Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Medicine

2非生物の動物モデルを組み合わせた顕微トレーニング方法:ステップバイステップ

Published: May 9, 2015 doi: 10.3791/52625

Protocol

1.準備:

  1. 45Xズームに変数3,5 xは、卓上ステレオ顕微鏡を取得し、200ミリメートル作動距離、55〜75ミリメートル変数間瞳孔距離とアクセサリは、リングライトを導きました。任意の同様の顕微鏡は、それが小さなテーブルの上に設定することができ、適切であると非常に高価ではありません。
  2. 収集し、2顕微ピックアップ、1解剖はさみ、一針ドライバで顕微楽器のセットを用意。これは必要最低限​​で、これらは、実際の機器であることを考慮しなければならず、ハイエンド品質の機器が必要とされません。
  3. すべての実践のための9/0モノフィラメントマイクロ縫合糸を使用してください。地元のスーパーで市販されている鶏の太ももや翼と食品着色剤を購入します。
  4. 20gの血管カテーテルはニワトリ大腿動脈に開通性試験のために使用されます。上腕動脈のために、より薄い27 Gカテーテルが必要とされています。これらは地元の薬局で、インターネット上で取得することができますか設定の楽器で。食品着色剤を注入するために、市販の注射器を購入。

2.肉眼解剖技術:

  1. 大腿血管へのアプローチは簡単です。鶏もも肉の場合、大腿骨軸にちょうど内側鈍的切開法を行い、骨から大腿筋を分離し、大腿動脈、静脈や神経を露出。神経はさらに神経修復の実践の異なるタイプのための2つの別々の繊維束に切断することができます。
  2. 手羽先に鶏の上腕動脈にアクセスするためには、肩から上翼の先端に、はさみで縦方向に皮膚を切開。上腕二頭筋と上腕三頭の間を走る動脈を観察します。

3.推奨トレーニング計画:

  1. 大腿動脈とトレーニング。
    注:トレーニング計画の最初のステップは、鶏大腿動脈に練習することです。

  1. 顕微鏡下でピースを配置し、顕微解剖を開始します。下にある組織から大腿動脈を解放。と水平方向に分割します。 adventicectomyを実行します。動脈内腔を覆う任意のadventiciaをトリミングするマイクロピックアップやマイクロはさみを使用してください。定期的な水道水で内腔を洗い流します。開始時間を書​​き留めます
  2. 吻合をエンドツーエンドを実行します。
    1. オペレータとは反対側の動脈の背壁に開始します。最初のステッチを配置。垂直方向に作業している場合下側に、水平に作業している場合、左側に開始します。内腔に向かって、その後、内腔からの動脈の外側に動脈の外から針を渡します。
    2. ステッチを結ぶ、最初の二重結び目を実行し、2単一が交互に方向をスローします。上記の技術では、全体のバック壁を完了します。
    3. あなたが水平に作業または上側されている場合は、woのであれば、右サイドの起動垂直rking、内腔にした後、内腔から外に外部からシングルステッチを配置します。上記のように結び目を作ります。 3.1.2.2に記載された手順を繰り返す前壁を完了します。
    4. これはあなたの進行を制御することができるようにあなたは、時間の記録を保持することができます最終的な時間を書き留めます。
      注:著者は技術を一つの方法を好みます。しかし、顕微手術縫合糸の任意のタイプを練習することができます。それは彼が他の臨床シナリオを試すことができます前に、トレーニング者がこのようにして約25顕微吻合を完了することが推奨されます。これらは、静脈、動脈ギャップに対する移植、神経の修復を終了する終了、および神経ギャップの治療のための静脈管路の使用を含みます。このトレーニング方法で学習することができる微小血管手術において重要な技術は、3.1.2.1のようにこの技術を研修生が進行を行うために、連続的または連続縫合であるが、シュティッヒはなしで3.1.2.1のようにステッチを実行するために継続し、切断されていませんそれらuを切断ntilあなたは全体の縫合糸を完了し、終了時に元のステッチにそれを結びます。

  1. 上腕動脈とトレーニング
    1. 顕微鏡下で作品を配置します。大腿動脈のために上記のような手順を実行します。
      注:唯一の違いはサイズです。上腕動脈は大腿動脈よりもはるかに小さく、吻合はかなり困難です。
  2. 開通試験
    1. 一緒に両方の血管壁を縫合ステッチによって引き起こされる障害物を確認するために、吻合を介して滑らかに20または27のGアンギオカテーテルを渡ります。
    2. アンギオカテーテルの端部に市販食品の着色剤と注射器を適用し、ジェット漏れをテストするために動脈に色素を灌流
    3. ステッチ、その並列性と撮影した壁の量を可視化するために、長手方向に動脈を開きます。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

著者は、現在のトレーニング方法で自分の時間をchronometeredており、大幅に第3週の終わりに大腿動脈のための吻合時間を短縮するためにそれを見てきました。研修生は、彼の時代、彼の開存率と彼の縫い目の位置合わせをチェックすることによって、彼の技術の改良を制御することができます。本稿に記載されたシステムは、それが卓上顕微鏡顕微器具のセットを含む、図1に示されています。肉眼解剖は、図2及び3に大腿動脈の顕微吻合は、図5は上腕動脈顕微吻合を示す図4に示されている例を示しています。図6は、静脈グラフトと大腿動脈の修復を示しています。開通性試験は、図7に示されています。

