosine Sigma P9256
Dimethyl sulfoxide (DMSO) Sigma D2650
Paraformaldehyde (PFA) Electron Microscopy Science 19208
Normal Goat Serum (NGS) Invitrogen PCN5000
Iba-1 WAKO 019-19741
Alexa Fluor conjugated antisera Life Technologies Various
Mounting Media Southern Biotech OB100-01
Phagocytic Assay Kit Cayman Chemicals 500290
HEPES Sigma BP310-500

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References

  1. Rafi, M. A., Luzi, P., Chen, Y. Q., Wenger, D. A. A large deletion together with a point mutation in the GALC gene is a common mutant allele in patients with infantile Krabbe disease. Hum Mol Genet. 4, 1285-1289 (1995).
  2. Duffner, P. K., et al. The long-term outcomes of presymptomatic infants transplanted for Krabbe disease: report of the workshop held on July 11 and 12. Genet Med. 11, Holiday Valley, New York. 450-454 (2008).
  3. Duffner, P. K., Jalal, K., Carter, R. L. The Hunter's Hope Krabbe family database. Pediatr Neurol. 40, 13-18 (2009).
  4. Duffner, P. K., et al. Newborn screening for Krabbe disease: the New York State model. Pediatr Neurol. 40, 245-252 (2009).
  5. Krabbe, K. A new familial, infantile form of brain sclerosis. Brain. 39, 74-114 (1916).
  6. Percy, A. K., Odrezin, G. T., Knowles, P. D., Rouah, E., Armstrong, D. D. Globoid cell leukodystrophy: comparison of neuropathology with magnetic resonance imaging. Acta Neuropathol. 88, 26-32 (1994).
  7. Itoh, M., et al. Immunohistological study of globoid cell leukodystrophy. Brain Dev. 24, 284-290 (2002).
  8. Reddy, A. S., Patel, J. R., Vogler, C., Klein, R. S., Sands, M. S. Central nervous system pathology progresses independently of KC and CXCR2 in globoid-cell leukodystrophy. PLoS One. 8, (2013).
  9. McNally, A. K., Anderson, J. M. Macrophage fusion and multinucleated giant cells of inflammation. Adv Exp Med Biol. 713, 97-111 (2011).
  10. Kaneko, Y., Kitamoto, T., Tateishi, J., Yamaguchi, K. Ferritin immunohistochemistry as a marker for microglia. Acta Neuropathol. 79, 129-136 (1989).
  11. Graeber, M. B., Streit, W. J., Kreutzberg, G. W. The microglial cytoskeleton: vimentin is localized within activated cells in situ. J Neurocytol. 17, 573-580 (1988).
  12. Kondo, Y., Adams, J. M., Vanier, M. T., Duncan, I. D. Macrophages counteract demyelination in a mouse model of globoid cell leukodystrophy. J Neurosci. 31, 3610-3624 (2011).
  13. Pollanen, M. S., Brody, B. A. Fetal globoid cell leukodystrophy. Arch Pathol Lab Med. 114, 213-216 (1990).
  14. Martin, J. J., et al. Fetal Krabbe leukodystrophy. A morphologic study of two cases. Acta Neuropathol. 53, 87-91 (1981).
  15. Ijichi, K., et al. MMP-3 mediates psychosine-induced globoid cell formation: Implications for leukodystrophy pathology. Glia. (2013).
  16. Pellegatta, S., et al. The therapeutic potential of neural stem/progenitor cells in murine globoid cell leukodystrophy is conditioned by macrophage/microglia activation. Neurobiol Dis. 21, 314-323 (2006).
  17. Crocker, S. J., Milner, R., Pham-Mitchell, N., Campbell, I. L. Cell and agonist-specific regulation of genes for matrix metalloproteinases and their tissue inhibitors by primary glial cells. Journal of Neurochemistry. 98, 812-823 (2006).
  18. Schildge, S., Bohrer, C., Beck, K., Schachtrup, C. Isolation and culture of mouse cortical astrocytes. J Vis Exp. (2013).
  19. Crocker, S. J., Frausto, R. F., Whitton, J. L., Milner, R. A novel method to establish microglia-free astrocyte cultures: comparison of matrix metalloproteinase expression profiles in pure cultures of astrocytes and microglia. Glia. 56, 1187-1198 (2008).
  20. Moore, C. S., et al. Astrocytic Tissue Inhibitor of Metalloproteinase-1 (TIMP-1) Promotes Oligodendrocyte Differentiation and Enhances CNS Myelination. J Neurosci. 31, 6247-6254 (2011).
  21. Im, D. S., Heise, C. E., Nguyen, T., O'Dowd, B. F., Lynch, K. R. Identification of a molecular target of psychosine and its role in globoid cell formation. J Cell Biol. 153, 429-434 (2001).
一<em&gt;在体外</em&gt;模型细胞病理生理学的球细胞脑​​白质营养不良的研究
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Claycomb, K. I., Johnson, K. M., Bongarzone, E. R., Crocker, S. J. An In Vitro Model for the Study of Cellular Pathophysiology in Globoid Cell Leukodystrophy. J. Vis. Exp. (92), e51903, doi:10.3791/51903 (2014).More

Claycomb, K. I., Johnson, K. M., Bongarzone, E. R., Crocker, S. J. An In Vitro Model for the Study of Cellular Pathophysiology in Globoid Cell Leukodystrophy. J. Vis. Exp. (92), e51903, doi:10.3791/51903 (2014).

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