Protocol
1. Voorbereiding:
- Het verkrijgen van een tafelblad stereo microscoop, met een variabele 3,5 x tot 45x zoom, 200 mm werkafstand, 55-75 mm variabele inter-pupil afstand en een accessoire geleid ring licht. Soortgelijke microscoop toereikend, kan worden ingesteld op een tafeltje en is niet erg duur.
- Verzamel en voor te bereiden een reeks van microchirurgische instrumenten met twee microchirurgische pickups, een ontleden schaar, en een naald-driver; Dit is de minimale vereiste moet er rekening mee worden gehouden dat deze praktijk instrumenten en hoogwaardige kwaliteit instrumenten niet noodzakelijk.
- Gebruik 9/0 monofilament micro-hechting voor alle praktijken. Koop commercieel beschikbare kippendijen of vleugels en voedsel kleurstof bij de plaatselijke supermarkt.
- Een 20 G angio- katheter wordt gebruikt voor de doorgankelijkheid tests van de kip femorale slagaders. Voor de brachiale slagaderen een dunnere 27 G catheter nodig is. Deze kunnen worden verkregen via internet bij een lokale apotheek ofde set instrumenten. Koop een commercieel beschikbare spuit om het voedsel kleurstof injecteren.
2. Macroscopische dissectie technieken:
- De benadering van de femorale vaten is eenvoudig. Voor kippendijen, het uitvoeren van een stompe dissectie techniek net mediaal van de femurschacht, scheiden de dij spieren van het bot en de femorale slagader, ader en zenuw bloot te leggen. De zenuw kan verder worden ontleed in twee afzonderlijke bundels voor verschillende soorten zenuwherstel praktijken.
- Om longitudinaal toegang tot de kip brachialis slagader in de Kipvleugeltjes, incise de huid met een schaar, vanaf de schouder tot aan het uiteinde van de vleugel. Let op de slagader die tussen de biceps en triceps brachii.
3. Aanbevolen training regime:
- Trainen met de femorale slagader.
OPMERKING: De eerste stap in de training regime is te oefenen met de kip femorale slagader.
- Leg het stuk onder de microscoop en start de microchirurgische dissectie. Bevrijd de dijbeenslagader van de onderliggende weefsels; en verdeel het horizontaal. Voer een adventicectomy. Gebruik de micro-pickups en micro-schaar om elke adventicia bovenop de arteriële lumen trimmen. Spoel de binnenste lumen met regelmatig kraanwater. Noteer de starttijd
- Voer een begin tot eind anastomose.
- Begin op de achterwand van de slagader aan de zijde tegenover de operator. Plaats de eerste steek; beginnen aan de linker kant als horizontaal te werken, aan de onderkant als verticaal te werken. Steek de naald vanaf de buitenzijde van de arterie naar het lumen en het lumen naar de buitenzijde van de arterie.
- Bind de steek, het uitvoeren van een dubbele knoop, en dan twee enkele gooit wisselende richtingen. Voltooi de gehele achterwand de hierboven beschreven techniek.
- Vanaf de rechterkant als je horizontaal werkt of de bovenzijde als je woverticaal rken, plaats een enkele steek van buiten naar het lumen en het lumen naar buiten. Bind de knoop zoals hierboven beschreven. Voltooi de voorwand het herhalen van de in 3.1.2.2 beschreven procedure.
- Noteer de laatste keer dat dit zal u toelaten om een record te houden, zodat u uw voortgang te controleren.
OPMERKING: De auteurs liever een enkele up techniek; maar elk type van microchirurgische hechting kan worden gerepeteerd. Het is aan te bevelen dat de stagiair voltooid rond 25 microchirurgische anastomosen op deze manier voordat hij kan proberen andere klinische scenario's. Deze omvatten veneuze enten voor arteriële gaps, end zenuwen reparaties beëindigen en het gebruik van de ader leidingen voor de behandeling van zenuw spleten. Een belangrijke techniek in microvasculaire chirurgie, die kunnen worden geleerd met deze trainingsmethode is de continue of hardlopen hechting, om deze techniek uit te voeren de opbrengsten stagiair als 3.1.2.1, maar de stich wordt niet gesneden, blijven steken presteren als in 3.1.2.1, zonder snijden ze until je de hele hechtdraad voltooien en bind het aan de oorspronkelijke steek op het einde.
- Trainen met de armslagader
- Leg het stuk onder de microscoop. Voltooi de procedure zoals hierboven beschreven voor de femorale arterie.
NB: Het enige verschil is de grootte. De brachiale arterie is veel kleiner dan de femorale slagader en de anastomose aanzienlijk moeilijker.
- Leg het stuk onder de microscoop. Voltooi de procedure zoals hierboven beschreven voor de femorale arterie.
- Doorgankelijkheid testen
- Steek een glad 20 of 27 G angio-katheter via de anastomose, om te controleren op verstoppingen veroorzaakt door steken hechten beide vaatwanden samen.
- Breng een spuit met commercieel voedsel kleurstof aan het einde van de angio- katheter en perfuseren kleurstof in de slagader te testen op lekkage jet
- Open de slagader langsrichting om de steken, de parallelliteit en de hoeveelheid muur genomen visualiseren.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
De auteurs hebben hun tijd chronometered de onderhavige werkwijze en training hebben gezien aanzienlijke vermindering van de anastomose tijden een femorale slagader aan het einde van de derde week. De stagiair kan de verbeteringen aan zijn techniek te controleren door het controleren van zijn tijd, zijn doorgankelijkheid percentages en de afstemming van zijn hechtingen. De in dit manuscript beschreven systeem is in Figuur 1 omvat een tafelblad microscoop en een aantal microchirurgische instrumenten. De macroscopische dissecties worden in figuren 2 en 3. Een voorbeeld van een femorale slagader microchirurgische anastomose is weergegeven in figuur 4. Figuur 5 toont een slagader microchirurgische anastomose. Figuur 6 toont een femorale arterie repareren van een veneuze graft. De doorgankelijkheid tests zijn te zien in figuur 7.
Figuur 1: De corrEN ANTWOORD auteur eigen microchirurgische praktijk station. Het omvat een tafelblad microscoop en een set van de opleiding van microchirurgische instrumenten. Het kan worden ingesteld op een zeer beperkte ruimte op kantoor of thuis.
Figuur 2 A: A macroscopische dissectie van een kip dij, kan de femorale vaten en heupzenuw gemakkelijk worden blootgesteld met een vinger net mediaal van de femorale schacht. De horizontale pijl markeert de heupkop. De dissectie vlak aangegeven wordt door het verticale pijltje gewoon evenwijdig aan de femurschacht B: De femorale arterie (a) ader (v) en heupzenuw (n) worden hier in detail.
Figuur 3 A en B: A macroscopische dissectie van een kip vleugel. De brachiale a rtery loopt tussen de biceps en triceps brachii. De slagader wordt aangegeven met een pijl op beide foto's is vrij oppervlakkig en de aanpak is eenvoudig; kan worden bereikt met commercieel cooking schaar.
Figuur 4: Microscopisch beeld van een dijbeenslagader begin tot eind hechtdraad, hier een enkele up techniek met enkele hechtingen werd uitgevoerd. Elke andere vorm van hechting kan worden beoefend op het oordeel van de stagiair.
Figuur 5: begin tot eind hechting van een kip armslagader. Deze slagaders zijn veel kleiner dan de femorale enen en de procedure is grotendeels technisch veeleisend.
laden / 52625 / 52625fig6.jpg "/>
Figuur 6: Een dijbeenslagader repareren met een ader graft geoogst uit de femorale ader. Het kippendij model is zeer veelzijdig waardoor verschillende oefeningen.
Figuur 7:. De doorgankelijkheid testen A: Een angio-katheter van de juiste diameter wordt doorkruist door de anastomose te controleren op verstoppingen veroorzaakt door steken hechten beide wanden van het schip B:.. Dye is doorbloed door de anastomose te testen op lekkage C De anastomose longitudinaal geopend om de hechting uitlijning visualiseren.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Stereomicroscope | Amscope | SM-1BX | Microscope |
| Led light | Amscope | LED-80S-YA | illumination system |
| Microsurgical instruments set | Chen hen microsurgical instruments | HC- X803-1 | Microsurgical instruments |
| Microsurgical sutures | S/T microsurgical | 9/0 Suture | Sutures |
References
- Lee, S. Historical events on development of experimental microsurgical organ transplantation. Yonsei Med J. 45 (6), 1115-1120 (2004).
- Shurey, S., Akelina, Y., Legagneux, J., Malzone, G., Jiga, L., Ghanem, A. M. The rat model in microsurgery education: classical exercises and new horizons. Arch Plast Surg. 41 (3), 201-208 (2014).
- Olabe, J., Olabe, J., Sancho, V. Human cadaveric infusión model for neurosurgical training. Surg Neurol. 72, 700-702 (2009).
- Peled, I. J., Kaplan, H. Y., Wexler, M. R.
- Gluer, N. M., Rao, G. S. Canniesburn “ever-ready” model to practise microsurgery. Br J Plast Surg. 43 (3), 381-382 (1990).
- Hino, A. Training in microvascular surgery using a Chicken wing artery. Neurosurgery. 52 (6), 1495-1498 (2003).
- Marsh, D. J., Norton, S. E., Mok, J., Patel, H. D., Chen, H. C. Microsurgical training the Chicken thigh model. Ann Plast Surg. 59 (3), 355-356 (2007).
- Jeong, H. S., Moon, M. S., Kim, H. S., Lee, H. K., Yi, S. Y. Microsurgical training with fresh chicken legs and their histological characteristics. Ann Plast Surg. 70 (1), 57-61 (2013).
- Couceiro, J., Ozyurekoglu, T., Sanders, S., Tien, H. Microsurgical training regimen with nonliving chicken models. Microsurgery. 33 (3), 251-252 (2013).
- Phoon, A. F., Gumley, G. J., Rtshiladze, M. A. Microsurgical training using a pulsatile membrane pump and chicken thigh: A new, realistic, practical, nonliving educational model. Plast Reconstr Surg. 126 (5), 278e-279e (2010).
- Zhou, Y., Gu, X., Xiang, J., Qian, S., Chen, Z. A comparative study on suture versus cuff anastomosis in mouse cervical cardiac transplant. Exp Clin Transplant. 8 (3), 245-249 (2010).