図1
図1:CORR著者自身の顕微練習ステーションをesponding。これは、卓上顕微鏡とトレーニング顕微器のセットが含まれています。これは、オフィスや家庭で非常に限られたスペースに設定することができます。

図2
図2 A:鶏もも肉の巨視的解剖、大腿血管と坐骨神経だけで簡単に大腿骨軸に正中指を実行して露出させることができます。水平方向の矢印は、大腿骨頭をマークします。大腿動脈(a)の静脈(V)および坐骨神経(n)はここでは詳細に示されている解剖面はちょうど大腿軸Bに平行な垂直の矢印でマークされます。

図3
図3のAおよびB:チキンウィングの肉眼解剖。上腕A rteryは上腕二頭筋と上腕三頭の間に実行されます。動脈は、それが非常に表面的であり、手法は単純で、両方の写真の矢印でマークされます。これは、市販の調理ハサミで達成することができます。

図4
図4:縫合糸を終了するには大腿動脈端の顕微鏡画像は、シングルステッチでここに一つの方法までの技術が実施されました。縫合糸の他のタイプは、訓練者の裁量で実施することができます。

図5
図5:鶏の上腕動脈の縫合糸を終了する終了します。この動脈は大腿骨のものよりもはるかに小さく、手順はより技術的に要求が厳しいです。

ロード/ 52625 / 52625fig6.jpg "/>
図6:大腿静脈から採取した静脈グラフトと大腿動脈の修理。鶏もも肉のモデルは、練習問題、異なるタイプのを可能にする非常に汎用性があります。

図7
図7:開通試験A:適切な直径の血管カテーテルは、血管の壁の両方を縫合stichesによって引き起こされる障害物を確認するために吻合を介して交差するB:染料は、漏れをテストするために吻合を介して灌流されるC :吻合は、縫合糸の配置を視覚化するために長手方向に開放されます。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Stereomicroscope Amscope SM-1BX Microscope
Led light Amscope LED-80S-YA illumination system
Microsurgical instruments set Chen hen microsurgical instruments HC- X803-1 Microsurgical instruments
Microsurgical sutures S/T microsurgical 9/0 Suture Sutures

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Lee, S. Historical events on development of experimental microsurgical organ transplantation. Yonsei Med J. 45 (6), 1115-1120 (2004).
  2. Shurey, S., Akelina, Y., Legagneux, J., Malzone, G., Jiga, L., Ghanem, A. M. The rat model in microsurgery education: classical exercises and new horizons. Arch Plast Surg. 41 (3), 201-208 (2014).
  3. Olabe, J., Olabe, J., Sancho, V. Human cadaveric infusión model for neurosurgical training. Surg Neurol. 72, 700-702 (2009).
  4. Peled, I. J., Kaplan, H. Y., Wexler, M. R. Microsilicone anastomoses. Ann Plast Surg. 10 (4), 331-332 (1983).
  5. Gluer, N. M., Rao, G. S. Canniesburn “ever-ready” model to practise microsurgery. Br J Plast Surg. 43 (3), 381-382 (1990).
  6. Hino, A. Training in microvascular surgery using a Chicken wing artery. Neurosurgery. 52 (6), 1495-1498 (2003).
  7. Marsh, D. J., Norton, S. E., Mok, J., Patel, H. D., Chen, H. C. Microsurgical training the Chicken thigh model. Ann Plast Surg. 59 (3), 355-356 (2007).
  8. Jeong, H. S., Moon, M. S., Kim, H. S., Lee, H. K., Yi, S. Y. Microsurgical training with fresh chicken legs and their histological characteristics. Ann Plast Surg. 70 (1), 57-61 (2013).
  9. Couceiro, J., Ozyurekoglu, T., Sanders, S., Tien, H. Microsurgical training regimen with nonliving chicken models. Microsurgery. 33 (3), 251-252 (2013).
  10. Phoon, A. F., Gumley, G. J., Rtshiladze, M. A. Microsurgical training using a pulsatile membrane pump and chicken thigh: A new, realistic, practical, nonliving educational model. Plast Reconstr Surg. 126 (5), 278e-279e (2010).
  11. Zhou, Y., Gu, X., Xiang, J., Qian, S., Chen, Z. A comparative study on suture versus cuff anastomosis in mouse cervical cardiac transplant. Exp Clin Transplant. 8 (3), 245-249 (2010).

Tags

空の値、発行、MICO手術、トレーニング、非生物、鶏肉、コスト、アクセス、実験
2非生物の動物モデルを組み合わせた顕微トレーニング方法:ステップバイステップ
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Couceiro, J., Castro, R., Tien, H.,More

Couceiro, J., Castro, R., Tien, H., Ozyurekoglu, T. Step By Step: Microsurgical training method combining two nonliving animal models. J. Vis. Exp. (99), e52625, doi:10.3791/52625 (2015).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter