Abstract
未熟児の脳症（EOP）が最高の事前並進目標に。早産に関連する異常、中枢神経系（CNS）に含まれる用語であり、早産に関連した脳損傷のための新しい治療戦略を発見、EOPの前臨床モデルは、同様のメカニズムが含まれている必要があります出生前のグローバル傷害のヒトで観察され、母体の胎盤胎児システムの複数のコンポーネントを含みます。理想的には、モデルが成熟した動物において機能欠損の類似のスペクトルを生成し、病態生理学の複数の側面を再現する必要があります。人間の全身胎盤灌流欠損、胎盤underperfusionおよび/または早期早産で病原体誘発性の炎症に関連する絨毛羊膜炎を模倣するために、我々は、羊膜内リポ多糖（LPS）と組み合わせ出生前過渡全身低酸素虚血（TSHI）のモデルを開発しました。妊娠のSprague Dawleyラットにおいて、TSHI子宮動脈閉塞oを介してnは胎生18日（E18）は、胎児における増加CNS損傷に関連した段階的な胎盤underperfusion欠陥を誘発します。羊膜内LPS注射と組み合わせると、胎盤の炎症が増加し、CNS損傷は、関連する白質、歩行や画像異常に配合されます。出生前TSHIとTSHI + LPS出生前侮辱は、ニューロン、オリゴデンドロサイトおよび軸索の喪失を引き起こし、子宮内侮辱を反復するなど、EOPモデルの基準のいくつかを満たす、サブプレートの喪失、および非常に生まれた子供で観察されたものを模倣成体動物における機能欠損早産。また、このモデルは、発散損傷の種類によって誘発される炎症の切開を可能にします。
Introduction
37週の推定妊娠期間1前にアメリカで生まれた乳児の12％以上では、未熟児の周産期脳損傷（PBI）は、永久的な障害の重要な原因です。未熟児からPBI、未熟児とも呼ばれる脳症（EOP）は、全体の中枢神経系（CNS）に影響を与えます。 CNS損傷は、多くの場合、 子宮内で開始し、絨毛羊膜炎や、低酸素症および敗血症などの合併症を含む出生後の出産前のプロセスによって悪化します。全身侮辱からPBIは、神経発達を変化させ、感情的な規制、メモリと実行機能1,2に影響を与え 、脳性麻痺、てんかん、認知遅延及び多数の神経精神障害につながります。多くの進歩がなされているが、限られた理解は、早産からCNS損傷の細胞および分子結果が早産で生まれている子供の神経学的後遺症の多くに変換する方法のまま。知識後肢の欠如リアルタイムのCNS損傷の重症度の診断や新興介入の通知投与者。また、この脆弱性の患者集団のための年齢に適切な治療戦略は、とらえどころのないまま。
子宮内炎症は、極端な未熟児では非常に一般的であり、3複雑な胎児母体の胎盤炎症カスケードを伴います。子宮内感染はしばしば無症状です。急性炎症、または組織学的絨毛羊膜炎と一致特定の胎盤所見は、胎児の炎症反応の主要な決定であり、早産3-5に関連した脳損傷と一致しています。実際、胎児の炎症反応は、早産からの長期転帰改善のための明確な臨床的意義を持っています。妊娠期間（SGA）のために小さいまたは感染を経験する人幼児は、神経学的欠損3,4に対して非常に脆弱です。絨毛羊膜炎は、一般的な病理診断以下の早産で
病原体によって誘発される炎症に関連する人間の全身胎盤灌流欠陥や絨毛羊膜炎を模倣するために、我々はラットで羊膜内リポ多糖（LPS）と組み合わせ出生前過渡全身低酸素虚血（TSHI）のモデルを開発しました。私たちの目標は、子宮内炎症が含まれるように、単独でラット12-16でTSHIの我々のモデルを適応させることでした早産に関連するCNS損傷の前臨床モデル化を容易にします。 TSHIだけではオリゴデンドログリア系細胞、皮質ニューロンの永続的な損失を明らかにした、出生前脳損傷16と一致してけがの段階的なパターンにつながる進行性の虚血性の間隔で、細胞死を増加させ、およびプロ炎症性サイトカインのレベルの上昇。彼らは17-19を老化としてこのモデルの虚血性の構成要素への変更は、メモリの符号化の欠損、短期および長期記憶とラットにおける軽度の筋骨格系の変化を示しました。実際、我々は以前にTSHI + LPSの組み合わせは、オリゴデンドロサイトおよびニューロン喪失、軸索損傷、細胞の炎症や機能異常20を含む EOPの病態生理学的特徴を、再現することが実証されています。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
両方のボストン小児病院、ニューメキシコ州健康科学センターの大学の制度管理使用委員会は、すべての実験手順を承認しました。
注：前の手順を開始する、シール、すべての手術器具および外科用ドレープを滅菌し、オートクレーブ。さらに、0.125％のbipivucaineおよび0.1mg / kgのブプレノルフィンを含む滅菌バイアルで術後の薬を準備します。また無菌リポポリサッカライド（LPS）溶液を調製：0.04 mg / mlのLPS（0111：B4）エバンスブルー色素を希釈含む滅菌生理食塩水中のを。
1.麻酔
- 胎生18日（E18）3％イソフルランバランス70％の窒素と酸素30％の混合物を妊娠スプラーグドーリーラットに麻酔を誘導します。
- 誘導チャンバーからラットを削除し、37℃に設定したドレープ手術用循環水の毛布の上にラット仰向けに置きます。ノーズコーンに麻酔を移し、isofluraを減らします2％のNEレベル。
- 静かに角膜の乾燥を防ぐために、それぞれの眼に眼軟膏を適用します。手順の間に継続的に温度、呼吸数及び動物の心拍数を監視します。母体の生理は手順を通して安定のままであるべきです。
2.外科準備とスクラブ
- 小動物のバリカンを使用すると、下腹部にすべての毛を削除します。乳首をニッキングまたはライブ生まれた仔の将来の介護のために刺激を与えることができるかみそりの発疹の発生を回避するために注意して矩形のパターンで剃ります。
- 滅菌綿棒でポビドンヨードおよび70％エタノールのスクラブのアプリケーションを交互に腹部の皮膚を準備します。ポビドンヨードおよび70％エタノールを交互に3回、それぞれに適用されるようにスクラブを繰り返します。乾燥してみましょう。
- つま先ピンチ反射の不在を経て、麻酔の深さを確認してください。痛みに反射し、刺激の非存在下では、1％にイソフルランレベルを下げます。
- 無菌手術用タオルを使用して、動物をドレープ。彼らは子宮角への血流を妨げない一方で吸収洗浄流体の量を最大化するように、適切な角度でドレープを配置するように注意してください。
3.腹部開腹
- メスを用いて調製腹部の皮膚の3センチ正中切開を行います。ぶっきらぼうにはさみで腹部の筋膜からスキン層を分析。鉗子および外科はさみを使用して、腹部の筋膜層を昇格し、腹膜腔へのアクセスを得るために、無血管白線の切開を行います。
- 切開部の外側に手術用ガーゼを置き、滅菌生理食塩水で湿らせてから掃き入れます。腹部に鈍い鉗子や外圧を使用して、ゆっくりと腹腔から子宮角を除去し、湿らせたガーゼの上に配置します。
- 慎重にもつれを回避し、腸にお問い合わせください。個々の羊膜嚢の間の唯一の筋肉組織を接触させることにより、ピンセットを用いて胎児を配置します。公開と鈍的切開を使用して、4子宮動脈を分離します。
注：ケアは、子宮動脈を分析するために取られなければなりません。周囲の組織と血管自体は非常にデリケートです。母体の血管への損傷は出血し、重症例では、胎児と母体の死を引き起こす可能性があります。
4.配置瘤のクリップ
- 各子宮動脈のラット30のG動脈瘤クリップを配置します。個々の胎盤を含む子宮血管の近位および遠位のパルス、および黒ずみなどの血流の停止を確認してください。ガーゼで露光角と全体外科分野をカバーし、滅菌生理食塩水で灌漑。灌漑ごとに約10分で湿ったフィールドを維持するように注意してください。
- 60分後、ガーゼを除去し、フィールドを灌漑。子宮角と血管が十分に成功したクリップを除去するために湿らせていることを確認します。静かに鉗子を使用して、各動脈瘤クリップを削除します。容器に外傷を起こさないように注意してください、とのmaint除去中AIN組織の整合性。
- 徹底的羊膜嚢からガーゼの任意の浮遊スレッドを削除するように注意しながら、子宮角とフィールドを灌漑。
羊水嚢の中のリポ多糖の5インジェクション
- 各個々の羊膜嚢の基部には、ちょうど、胎盤プレートの前方羊水の中に希釈したエバンスブルー色素とLPS（4μgの/ SAC）の100μLを注入します。注射のための最適な位置に各羊膜嚢を安定させ、回転させる鈍鉗子を使用してください。エバンスブルー色素を希釈し、適切な注射器の配置および注入を確認するのに有用である造影剤です。
注：羊膜内注射のための付属の8ミリメートル31 G針でのみを使用し、超微細0.3ミリリットルのインスリン注射器。大きなゲージの針を使用すると、慢性羊水損失、胎児死亡や妊娠の再吸収になります。注射器の取り外し時に羊水の漏れ少量のmitigすることができます羊膜嚢に直接圧力によってated。一部のラット胎児は、羊水過少の程度を許容することができます。しかし、大きなゲージの針で穿刺から急性羊水損失、または慢性液漏れが生じる偶発穿刺、胎児の損失の深刻なケースでは、結果、近隣の妊娠の喪失。 - ホーンは、滅菌生理食塩水で3回子宮を灌漑。
6.開腹を閉じます
- 鉗子を使用して、慎重に腹腔に子宮角を返します。羊膜嚢と正中切開、再おおよその実行3-0絹縫合糸を使用してmusculofascial層エッジ間の十分なスペースを確保。筋肉の切開を閉じながら羊膜嚢の配置に注意してください。嚢にまたはを介して縫合しないように注意してください。
- スキン層を閉じ、実行中の3-0絹縫合糸を使用して、スキン層を再近似します。
注：開腹を可能にするために、連続縫合の2層に閉じる必要があります皮膚や妊娠の増加に伴う筋肉の拡張のため。連続縫合糸は均等に分散創傷テンションを可能にします。多重ノットが刺激性で、簡単に麻酔から回復時にラットによって噛むことができるように結節縫合はあまり望まれています。外科用ステープルは、所望されていません。外科的な結び目の尾が非常に短い（<3 mm）をカットする必要があります。 - 26 G針を使用して、0.125％ブピバカインを皮下巻き付けエッジの1ミリリットルを注入。首のうなじにブプレノルフィンを皮下/ kgで0.1 mgの1用量を投与します。
- イソフルランし、必要に応じてタオルドライしたラットの電源をオフにします。きれいなホームケージに置き、麻酔からの回復を監視します。ラットは低体温にならないことを確認してください。
7.術後の回復とケア
- 子犬が生まれされるまで（約E22またはE23）毎日、その後、ラットを72時間毎に8-12時間を監視し。ブプレノルフィンq8-12時間/ 72時間の追加の用量を投与またはIACUCによって決定されるようprnを。
- 痛み、不快感、膣出血または手術部位からの出血の兆候がラットを監視します。縫合および切開を点検し、ラットが途中で彼らの縫合糸を咀嚼または削除されないように注意してください。非常に珍しいが、その縫合糸を侵害したラットは、創傷裂開のリスクがあります。
注：時々ラットは寝具や非食品の過剰な量を摂取することが、ブプレノルフィン投与の副作用として、パイカと呼ばれます。非常に珍しいが、ラットはパイカと潜在的な後続の腸閉塞のために監視する必要があります。
8.組織処理および凍結切片化
- 生後脳のヘマトキシリン＆エオシン（H＆E）染色のために準備するために、生後2日目（P2）に自分のホームケージから子犬を削除します。手術用ハサミを使用すると、仔ラットを刎ねるとそっと頭蓋骨から脳を削除します。
- リン酸緩衝生理食塩水で4％パラホルムアルデヒドの7ミリリットルを含む15ミリリットルコニカルチューブに修正脳をドロップ（PBS）。 4℃で脳を置き、72時間固定します。
- 72時間後、30％スクロースを含む滅菌PBS溶液に脳を転送する（w / v）の、4℃に戻します。
注：脳はショ糖溶液中にドロップすると、彼らはクライオスタットに区分される準備ができています。 - 急速に脳を凍結し、凍結した冠状断面を取得するためのクライオスタット乳棒でマウントします。 20μmの凍結した冠状切片を切断し、スライド上にマウントします。確認のセクションでは、連続的に収集されます。
- スライドを室温で一晩乾燥することができます。ストアを-20℃でスライドします。
9.ヘマトキシリン＆エオシン染色
- スライドが凍結切片をマウントし、室温に戻してください。
注：新鮮なすべてのソリューションを準備します。 - 2時間50°Cまでのスライドウォーマーセットの上に置いてスライドします。
- 転送は、染色ラックにスライドさせます。ディップは、二重蒸留脱イオン水（のddH 2 O）で10倍をスライド。
- 5分間、100％のヘマトキシリンでスライドをインキュベートします。チタン私は、ヘマトキシリンで紫色の染色の程度に応じて最適化することができます。
- ディップは、タップ、H 2 Oで4倍をスライドし、1分間きれいな水道H 2 O中に放置します。
- ディップ（250 mlの70％エタノール+ 1mlを濃塩酸）酸アルコールで15倍をスライド。
- ディップは、タップ、H 2 Oで4倍をスライドし、1分間きれいな水道H 2 O中に放置します。
- 2分間、1％の炭酸リチウムでインキュベートします。
- ディップは、タップ、H 2 Oで4倍をスライドし、1分間きれいな水道H 2 O中に放置します。
- 1分間、95％エタノール中でインキュベートします。
- ディップスライドを100％エオシンで7倍。エオシンでディップの数がピンクの染色の度合いに応じて変更することができます。
- ディップスライドを95％エタノール中で5倍。
- 95％のエタノールの新鮮な変化ディップスライド5倍。
- 1分間100％エタノール中でスライドをインキュベートします。
- 1分間100％エタノールの新たな変化でスライドをインキュベートします。
- 15分間、100％キシレンでスライドをインキュベートします。
注：キシレンのステップと封入は、ドラフト内で行う必要があります。 - 15分間のキシレンの新鮮な変化でスライドをインキュベートします。
- パーマウントでカバースリップし、ドラフト内で乾燥させてください。
- 画像は、光学顕微鏡でスライドします。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
E18でTSHI + LPSの後、ヘマトキシリンおよびエオシン染色は有意な組織病 理学的胎盤両方の異常（ 図1）、脳内（ 図2）を明らかにする。 E19とE21を調べ胎盤は脱落膜と迷路を通してマイクロ出血、および壊死を伴う肉眼的浮腫です。著しい炎症性浸潤及び血管分布の増加も観察されます。 P2に調べた脳を脳室のほか、シャムに比べて白質とサブプレートニューロンの損失を明らかにしました。以前、我々はTSHI + LPSは炎症を誘発し、持続性の白質および若年成人20の大幅な運動障害との併用軸索異常をもたらすことを報告しています。 TSHI + LPSも大幅に、図3（P15で皮質において、塩化カリウム共輸送2（KCC2）タンパク質の発現、γアミノ酪酸の開発の中心と塩化共輸送（GABA）ERGIC阻害を減少させます13で単独でTSHIの影響の事前の報告と一致しています。
図1：TSHI + LPSは胎盤で重要な組織学的異常を誘発する胎生18日（E18）に子宮内低酸素性虚血と羊水内LPS投与で一過後、E19 TSHI + LPSの胎児（B）からの胎盤は出血を伴う肉眼的浮腫です。 （矢印）、壊死および増加した炎症性偽に比べ浸潤（A、スケールバー= 100μm）で。 この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。
図2：TSHI + LPSは、脳内の重要な組織学的異常を誘発胚日に子宮内低酸素性虚血と羊水内LPS投与における過渡後18（E18）、出生後の脳室、サブプレートニューロンと白質損失が受ける仔で観察されます。急性P2で偽（A）と比較して、デュアルTSHI + LPS（B）。 （スケールバー= 100ミクロン; Spを=サブプレート; WM =白質; LV =側脳室） この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。
図3：TSHI + LPSはKCC2の発現を減少させるウェスタンブロットは、MEMから実行。マイクロ解剖皮質組織のブレーン製剤、胎生18日（E18）に子宮内の過渡全身低酸素性虚血と羊水内LPS投与でのショーが大幅KCC2の開発の中心とニューロン特異的塩化カリウム共輸送の発現を減少させます生後15日目に統合された脳の回路と抑制、（N = 6-10、±SEM、スチューデントのt検定、* P <0.05を意味します）。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
未熟児の脳症が原因傷害のメカニズムを重複病因、神経発達の時間経過、人間の脳のネットワーク形成の複雑さの複雑な相互作用の動物でモデル化することは困難であり、中枢神経系の多様な表現型は、ヒト早産児でマニフェスト侮辱します。 EOPは、特定の細胞型の脆弱性に関連している（ すなわち 、未成熟オリゴデンドロサイト）21だけでなく、多様な発生調節経路（ すなわちサブプレート、膜輸送体および受容体サブユニット）12,13,22。動物モデルはできるだけ人間の状態を複製しかし、重要な進展がなされ得ます。ここでは、モデルに灰色と白質の損傷と回復の両方のその後の評価を可能にする、早産児で観察されたCNS損傷のメカニズムの異質性を組み込んだ出生前侮辱を開発しました。ヒトでは、昇順細菌感染は、羊膜とprecipitaを弱めます前期破水をTE。さらに、胎盤灌流欠損は、胎盤のインタフェースを強調し、胎盤の恒常性を乱します。このように、胎盤underperfusionは子宮内感染のCNS損傷を化合物。紛れもなく、それは二重子宮を持っているとして、げっ歯類で絨毛羊膜炎の前に細菌感染を昇順の一般的な臨床シナリオをモデル化するために挑戦しています。各子宮角には、独自の子宮頸部を持っており、多胎妊娠を一度に実施されます。これらの課題にもかかわらず、前臨床モデルは、母体の胎盤胎児ユニットの複数のコンポーネントを含んでおり、様々な程度に子宮内炎症に組み込むように適応されています。何の個々の前臨床モデルは、すべての特定の仮説を検証するのが理想的ではないが、本明細書に記載されたモデルは、細胞および分子異常、行動や機能障害、母体の胎盤胎児システム、および子宮内感染などミリアンペアに共通の胎盤炎症コンポーネントが組み込まれてNYの早産20,23。
EOPへの影響を種によってもたらされる固有の制限の範囲内の実験データの解釈をモデル化するために使用される種の選択。簡単に言うと、誕生はすべての動物24全体の中枢神経系の発達の類似した点に一致しません。マウスにおける仔の生存率が有意に未経験またはストレスダムにおいて減少しているが、ここで説明したモデルは、妊娠マウスおよびラットの両方で行うことができます。私たちの前の報告と一致し、出生（P0）でのラットで胎児の損失が偽、LPS単独TSHIに比べTSHI + LPS動物（約40％）に増加するが、生き残った子犬は、P28 20を介して有意な体重差を示さありません。種の違いと同様に、妊娠中の損傷のタイミングは、子孫の神経軌跡において重要な役割を有しています。増殖、遊走およびdiffeの神経細胞の発達段階の時空間制御rentiationは、各種哺乳動物24-26の間で異なっています。これらの細胞特異的な発生プログラムは、傷害に対する脆弱性に影響を与えます。例えば、早産のタイミングにオリゴデンドロサイト系譜とGABA作動性ニューロンの発達のタイミングの重なりが周産期侮辱27-29を特に受けやすいこれらの細胞になります。したがって、このモデルは、E18ラットで開発された（され、正常C57BL / 6バックグラウンドのE17マウスに翻訳された）この時期は23〜25週の妊娠20時前に非常に早産出産乳児に起こる子宮内グローバル出生前の侮辱に相当するよう。我々は以前O4免疫反応性の未成熟オリゴデンドロサイトは、ほとんどの開発16のこの段階で影響を受けているが示されました。彼らの損失は、他の研究者30による O4 +および以前の報告と一致系統16の01 +の段階で最も顕著な減少と、減少した生存及び成熟14と相関します。また、、我々はサブプレートの早期喪失、減少KCC2の発現、下発作閾値と調節不全のGABA作動性が早産児31におけるシグナリングと一致障害者歩行12,13,15を示しました 。
ここで説明するモデルは、早産23から周産期脳損傷を研究するために使用されるげっ歯類の前モデルを超える多数の利点を提供しています。これは、全体の母体胎盤胎児のシステムが組み込まれており、脳および胎盤傷害の両方の原因となります。我々は以前に偽の比較を掲載しており、単独でTSHIは、LPSのみとTSHI + LPSおよび機能的転帰および生化学20の違い、および段階的TSHI 16との違い。新生児ラットにおける片側性頸動脈結紮および全身低酸素症の事前調査は、多くの病態生理学的プロセス（虚血に未熟オリゴデンドロサイトの感受性すなわち ）、直接翻訳および臨床relevaに機械的な洞察を流してきたがこのようなモデルのためのNCEはあまり強固です。記載されている用途に加えて、ここで説明するモデルは、壊死性腸炎（NEC）、心臓、肺、腎臓および視床下部 - 下垂体軸の機能不全を含む、未熟児の影響を受け、他の器官系の調査のための有益なツールとなることがあります。 LPSの薬理学の複雑さと母体と胎児の薬力学の違いにより、ダムで腹腔内LPS注射は、ここで示したのと同じ胎児炎症反応を生成する可能性が低いです。さらに、LPSは確実20,32胎盤を通過しません。以前、我々は、他のマウスモデル33に記載されているものと同様LPS及び子宮内注射の直接頸部の適用を試みました。しかし、我々は、CNS損傷の死亡率と矛盾が大幅同腹内の仔の間で増加したことがわかりました。ここでは、4μgの/嚢の用量は、用量応答実験を用いて最適化しました。 AMNに投与LPSの投与量を増やします増加した胎児死亡率のioticコンパートメント結果。 LPSは、それがアクティブな細菌感染症および病原体の広がりのリスクを引き起こすことなく、Toll様受容体4を介して炎症性シグナル伝達を活性化することで、典型的な子宮内グラム陰性細菌との直接感染を超える利点を有します。しかしながら、このモデルは、グループBの胎盤および神経病理学的異常を引き起こす連鎖球菌 、およびラット34における自閉症のような動作を含むヒト胎盤から単離された一般的な病原体および生物を含むように修正することができます。同様に、ウレアプラズマリポタンパク質、マルチバンド化抗原は、ウレアプラズマ種の感染をシミュレートすることができます。ウレアプラズマは、ヒト絨毛羊膜炎35の中で最も一般的な原因であるので、これはまた、将来の調査のための通りであり得ます。より不活性化され、感染性物質が利用できるようになると、それは彼らが差別的神経発達と神経修復介入の有効性に影響を与える方法を決定するために有益になります。
このモデルの制限事項は、羊膜内注射からの羊水の損失が含まれています。何の効果は滅菌生理食塩水の羊膜内注射で注目されないが、注射を実行するために使用される針のゲージは非常に重要な要素技術です。ケアは、開腹手術に関連した母ラットで31 G.外科合併症が5％未満の妊産婦死亡率との創傷裂開、腸閉塞、腹膜炎や妊娠の完全な損失を含め、非常に稀であるよりも大きな針を使用しないように注意する必要があります。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
著者らは、開示することは何もありません。
Acknowledgments
著者はダンFirl、クリス・コルベットとジェシーデンソン、博士に感謝しています。資金は、ニューメキシコ大学のLJに、SRにNIH NINDS R01 NS060765によってLJにP30 CoBREパイロットプログラムと子の健康署名プログラムを用意しました。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Saline Solution, 0.9% | Sigma | S8776 | |
| LPS 011B4 | Sigma | L2630 | |
| Evan's Blue Dye | Sigma | E2129 | |
| Surgical gloves | Biogel | 40870 | |
| OR Towels | Cardinal Health | 287000-008 | Sterile |
| PDI Alcohol Prep Pads | Fisherbrand | 06-669-62 | |
| Mini Arco Rechargeable Clippers | Kent Scientific Corp. | CL8787 | |
| Betadine surgical scrub | Purdue Products L.P. | 67618-151-17 | |
| Eye Lubricant | Refresh Lacri Lube | 00023-0312 | |
| Blunt Forceps | Roboz | RS-8100 | |
| Scissors | Roboz | RS-6808 | |
| Surgical Scissors | Roboz | RS-5880 | |
| Surgical Scissors | F.S.T. | 14002-16 | |
| Syringe | BD | 309628 | 1 ml |
| Needle | BD | 305122 | 25G 5/8 |
| Needle | BD | 305128 | 30G 1 |
| Cotton-tipped Applicators | Fisherbrand | 23-400-114 | Small, 6 inch sterile |
| Cotton Gauze Sponge | Fisherbrand | 22-362-178 | |
| Needle Holders | Kent Scientific Corp. | INS600109 | 12.5 CM STR |
| Vessel Clips | Kent Scientific Corp. | INS600120 | 30G Pressure |
| 3-0 Perma Hand Silk Sutures | Ethicon | 1684G | Black braided, 3-0 (2 metric), 18", non-absorbable, PS-1 24 mm needle, 3/8 circle |
| Insulin Syringes | BD | 328438 | 0.3 cc 3 mm 31G |
| Pentobarbital | |||
| Buprenorphine | |||
| Bupivacaine | |||
| Isoflurane | |||
| Lithium Carbonate | Acros Chemicals | 554-13-2 | |
| Superfrost Plus Microscope Slides | VWR | 48311-703 | |
| Hematoxylin | Leica | 3801521 | Surgipath Gill II Hematoxylin |
| Eosin | Leica | 3801601 | Surgipath Eosin |
| Xylenes | Fisherbrand | X3S-4 | Histological Grade |
| Permount | Fisherbrand | SP15-100 | |
| Coverglass | Fisherbrand | 12-548-5P | Fisher Finest Premium Coverglass |
References
- Blencowe, H., et al. Preterm birth associated neurodevelopmental impairment estimates at regional and global levels for 2010. Pediatr Res. 74, Suppl 1. 17-34 (2013).
- Mwaniki, M. K., Atieno, M., Lawn, J. E., Newton, C. R. Long term neurodevelopmental outcomes after intrauterine and neonatal insults a systematic review. Lancet. 379, 445-452 (2012).
- Dammann, O., Leviton, A. Intermittent or sustained systemic inflammation and the preterm brain. Pediatr Res. 75, 376-380 (2014).
- Leviton, A., et al. Microbiologic and histologic characteristics of the extremely preterm infant's placenta predict white matter damage and later cerebral palsy. the ELGAN study Pediatr Res. 67, 95-101 (2010).
- Redline, R. W. Inflammatory responses in the placenta and umbilical cord. Semin Fetal Neonatal Med. 11, 296-301 (2006).
- Lee, J., et al. Chronic chorioamnionitis is the most common placental lesion in late preterm birth. Placenta. 34, 681-689 (2013).
- Lee, S. M., et al. Acute histologic chorioamnionitis is a risk factor for adverse neonatal outcome in late preterm birth after preterm premature rupture of membranes. PloS one. 8, e79941 (2013).
- Pappas, A., et al. Chorioamnionitis and early childhood outcomes among extremely low gestational age neonates. JAMA Peds. 168, 137-147 (2014).
- Gaillard, R., Arends, L. R., Steegers, E. A., Hofman, A., Jaddoe, V. W. Second and third trimester placental hemodynamics and the risks of pregnancy complications the Generation R Study. Am J Epidemiol. 177, 743-754 (2013).
- Trivedi, S., et al. Fetal placental inflammation but not adrenal activation is associated with extreme preterm delivery. Am J Obstet Gynecol. 206, 236 (2012).
- Yanowitz, T. D., et al. Hemodynamic disturbances in premature infants born after chorioamnionitis association with cord blood cytokine concentrations. Pediatr Res. 51, 310-316 (2002).
- Jantzie, L. L., Corbett, C. J., Firl, D. J., Robinson, S. Postnatal Erythropoietin Mitigates Impaired Cerebral Cortical Development Following Subplate Loss from Prenatal Hypoxia Ischemia. Cereb Cortex. , (2014).
- Jantzie, L. L., et al. Erythropoietin attenuates loss of potassium chloride co transporters following prenatal brain injury. Mol Cell Neurosci. 61, 152-162 (2014).
- Jantzie, L. L., Miller, R. H., Robinson, S. Erythropoietin signaling promotes oligodendrocyte development following prenatal systemic hypoxic ischemic brain injury. Pediatric Res. 74, 658-667 (2013).
- Mazur, M., Miller, R. H., Robinson, S. Postnatal erythropoietin treatment mitigates neural cell loss after systemic prenatal hypoxic ischemic injury. J Neurosurg Peds. 6, 206-221 (2010).
- Robinson, S., et al. Developmental changes induced by graded prenatal systemic hypoxic ischemic insults in rats. Neurobiol Dis. 18, 568-581 (2005).
- Delcour, M., et al. Neuroanatomical sensorimotor and cognitive deficits in adult rats with white matter injury following prenatal ischemia. Brain Pathol. 22, 1-16 (2012).
- Delcour, M., et al. Impact of prenatal ischemia on behavior cognitive abilities and neuroanatomy in adult rats with white matter damage. Behav Brain Res. 232, 233-244 (2012).
- Delcour, M., et al. Mild musculoskeletal and locomotor alterations in adult rats with white matter injury following prenatal ischemia. Intl J Devel Neurosci. 29, 593-607 (2011).
- Jantzie, L. L., et al. Complex pattern of interaction between in utero hypoxia ischemia and intra amniotic inflammation disrupts brain development and motor function. J Neuroinflam. 11, 131 (2014).
- Back, S., et al. Selective vulnerability of late oligodendrocyte progenitors to hypoxia ischemia. J Neurosci. 22, 455-463 (2002).
- Jantzie, L. L., et al. Developmental Expression of N Methyl d Aspartate (NMDA) Receptor Subunits in Human White and Gray Matter Potential Mechanism of Increased Vulnerability in the Immature Brain. Cereb Cortex. 25, 482-495 (2015).
- Jantzie, L. L., Robinson, S. Preclinical Models of Encephalopathy of Prematurity. Devel Neurosci. , (2015).
- Workman, A. D., Charvet, C. J., Clancy, B., Darlington, R. B., Finlay, B. L. Modeling transformations of neurodevelopmental sequences across mammalian species. J Neurosci. 33, 7368-7383 (2013).
- Herlenius, E., Lagercrantz, H. Development of neurotransmitter systems during critical periods. Exper Neurol. 190, S8-S21 (2004).
- Kelsom, C., Lu, W. Development and specification of GABAergic cortical interneurons. Cell Biosci. 3, 19 (2013).
- Kinney, H., Back, S. Human oligodendroglial development Relationship to periventricualr leukomalacia. Semin Pediatr Neuro. 5, 180-189 (1998).
- Robinson, S., Li, Q., DeChant, A., Cohen, M. Neonatal loss of gamma amino butyric acid pathway expression after human perinatal brain injury. J Neurosurg Peds. 104, 396-408 (2006).
- Xu, G., et al. Late development of the GABAergic system in the human cerebral cortex and white matter. J Neuropathol Exp Neurol. 70, 841-858 (2011).
- Segovia, K. N., et al. Arrested oligodendrocyte lineage maturation in chronic perinatal white matter injury. Ann Neurol. 63, 520-530 (2008).
- Robinson, S., Li, Q., Dechant, A., Cohen, M. L. Neonatal loss of gamma aminobutyric acid pathway expression after human perinatal brain injury. J Neurosurg. 104, 396-408 (2006).
- Boksa, P. Effects of prenatal infection on brain development and behavior a review of findings from animal models. Brain Behav Immun. 24, 881-897 (2010).
- Burd, I., Brown, A., Gonzalez, J. M., Chai, J., Elovitz, M. A. A mouse model of term chorioamnionitis unraveling causes of adverse neurological outcomes. Repro Sci. 18, 900-907 (2011).
- Bergeron, J. D., et al. White matter injury and autistic like behavior predominantly affecting male rat offspring exposed to group B streptococcal maternal inflammation. Devel Neurosci. 35, 504-515 (2013).
- Uchida, K., et al. Effects of Ureaplasma parvum lipoprotein multiple banded antigen on pregnancy outcome in mice. J Reprod Immunol. 100, 118-127 Forthcoming.
