Introduction
Memeli merkezi sinir sisteminde (MSS) etkili sinir iletim oligodendrositlerin akson myelinizasyonunu gerektirir. Gelişimi sırasında, oligodendrosit gelişmekte olan ön beyin ve nöral tüp 1 ventriküler bölgelerinden göç düşünülen oligodendrosit progenitör hücrelerin (OPC) havuzundan kaynaklanmaktadır. Göç OPC olgun, myelinating oligodendrositlere içine ayırt sonra etkili uyarı iletimini kolaylaştırmak değil, aynı zamanda trofik desteği 2 ile aksonlar sağlamaz sadece. Yetişkin MSS tüm hücrelerin 3 yaklaşık 5-8% oluşan gri ve beyaz cevher boyunca dağılmış OPC bol bir nüfusa tutar. demiyelinizan bir hakaret sonrasında, OPC, yaralanma siteye göç çoğalırlar ve maruz aksonlar kayıp ya da hasarlı miyelin kılıflar yerine ayırt. Ancak, bazı hastalık / yaralanma ayarlarında bu süreç verimsiz olduğu bulunursa veya tamamen 4 başarısız olabilir. SüreKronik demiyelinizasyon belirtileri 5 hafifletmek olabilir hastalığı, verimli oligodendrogenesis ve remiyelinizasyon yükü eklemek için düşünülmektedir. Bu nedenle oligodendrogenesis deneysel faktörlerin etkisini belirlemek için in vitro OPC çalışma ilgi olmuştur.
oligodendrosit farklılaşma farklı evreye Insight sahne spesifik hücre belirteçleri tanımlanması ile mümkün olmuştur. Kendini sürekli yenileyen, erken progenitör hücreler trombosit kaynaklı büyüme faktörü reseptörü alfa onların ifadesi (PDGFRα) tarafından tanımlanan, sinirsel / glia antijen 2 (NG2) ve A2B5 6-8. OPC kendi farklılaşma programlarının başlatmak ve hücre döngüsünün çekilme olarak, bu markerlerin ifadesinin aşağı ve siklik nükleotid 3'-fosfodiesteraz (CNPase) ve O4 içeren oligodendrositlerin premyelinating göstergesidir proteinleri ifade etmek için başlar. Son olarak, daha fazla erişkin oligodendrositlerin, farklılaşmasıytes myelin-ilintili glikoproteinin (MAG), proteolipid protein (PLP) ve miyelin bazik protein (MBP) gibi miyelin ilişkili proteinlerin ekspresyonu ile karakterize edilir. MBP hücre içi bir çevresel zar proteini ve miyelin kılıfının bir ana bileşenidir. MBP eksik Fare MSS miyelinasyon anlamlı titremeler, kasılmalar ve erken ölüm 9,10 giden azalmış olduğu ciddi bir fenotip geliştirmek. Miyelinasyon MBP bu önemli bir rol, in vitro ve in vivo 11 hem de oligodendrosit farklılaşması için bir markör olarak kullanımına yol açmıştır.
MBP miktarının çeşitli yöntemler kullanılarak elde edilebilir. RT-PCR ve Batı boya analizi Farklı tedavi rejimleri altında MBP seviyelerinin ölçümü için izin verir. Immünsitokimya kamera bazlı mikroskopi yaklaşımlar kullanıldığında da nicel olabilir ortak bir nitel bir yaklaşımdır. Bu sistemler güvenilir ve temel rağmenOligodendrosit farklılaşma çalışması, her bir ilaç taramasında, kullanımlarını sınırlayan kendi dezavantajları vardır. İlk olarak, RT-PCR ve Batı boya analizi için gerekli olan primer OPC miktarı eş zamanlı olarak kontrol edilebilir değişken sayısını azaltır. immünsitokimya hücre gereksinimi çok daha düşük olsa da kantitatif hedefi ise, önemli ölçüde zaman her bir deney için ayrılmış olmalıdır. Sayısız görüntüler yakalanır ve daha sonra deneysel analizi kolaylaştırmak için ölçülebilir olmalıdır. Bu uyarılar yüksek verimlilik değerlendirmesi gerektiren çalışmalar için dikkate almak önemli engeller haline gelir. önemli ölçüde gerekli hücrelerin sayısını ve kantitatif analiz tamamlamak için zaman hem azaltırken Burada, immünsitokimya ve miyelin ölçümü için Western Blot metodolojileri hem temel yönlerini kullanan bir yöntem açıklanmaktadır.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Hayvan denekleri Prosedürleri Kurumsal Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi (IACUC) ve Johns Hopkins Tıp Okulu tarafından onaylanmıştır.
Tahlil Tabaklar, Stok Çözümleri ve OPC Taban Medya 1. Hazırlık
Not: Burada anlatılan sıçan OPC taban (Sato) Medya daha önce yayınlanmış çalışmaları 12,13 türetilmiştir. Alternatif medya formülasyonları da bu prosedüre uyumlu olmayabilir.
- Steril deiyonize su içinde 10 ug / ml'lik bir konsantrasyona kadar yeniden süspanse poli-L-lisin (PLL). Pipet siyah duvarlı, şeffaf tabanlı 24 oyuklu doku kültürü dereceli çanak her oyuğuna seyreltildi PLL 400 ul.
- 37 ° C, doku kültürü kuluçka makinesi içinde ya da gece boyunca 4 ° C buzdolabında 2 saat Coat doku kültür tabakları.
- kaplama en az 20 dakika önce kaplanmış yemekleri aspire PLL. bir doku kültüründe kapak kısmen aralık 24 yuvalı plakalar yerleştirilerek kalan PLL kuyudan kurumaya bırakındavlumbaz. kuyular izole OPC kaplama önce tamamen kuru olduğundan emin olun. Hücreler sıvı PLL hediyesi vardır plastik bağlı olmayacaktır.
- N-Asetil-L-sistein (NAC) stok çözeltisi (1,000x) hazırlayın: Dulbecco'nun modifiye edilmiş Eagle ortamı (DMEM) içinde, 20 ml, 100 mg N-asetil-L-sistein (NAC) çözündürülür. -20 ° C'de kısım ve mağaza.
- Hidrokortizon stok solüsyonu (1,000x) hazırlayın: 1 mg hidrokortizon ve çözünmesi için girdap etanol 1 ml ilave edilir. DMEM 19 ml ilave edilir, -20 ° C'de çözelti kısım ve mağaza karıştırın. Taban ortamına hidrokortizon eklenmesi glial hücreler 14 hayatta kalmasını geliştirmek için gösterilmiştir.
- D-Biyotin stok solüsyonu (5,000X) hazırlayın: PBS, 50 ml D-biyotin 2.5 mg eritin. çözülmesine yardımcı olmak için 0.1 N NaOH 1-2 x 5 ul damla ekleyin. -20 ° C'de kısım ve mağaza.
- İnsülin stok solüsyonu (100 X) hazırlanması: Doku kültürü dereceli 50 ml su içinde 25 mg insülin eritin. 250 ul o eklef, 1 N HCl ve çözelti berrak olana kadar karıştırın. 6 haftaya kadar 4 ° C 'de, 0.22 um'lik bir filtreden ve mağaza ile sterilize edin.
- Sato stok solüsyonu (100x) hazırlayın:
- progesteron stok solüsyonu (25 mg / ml) hazırlayın: etanol 100 ul 2.5 mg progesteron eritin.
- sodyum selenit stok solüsyonu (400 ng / | il) hazırlayın: 0.1 N NaOH, 100 ul 4 mg sodyum selenit eritin. DMEM 10 ml ilave et ve karıştır.
- DMEM, 100 ml, insan apo-transferin, 1 g, büyükbaş hayvan serum albümini, 1 g ve putreskin 160 mg edin ve tamamen eritmek için karıştırın. progesteron stok çözeltisi 25 ul, sodyum selenit stok çözeltisi 1.000 ul, ilave et ve karıştır. -20 ° C'de kısım ve mağaza.
- OPC baz ortamla hazırlayın: DMEM, 100 ml (4.5 g / L D-glikoz, L-glutamin ve 110 mg / L sodyum piruvat ile), 100 ul NAC, 100 ul hidrokortizon, 20 ul D-Biotin, 1 ml ilave insülin, 1 ml Sato stok, 100 ul eser elementler B,2 ml B-27 Yedek (50x) ve penisilin / streptomisin (100x) 1 mi. 4 ° C 'de, 0.22 um'lik bir filtreden ve mağaza ile sterilize edin.
- PDGF-AA stok solüsyonu (1,000x) hazırlanması:% 0.1 büyükbaş hayvan serum albümini (BSA) içeren PBS içinde 12.5 ml, 250 ug, 20 ug / ml çözelti yapmak için eritin. -80 ° C'de kısım ve mağaza.
- OPC çoğalma, ortam maddesi hazırlayın: OPC baz ortamı 20 ng / ml PDGF-AA ile takviye edilmiştir.
- OPC farklılaşma medya hazırlayın: 45 nM triiyodotironin ile desteklenmiş OPC baz ortamı.
- Kolon tampon çözeltisi hazırlayın: PBS, 500 mL, 2.5 BSA g ve 2 ml 0.5 M etilendiamin tetraasetik asit (EDTA) ekleyin ve pH'ı 7.2'ye ayarlayın. 4 ° C 'de, 0.22 um'lik bir filtreden ve mağaza ile sterilize edin.
2. Rat Beyin Diseksiyon
Not: P5-P7 sıçan yavrular bu protokol kullanılır. Her sıçan yavru korteks yaklaşık 1.5-2.0 x 10 6 A2B5 pozitif hücreler verir.
- Bir 250 kullanan tüm diseksiyon ekipmanı sterilize6 C ısıtılmış boncuk sterilizatör.
- 50 ml konik tüpler PBS (Ca 2+ ve Mg 2+ olmadan) 15-20 ml ekleyin. Bir 50 ml konik tüp 3-4 sıçan yavru korteks için yeterlidir. buz üzerinde 50 ml konik tüpler yerleştirin. Diseksiyon sırasında doğranmış korteks dokusu tutmak için 50 ml konik tüpler kullanın.
- 10 cm Petri için, soğuk PBS ilave edin. Bu yemeğin ışık mikroskobu altında diseksiyon için kullanılacaktır.
- Büyük cerrahi makas ile kafaları kesilmek suretiyle sıçan yavrular Kurban. % 70 etanol ile baş püskürtün.
- Tüm Beyin Özü
- Kullanarak küçük makas orta hatta aşağı ve geri kulakları ve kabuğu cilt flepleri arkasında cilt kesti. orta hat beyin sapından başlayarak ve göz biten kafatası azaltın. Altta yatan korteks yapısını korumak için çok derinden kesmek için dikkatli olun.
- foramen magnum içine küçük cerrahi makas sokarak beyincik iki yanal kesim aşağı olun. gözlerinin arasında ek bir kesim olun, karıncakoku ampuller erior.
- Dikkatle geri kafatası her yarısını soyun. soğuk PBS ile dolu 10 cm Petri kabındaki tüm beyin ve yer çıkarın.
- Diseksiyon ışık mikroskobu altında, ince cerrahi forseps ile koku ampuller ve beyincik çıkarın.
- ventral yüzeyi ışık mikroskobu altında görünür böylece beyin çevirin.
- Kullanarak ince düz forseps beynin 2/3 hakkında bir derinliğe kadar korteks ve hipotalamus arasındaki kapalı forseps ipuçları koyarak bir künt diseksiyon. forseps yerinde olduğunda biter açmak için izin verir. diğer yarımkürede için tekrarlayın.
- hipotalamus ve beynin bölgelerden korteksi Tease.
- posterior yüzeyinde Ortabeyin tutarak ve beynin ön ucuna doğru sıyırarak hipotalamus, talamus, ve beynin çıkarın. ön bağlantılarını Sever.
- dışarı doğru pealing ve daha sonra onun bağlantısını kesilmesinin hipokampus kaldırince bükülmüş diseksiyon forseps kullanarak korteks.
- ince bükülmüş diseksiyon forseps kullanarak dışa doğru çapraz hareket yatan korteks onu hurdaya kalan striatum çıkarın.
- korteks ventral yüzeyinde herhangi bir kan damarları ve meninks temizleyin.
- dorsal yüzeyi görünür şekilde beyin çevirin. Zar ve kan damarlarının açık olmalıdır. ince diseksiyon forseps kullanılarak altta yatan korteks Peel meninksler. koku alma ampul eki yerden soyulması başlayın.
- Komple 3-4 sıçan yavruların toplam 2.4-2.14 adımları.
- kuru petri içine 3-4 disseke sıçan yavru korteks koyun ve 1 mm x 1 mm parçalar elde edilene kadar steril bir jiletle doğrayın. bir 50 ml konik tüp (adım 2), sonra geri buz üzerinde yeri itibaren PBS ile çanak durulayarak doku toplayın.
3. enzimatik ve mekanik Doku Ayrılma
Not: Bu adım için, bir papain tabanlı sinir ayrışma kiti tavsiye edilir. NE kullanarakural Ayrılma Kit (P), OPC izolasyonu için en uygun olan özel adımlar anlatılmıştır.
- uygun bir tampon ile enzimin P seyreltilmesiyle birinci ayrıştırma enzim hazırlayın. her biri 50 ml konik (1 numune) içeriği enzim karışımı 1.950 ul toplam yeniden süspansiyon haline olacaktır. 10 dakika boyunca 37 ° C banyo enzim karışımı içine koyun.
1 Örnek: papain enzimi Tampon 1900 ul + 50 ul - 3 dakika boyunca 300 xg'de tüm 50 ml 3-4 doğranmış sıçan yavru korteks içeren konik tüpler Spin.
- Süpernatantı aspire ve her numune tüpüne enzim çözeltisi 1.950 ul ekleyin ve tersini tüp ve yavaşça sallayarak pelet parçalayın.
- Sürekli tüp döndürme ile 15 dakika boyunca 37 ° C, doku kültürü inkübatöründe inkübe edin.
- inkübasyon son 5 dakika boyunca, ikinci enzim karışımı A. kendine uygun tampon içinde enzimi seyreltin hazırlamak. 30 ul'lik toplam eklenecektirher biri 50 ml konik örnek tüp.
1 Örnek: enzimin Tampon 20 ul + 10 ul - İnkübasyon tamamlandıktan sonra her tüp ikinci enzim karışımı 30 ul ekleyin ve karıştırın ters.
- Bir pipet kontrolöre bağlı bir cam Pasteur pipet kullanılarak, mekanik 10-15 kez pipetleme ya da doku parçaları boyutu azaltılır ve çözelti bulanık hale gelene kadar doku ayırmak. sürekli dönmesi ile 15 dakika için 37 ° C, doku kültürü kuluçka makinesine örnek dönün.
- 1 ml pipet kullanılarak her bir doku Homojenat örnek 10-15 kez pipetle.
- 200 ul pipet kullanarak her doku Homojenat örnek 15-20 kez Pipet
- sürekli dönmesi ile 10 dakika için 37 ° C, doku kültürü inkübatöründe konusu parçaların dönün.
- 50 m üzerine yerleştirilmiş 40 um gözenekli filtreden Homojenat her bir örneğe (Ca2 + 2 + ve Mg ile birlikte) 10 ml PBS ilave edin ve filtrel tüpü. PBS ilave 1-2 ml filtreyi durulayın.
- bir 50 ml konik tüp içine Homojenat örneklerinin tüm havuz ve genel bir hücre sayımı kazanır.
- hücre sayımı yapıldıktan sonra, (her bir numune için 1 tüp) 15 ml konik tüpler içine eşit Homojenat ayrıldı. 300 x g, 10-12 dakika boyunca santrifüj.
4. Anti-A2B5 tane uygulama, sütun saflaştırma ve Kaplama
- kolon tamponu ve anti-A2B5 microbeads için hesaplamalar gerçekleştirin. Her 1 x 10 6 hücre 7 ul kolon tampon çözeltisi ekleyin. Her 1 x 10 6 hücre için 2 ul anti-A2B5 mikroboncukları ekleyin.
- 10-12 dakika boyunca 300 xg'de kolon tamponu ve santrifüj 10 ml toplam hacmi içinde yeniden süspansiyona alınmasıyla numunelerin tümünü birleştirin.
- Aşama 4.1 hesaplanan kolon tamponu uygun miktarda hücre pelletini. Pelet büyük ve gevşek ise, sadece anti-tutmak için kolon tamponu hacminin yaklaşık yarısını ekleyinHücre tabanda uygun konsantrasyonda vücut.
- 4 ° C'de 10 dakika boyunca bir hücre süspansiyonu inkübe edin.
- (Adım 4.1 hesaplanan), anti-A2B5 mikroboncukları ekleme birkaç kez ters çevirin ve 30-60 dakika boyunca 4 ° C'de inkübe edin. Tüp hafifçe birkaç kez, her 10 dakika ters. Daha uzun inkübasyon süreleri, hücre verimi arttırabilir, ancak spesifik olmayan arttırabilir.
- kolon tamponu 5 hacim ekleyin. Hücreler 1 ml'lik bir hacimde yeniden süspanse edilir ise hücreler, 2 ml içinde tekrar süspanse edilir, sütun tamponu 10 ml ise, kolon tamponu 5 ml.
- 300 x g, 10 dakika boyunca santrifüj.
- arıtma için gerekli olacak kaç LS sütun belirleyin. Bir LS sütun 15-20 x 10 6 toplam hücre için yeterlidir.
- LS kolon başına kolon tamponu 1.000 ul hücre pelletini kullanılır.
- Başbakan kolon tamponu 5 ml ekleyerek her LS sütun. 50 ml konik bir tüp içinde akışını yoluyla toplayın. Sütun met kezffer tamamen üst odanın içinden geçirilmiş olup, her sütun hücre süspansiyonu 1.000 ul uygulanır ve hücreler, yerçekimi ile geçmek için izin verir.
Not: hücre yoğunluğu çok yüksekse, kolon, yavaş çalışabilir. - Hücre süspansiyonu, sütunun içinden geçtikten hemen sonra, yavaş yavaş, bağlanmamış hücreleri yıkamak için her sütun sütun tampon 3 ilave edin. Yıkama kolaylıkla kolonu (her 30-45 saniye için 1 damla) ile çalışıyorsa, kolon tamponu 3 ml ile iki kez yıkanır.
- Her sütun çıkarın ve bir 15 ml konik tüp üzerine yerleştirin. kolon tamponu 5 ml ilave edilir ve sütun ile paketlenir plastik piston kullanarak hızlı bir oranda kolon boyunca tampon dalma. Daldırma sütundan onları bırakmadan bağlı hücreleri çıkarmak olacaktır.
- LS sütun ikinci tur üzerinden örnek çalıştırarak saflığı artırın. ilk geçiş sırasında kullanılan sütunlarının sayısının üçte birini kullanabilirsiniz. Prime kolon tamponu, 5 ml sütunlar.kolon tampon çözeltisi üst odaya geçmesine izin verir.
- Hücre süspansiyonu hacmi daha büyük olacaktır için, eşit her sütun hücre süspansiyonu 1.000 ul uygulamak ve süspansiyon ilave 1.000 ul ilave etme önce kolonun üst bölmesi geçmesine izin verir.
- Hücre süspansiyonu, tamamen sütun ikinci tur uygulandıktan sonra, kolon tamponu 3 ml 2-3 kez yıkayın.
- Her sütunu kaldırmak ve steril 15 ml konik tüp üzerine yerleştirin. kolon tamponu 5 ml ilave edilir ve sütun ile paketlenir plastik piston kullanarak tampon dalma. Daldırma sütundan onları bırakmadan bağlı hücreleri çıkarmak olacaktır.
- 12-15 dakika boyunca 300 xg'de hücre süspansiyonu santrifüj. Pelet kompakt görünmelidir.
- Önceden ısıtılmış OPC proliferasyon ortam (PDGF-AA 20 ng / ml ile takviye edilmiş OPC baz ortamı) 5-10 ml hücre pelletini.
- Bir hemasitometre kullanarak hücreleri saymak. Hücreleri Plate. OPC proliferasyon ortam ile 60.000 hücre / ml hücre seyreltilir. Her siyah içine, açık alt 24 gözlü, kuyunun kenarı boyunca hücrelerin pipet 500 ul kuyu başına 30.000 hücreleri elde etmek. yatay plaka sallayarak bir şekil sekiz hareketi kullanarak hücreleri karıştırın. 48, 96 ya da 384-kuyucuklu plaklar içinde tahlili gerçekleştirmek için, sırasıyla oyuk başına 15,000, 7,500 veya 1,500 hücre ekleyin. Bu sayılar, her bir levha özelliklerine bağlı olarak ayarlanabilir.
- Gün 0 bazal kontrol kültürleri için ayrı bir tabak hazırlayın. Bölüm 5.7 de tarif edildiği gibi farklılaşma 0. günde başlatılır, bu kontrol plakası,% 4 paraformaldehit ile sabitlenmelidir.
- Kültür herhangi bir ortam değişikliği ile, 3 gün boyunca 37 ° C'de OPC proliferasyon ortam hücreler.
% 4 Paraformaldehit OPC Farklılaşmasının ve Fiksasyon 5. İndüksiyon
Not: oligodendrogenesis küçük moleküllerin etkisini test ederken, biz rutin dissolvdimetil sülfoksit (DMSO) içinde E ilaçların daha sonra -80 ° C'de saklanır ve% 0.1 DMSO nihai konsantrasyon elde etmek üzere Sato ortamı doğrudan seyreltilebilinir 1,000x stokları hazırlamak. OPC proliferasyon ve farklılaşma, ya DMSO bu konsantrasyonu kullanılarak herhangi bir değişiklik gözlenmiştir (veriler gösterilmemiştir).
- Pre-sıcak OPC tabanı 37 ° C ortam ve oda sıcaklığına kadar ilaç tedavisi stoklarını Çözülme. nüsha halinde tedavileri yaparken, 1.5 ml tüp içinde tedavi grubu başına medyanın yaklaşık 1.25 ml hazırlamak. üçlü numuneler için, bolluk hesaba 2 ml kapasiteli santrifüj tüpleri kullanın.
- doğrudan OPC baz ortamına tedavi stokları seyreltilmesi ile çoğaltmak kuyuları için tedavi usta karışımları hazırlayın. Kısaca girdap veya hafifçe tedavi homojen dağılımını sağlamak için her MasterMix karıştırın.
- Pozitif kontrol ve negatif kontrol olarak, uygun bir araç olarak 45 nm triiyodotironin (T3) hazırlayın. 10 mM T 3 stokunu1: OPC baz ortam 1 ml 1.000 ve daha sonra, gerekirse nihai DMSO konsantrasyonunu azaltmak için tedavi ana karışımı seyreltin.
- Hücreler kurutulduktan önlemek için her seferinde bir kültür kuyusu, bir tedavi grubu ortamı aspire. Kuyunun yanından ve kültürün içine siyah malzemeyi kazıma önlemek için cam Pasteur pipet ucunda 200 ul pipet ucu kullanın.
- Yavaş yavaş de 1 mL pipet kullanılarak tarafı boyunca işleme master 500 ul ekle.
- 2-3 günde taze tedavi ortamı ile tam bir medya değişimi gerçekleştirirken, istenilen süre için kültürleri kuluçkaya yatmaktadır. Biz rutin farklılaşma medya 4 gün sonra% 30-40 MBP + kültürünü gözlemlemek.
- arzu edilen tedavi döneminin sonunda, taze% 4 paraformaldehit (PFA) hazırlanması ya da oda sıcaklığına kadar dondurulmuş bir stok Çözülme. DİKKAT: PFA son derece toksik ve davlumbaz hazırlanmış olmalıdır.
- medya aspire ve yavaşça 400 eklemek1 'dir; hücrelerin tespit edilmeleri için kuyunun tarafına PFA l. Oda sıcaklığında 20 dakika boyunca inkübasyona bırakılır.
- PFA aspire yavaşça hücreleri yıkamak için de yan steril (Ca + 2 ve Mg + 2), D-PBS 500 ul ekle. yıkayınız iki kez toplam tekrarlayın. Nihai yıkama aspire etmeyin.
- Daha sonra işlem için 4 ° C'de parafilm ve mağaza plaka sarın ve bir sonraki aşamada doğrudan devam edin. Plakalar birkaç hafta muhafaza edilebilir.
Miyelin Temel Protein 6. İmmünositokimya ve Niceleme
Not: 24 yuvalı plakalar içinde sıvı kullanım tekniklerinin, bu hücrelerin kurumasını önlemek için hızlı çalışma için tavsiye edilir. Burada, çok kanallı bir aspiratör ve çok kanallı pipet kullanılması tavsiye edilir.
- % 0.1 Triton X-100 ve% 5 ihtiva eden (Ca + 2 ve Mg + 2), D-PBS 250 ul, oda sıcaklığına kadar plaka getirmek kuyu aspire ve eklemenormal keçi serumu (NGS). yumuşak bir yörünge çalkalanarak 1 saat oda sıcaklığında inkübe plakası.
- 1000 ve tavşan poliklonal anti-aktin antikor, 1: Fare monoklonal anti-MBP antikoru 1 seyreltilmesi ile primer inkübasyon çözeltisi hazırlayın% 5 NGS içeren D-PBS içinde 200 (Ca 2+ ve Mg2 +). Seçenek olarak ise, tavşan poliklonal anti-olig2 ile 1: 1,000 karışık glial kültürlerde oligodendrosit belirli bir normalizasyonu için kullanılabilir. kuyu başına 250 ul karşılamak için yeterli birincil çözüm hazırlayın.
- yumuşak çalkalanması 16-18 saat boyunca 4 ° C 'de primer antikor inkübe edin.
- Birincil inkübasyon çözeltisi aspire ve yumuşak yörünge çalkalama ile oda sıcaklığında (Ca + 2 ve Mg + 2), D-PBS 500 ul hücreleri 3 X 10 dakika yıkama.
- Plaka yıkarken anti-fare 680 ve anti-tavşan antikorları, 800 1 seyreltilerek sekonder inkübasyon solüsyonu hazırlamak: Ca (D-PBS içinde 500 2+ 2+). Bu çözümü hazırlarken ortam ışığı maruziyeti en aza indirmek.
- Nihai yıkama aspire ve ikincil inkübasyon çözeltisi 250 ul ekleyin. ışıktan plaka korumak ve yumuşak yörünge çalkalanarak 1 saat boyunca oda sıcaklığında inkübe edin.
- İkinci inkübasyon çözeltisi aspire ve yumuşak yörünge çalkalama ile oda sıcaklığında (Ca + 2 ve Mg + 2), D-PBS 500 ul Wells 3 x 10 dakika yıkama.
- 700 nm ve 800 nm flüoresans emisyonlarının saptayabilen bir görüntüleme sistemi kullanılarak plaka tarama. Bir başlangıç noktası olarak, MBP için 1.5 ila 3 ve hassasiyetleri, Aktin için 5.0 ve olig2 için 3.5'e ofset fokal ayarlayın. Sinyal maruz kalmaktan kaçınılmalıdır gerektiği gibi hassasiyet değerlerini ayarlayın.
- Yarı otomatik yazılım tabanlı yöntemler kullanılarak oligodendrogenesis düzeyinin nicelleştirilmesidir.
- yazılımı kullanarak, plaka analizi modunu "24 Peki" kurmak ve t etrafında daireler hizayaTaranan kuyu da dış çevresi. "800" ile normalleşme kanalı ayarlamak ve 700 nm (MBP) ve 800 nm (olig2 / Aktin) kanalları için toplam ve bağıl floresan yoğunlukları ihracat.
- bağıl floresan birimlerinde normalize MBP ifade vermek için 800 nm'de yoğunluğu 700 nm'de yoğunluğu bölün. tekrarlanan ölçümlerin ortalamasını hesaplayın ve analiz için gerekli olarak Günü 0 + PDGF denetimlerini ifade ölçek.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
A2B5-pozitif OPC manyetik kolon ayırma sistemi kullanılarak pozitif hücre seçimi ile izole edilir. İzolasyon ^ işleminde önce, tüm beyin P5 ve P7 arasında olan sıçan yavrularından kaldırılır. Tüm beyin başarıyla kafatası ayrılmış sonra, koku ampuller ve beyincik ince cerrahi forseps (Şekil 1A) kullanarak kaldırılır. Serebral kortikal doku izole etmek için hipotalamus, talamus ve orta beyin dikkatli diseksiyon (Şekil 1B) tarafından çıkarılır. Sonraki, hipokampus ve striatum bükülmüş cerrahi forseps (- D Şekil 1C) kullanarak kaldırılır. Izolasyon işlemi verimli meningeal ve fibroblast hücrelerini ortadan kaldırır, ancak zarları ve damar (Şekil 1E) kaldırıldığında enzimatik sindirim artırıldı. Son olarak, 1 mm x 1 mm doku blokları (Şekil takip eden doku ayrıştırma aşamasına hazırlanırure 1F).
İyi bir OPC yalıtım son sıkma aşamasında (Şekil 2A) sonra, kompakt hücre peleti ile sonuçlanmalıdır. Bir kez mikroskobu (Şekil 2B) altında bakıldığında bu kültürlerin hücresel enkaz görece özgür olacak kaplı. Bir optimal yalıtım bağlı hücresel artıklardan, büyük miktarda bulunması için büyük ve kabarık pelet neden olabilir. Bu enkaz PLL kaplı kaba kuvvetle yapışır ve kültür (Şekil 2C) ile etkileşebilir. büyük ve kabarık pelet gerçekleşmesi durumunda, bu 10 ml PBS içinde tekrar süspansiyon hücreleri ve <300 x g, 10 dakika boyunca son bir spin tekrar yardımcı olabilir. yalıtım işlemi tamamlandıktan sonra, kültürler saflığı A2B5-pozitif hücrelerin yüzdesi belirlemek için akış sitometrisi ile tespit edilebilir. Başarılı bir izolasyon A2B5 için>% 95 pozitif hücrelerin bir havuzda sonuçlanacak (Şekil 2D - F). Bir floresan boya-konjüge edilmiş anti-A2B5 antikoru ile boyanan hücreler ile karşılaştırıldığında, boyanmamış hücreler, bir negatif popülasyonu olarak görünür ve yolluk için bir temel referans olarak kullanılabilir. Ayrıca, daha önce 11 immünsitokimya tarafından PDGFRα için pozitif leke A2B5 antijen verimleri kültürleri kullanarak OPC bu seçimi göstermiştir.
Immunositokimya ile gösterildiği gibi, tedavinin başlangıcında (Gün 0) en OPC olig2 + / MBP vardır - hücre olig2 + / MBP + 4. günde (Şekil 3) olarak ifade edilirler. Gün 0 ve 4. günde OPC ve oligodendrosit optimal confluency temsilcisi parlak bir alan görüntüler (Şekil 4A) gösterilmiştir. Gün 0 MBP ifade yokluğu oligodendrogenesis ölçülmesi için bir temel olarak hizmet vermektedir. PDGF-AA çekilmesi sonucu kendiliğinden farklılaşma 45 nM tiroid hormonu ise (triio, bir negatif kontrol olarak hizmetdothyronine; T3) bir pozitif kontrol 11,15 olarak kullanılabilir. Ayrıca Seroquel ve aynı zamanda Tavist şekilde bilinmektedir klemastin, bilinen ketiyapin, in vitro oligodendrogenesis hızlandırmak için gösterilmiştir ve ek pozitif kontroller 16,17 olarak kullanılabilen ilaçlar FDA onayı almıştır. Şekil 4B, bir Örnek, iki kanal kızılötesi gösterir üçlü olarak bu koşullar her biri için beklenen sonuçları gösteren floresan tarama. son derece farklılaşmış kültürler birleştirilmiş görüntülerde sarı görünmesini sağlayacak şekilde aktin ve MBP sinyaller sırasıyla yeşil ve kırmızı yalancı bulundu. Sonuçlar PDGF çekilme durumunda 4. günde MBP ifade olduğunu göstermektedir 4.5 ± 1.4 kat MBP kat değişiklikler ise tiroid hormonu, ketiapin ve klemastin ile tedaviye, Gün 0 ile karşılaştırıldığında yüksek bulundu 33,9 ± 4,1, 33,4 ± 1,0 ve 32.8 ± 0.5 (Şekil 4C). tahlil sağlamlığı ve doğruluğu sm tarafından gösterilmektedirüçlü numuneler ve yaklaşık 20 standart sapmalar PDGF çekilme kontrolü üzerinde büyük tedavi aktivasyon penceresinde arasındaki tüm standart sapmaları.
Aktin oligodendrosit kültürleri normalizasyon için güvenilir bir referans gen olarak hizmet ederken alternatif bir referans genler de kullanılabilir. Olig2 kurucu oligodendrosit türünden hücreleri olarak ifade edilen bir nükleer transkripsiyon faktörüdür. Spesifik ve konstitütif ekspresyon paterni ve böylece heterojen bir kültür durumlarında daha çok tercih edilen normalleştirme strateji sağlayabilir. Şekil 5, ya kullanıldığında 10 nM tiroid hormonu ile ayırt OPC kültürlerinde PDGF çekilmesi MBP sentezleme nisbetle hesaplanan kat değişimi aynı olduğunu göstermektedir normalleşmesi için olig2 veya Aktin. Bu deneyde OPC kültürleri çok saf olması nedeniyle muhtemelen, her iki protein normalleşmesi için güvenilir kullanılabilir. Ancak, often Gün 4 tarafından olig2-negatif hücrelerin küçük bir nüfusa gözlemlemek, ancak olig2 pozitif nüfusa bu nüfusun oranı önemli ölçüde PDGF çekilmesi ve T3 tedavi grubu arasında farklılık görünmüyor. Böylece, kat değişiklikler etkilenmez. Tedavi olig2-negatif hücre tiplerinin çoğalması neden olabilecek bir senaryo, normalizasyon antikorun seçimi dikkate alınmalıdır.
Şekil 1:.. Sıçan beyin diseksiyon prosedürü diseksiyonu prosedürü Basamaklı açıklaması bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayınız.
Şekil 2: İzole Flow sitometri analiziOPC. (A) bir manyetik sütun saflaştırma işleminden sonra, bağlanan hücre popülasyonu sütunun üzerinden daldırılıp kompakt pelet oluşturulması için santrifüjlenir. kalıntı miktarı, pelet boyutuna ile gösterilir. Pelet kompakt ise (B), daha sonra enkaz kültüründe az olacaktır. (C) büyük ve kabarık pelet genellikle ağır kalıntıları ile bir kültür elde edilir. Kültür saflığı APC konjuge bir sıçan anti-fare A2B5 antikoru kullanılarak akış sitometrisi ile tespit edilir. İleri saçılma ve yan saçılım gösterilen (D) ölü hücreler ve döküntüler, analize dahil edilmiştir. (E) A2B5 pozitif popülasyon gating için bir temel referans olarak örneklenmiş lekelenmemiş kullanılarak belirlenebilir. (F) Başarıyla izole OPC A2B5 için>% 95 pozitif olmalıdır. Vie için tıklayınızBu rakamın wa daha büyük bir versiyonu.
Şekil 3:. OPC kültürü ve farklılaşma prosedürü çift kızılötesi floresan tarama (DIFS) tahlil PLL kaplı kültür damarlarının (Gün 3) üzerine kaplanmış taze isolatedA2B5 pozitif sıçan OPC ile başlar. Bu kültürler, 20 ng / ml PDGF-AA varlığında 3 gün boyunca artış gösterdi ve daha sonra tam olarak 2. gün doldurulan 0. günde tedavi ortamı taze PDGF-içermeyen ortam içinde deney faktörleri ile muamele edilmiş ve hücreler sabitlenir edilir olig2 (yeşil) ve MBP (kırmızı) için 4. Gün immünsitokimya% 4 paraformaldehid nükleer karşı leke olarak DAPI (mavi) ile Gün 0 ve Gün 4 temsili kültürler üzerinde gerçekleştirildi. Bu kültürler olgun oligodendrosit işaretleyici için boyama ise MBP sadece ev olduğunu Gün 0 ve 4 tava oligodendrosit soy hücre işaretleyici olig2 için kurucu boyama sergilemekGün 4. tarafından ident bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayınız.
Şekil 4: Çift kızılötesi floresan tarama (DIFS) testi kullanılarak MBP ölçümü (A) optimum deney performansı için gerekli Gün 0 OPC kültürlerin yoğunluğu ve Gün 4.. (B) Temsilcisi çift kızılötesi floresan tarar. OPC 45 nM T3, 1 uM ketiapin, 1 uM klemastin, ya da üç kopya içinde% 0.1 DMSO'nun varlığında 4 gün boyunca 24 yuvalı plakalar içinde farklılaştırılmıştır. 0. günde (+ PDGF) üzerine sabitlendi OPC içeren ayrı bir plaka paralel işlenmiştir. Aktin (yeşil yalancı) ve MBP (kırmızı yalancı) aynı anda 700 nm ve 800 nm emisyon algılamak için ayarlanmış bir Licor Odyssey tarayıcı kullanılarak ölçüldü. (
Şekil 5: olig2 oligodendrositler MBP ifade normalleştirilmesi için güvenilir bir referans protein OPC 4 gün boyunca 24 yuvalı plakalar içinde 10 nM T3 ya da% 0.1 DMSO araç kontrolü mevcudiyetinde üç kopya halinde farklılaştırılmıştır.. Çift kızılötesi fluoresans tarama tahlili normalizasyonu için bir anti-olig2 ya da anti-Aktin primer antikorlar kullanılarak yapıldı. Olig2 / Aktin ve MBP aynı anda 700 nm ve 800 nm emisyon algılamak için ayarlanmış bir Licor Odyssey tarayıcı kullanılarak ölçüldü. MBP ifade hayır olduOlig2 ya da aktin ekspresyonu birine rmalized ve sonuçlar,% 0.1 DMSO kontrolü için hesaplandı. Ortalama ± SD nispi floresan üniteleri 6. Sonuçlar iki referans proteinlerin birine normalleştirilmesi zaman hesaplanan kat-değişim aynı olduğunu gösteriyor GraphPad Prism kullanılarak çizilmiştir.
Şekil 6:. Triton X-100 MBP boyama üzerindeki etkisini OPC 45 nM T3 ya da% 0.1 DMSO mevcudiyetinde, 4 gün boyunca 24 yuvalı plakalar içinde farklılaştırılmıştır. Kültürler, daha sonra% 4 PFA ile sabitlenmiş ve olig2 ve MBP iki farklı immünositokimya protokolleri kullanılarak boyandı. Yüksek Triton X-100 örnek için, hücreler% 0.4 Triton X -100 ile 1 saat boyunca geçirgen ve tüm antikor inkübasyon adımları% 0.1 Triton X-100 varlığında yapıldı. Düşük Triton X-100 örnek için, hücreler% 0.1 Triton X-100, ise Antibo ile 1 saat süre ile geçirgenleştirilmiştirdy kuluçkalamalar Triton X-100 olmadan gerçekleştirilmiştir. Olig2 ve MBP floresan boya-konjuge sekonder ve görüntüleri kamera tabanlı floresan mikroskop kullanılarak elde edildi ile görüntülenmiştir. Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Burada sunulan protokol sıçan OPC izole edilmesi ve deney faktörlere yanıt olarak in vitro oligodendrogenesis olarak ölçülmesi için hızlı ve güvenilir bir yöntem tarif eder. Pozitif bir seçim kullanarak, canlı ve saf OPC yüksek verimi deneysel amaçlar için doğrudan kullanılır. Bu yöntem, bir 1 haftalık bir zaman çerçevesi içinde izolasyon, kültürlenmesini, ve farklılaşma adımları kolaylaştırır ve sabit hücreler uygun bir deney, hassasiyet kaybı olmaksızın birkaç hafta boyunca 4 ° C'de saklanabilir.
Tarayıcı tabanlı floresan testleri ile önemli bir avantajı veri toplama ve analiz ölçüde geleneksel kamera tabanlı mikroskopi teknikleri karşı hızlandırılmış olmasıdır. mikroskopi OPC farklılaşma indükleyicileri tanımlamak için yüksek verimli ekranlarında başarıyla kullanılmaktadır rağmen inci yüzlerce görüntü yakalama dizilerinin programlama, veri toplama birkaç saat, analiz gerektirir, çünkü veri toplama doğal yavaşgörüntü dosyaları ve kullanıcı tanımlı algoritmalar ousands normalleştirme veya analiz 18,19 bireysel hücre gövdeleri ayırt etmek. Ayrıca, kamera esaslı mikroskobu sistemleriyle kültürün kabın tüm yüzeyi veri elde etmek mümkün değildir. Bunun yerine, temsili görüntüler pozisyonel önyargı ve yanlış pozitif hit yol açabilir tek bir kuyunun içinde farklı alanlarda, yakalanan gerekir. Bu kıyasla, bu tahlil, bir de verilen içindeki tüm hücrelerden MBP ekspresyonunu tespit eder ve birden fazla levha aynı anda taranabilir. Bu yöntem, 96 gözlü veya 384 oyuklu formatta kullanım için adapte edilebilir olsa da, daha az tedaviyle analiz edilirken, 24 oyuklu plaka tercih edilebilir. Biz nedeniyle sıvı taşıma için 24 plaka hücre kaybı daha yüksek verim deneyleri tasarlarken dikkate alınması gereken bir komplikasyon olan en aza indirecek gözlemledim.
differenti zaman testin kritik parametre hücrelerinin yoğunluğutirme çok az hücreler ile 0. Kültürler yüksek yoğunluklu kültürler kendiliğinden farklılaşma sergi ise, daha yavaş farklılaştırmak ve ölmeye görünen Gününde başlatılır. Her iki durumda da tahlilinin dinamik aralığını ve güvenilirliğini azaltır. hücre sağlığı ve hücre yoğunluğu arasında optimal dengeyi sağlamak için, biz kültür taze PDGF-AA medya değişimi veya takviyesi olmadan 3 gün boyunca OPC. Bu hücre katabolizma sonucu in vitro (Gün 0) Gün 3 göre ortam düşüşler PDGF-AA konsantrasyonu için, hücrelerin çoğalma hızı, çoğalmasının PDGF ilk gün boyunca indirgenir yavaş olacağı hipotezi AA çekilme. Hücreler eşit kaplama sırasında dağıtılır Bu teknik en iyi şekilde çalışır. Kuyunun tarafındaki hücrelerini pipetle ve eşit dağılımını teşvik etmelidir bir rakam sekiz hareketi ile karıştırılması. Kuyunun merkezi haline Pipetleme birkaç iyi kenarlarında hücre kümeleri üretmek eğilimindedirmerkeze bağlı kalarak er hücreleri. Bu olgu nedeniyle sıvı pipet güçleri tarafından taze kurutulmuş PLL tabakasının bozulmasına olabilir. çevresinde hücrelerin birikmesi nedeniyle yoğunluk bağımlı farklılaşma tahlil duyarlılığını azaltabilir. Aktin / olig2 sinyalinin yoğunluğunda önemli bir fark, ilaç ile tedavi edilen ve kontrol PDGF çekme kültürler arasında meydana dikkat etmek önemlidir. Önemli ölçüde önemli bir artış Aktin / olig2 sinyal ilaca bağlı çoğalmasını gösterebilir, oysa ilaç toksisitesini gösterebilir Aktin / olig2 sinyalini azalmıştır. Biz normalde PDGF çekilme kontrollerle karşılaştırıldığında yanlısı farklılaşma ilaçlarla tedavi hücrelerden biraz daha yüksek Aktin / olig2 sinyalini gözlemleyin. Biz 4 gün farklılaşma prosedürü üzerinde PDGF çekilme grubunda spontan apoptoz daha yüksek bir oranı bu farklılığı bağlıyor. oligodendrogenesis, Aktin MBP normalleşmesini değerlendirirken / olig2 hücre sayısı farklılıkları düzeltmek gerekir. TOXI değerlendirmekŞehir ve deney kullanılarak proliferasyon, bir anti-MBP antikoru, uygun belirteçler karşı primer antikorlar için değiştirilebilir.
Deneyler hem nicel hem de nitel bir değerlendirme gerektirir, bu sabit sıçan oligodendrosit kültürlerinin maruziyet sınır önemlidir Triton X-100 hücreleri gidermek için% 4 PFA kullanarak. tipik olarak bir antikor epitopunu erişilebilirliği arttırmak için antikor inkübasyon adımları sırasında hem Triton X-100 bulunmaktadır oligodendrosit kültürleri için diğer immünsitokimya protokolleri, deney koşullarına bağlı olarak başarılı bir şekilde kullanılabilirler. MBP hücre içi bir proteini olduğu, ancak, diğer taraftan, alternatif tespit yöntemleri yeterli hücreleri geçirgenliği olduğu kullanıldığında tamamen halinde Triton X-100 dahil etmek de mümkün olabilir. Burada tarif edilen koşullar kullanılarak, Triton X-100 oligodendrosit gözlemlenen morfolojiye de MBP boyama lokalizasyonunu etkilediği gözlenmiştiryüksek konsantrasyonlarda kullanıldığında. Triton X-100 antikor inkübasyon adımlar ihmal edildiğinde Biz antikor boyama önemli bir düşüş görmüyorum. Antikor inkübasyon sırasında% 0.4 Triton X-100 geçirgenliği ve engelleme adımında, ve% 0.1 Triton X-100 de dahil olmak üzere, Şekil 6'da gösterildiği gibi, süreksiz MBP boyama miyelin işlemleri ve sonuçlarının saptanmasını azaltır. Bu nedenle, niceliksel ve niteliksel değerlendirme için, burada tarif edildiği gibi, Triton X-100'ün daha düşük bir konsantrasyonda kullanılması yeterli olabilir.
sıçanlardan A2B5 seçilmiş OPC kullanılması avantajlı olabilir, fare başına hücre verimi tipik olarak fazla, ancak biz, C57BL / 6 farelerinden alınan A2B5 seçilmiş OPC kullanılarak çift kızıl ötesi floresan taraması (DIFS) deneyinde benzer sonuçlar gözlenmiştir düşük (veriler gösterilmemiştir). OPC saflaştırılması için başka protokoller de bu tahlil ile uyumlu olabilir. Örneğin, oligodendrosit markör O4 int saflaştırmak için bir antijen olarak da kullanılabilirManyetik boncuklar 20 ile ermediate aşaması oligodendrosit ön. Manyetik tabanlı yöntemlere bir alternatif olarak, OPC yüksek hızlı yörünge sallayarak ve diferansiyel yapışma yöntemleri 21 ile astrositler ve mikroglia içeren 9 günlük karışık glial kültürlerden zenginleştirilmiş olabilir. Ayrıca, bağışıklık kaydırma kültür saflığı yüksek hücre verimleri 22 tercih edilir ise hem negatif ve pozitif hücre seçimi kullanılabilir dahil prosedürleri. terapötikler doğrudan saf kültürlerde OPC farklılaşmasını arttırmak nasıl incelenmesi ek olarak, bir eş-kültür sistemine diğer hücre tipleri arasında ilaçların dolaylı etkileri dikkate bazen gereklidir. MS'de, merkezi sinir sistemi içine otoreaktif T efektör hücrelerin infiltrasyonu, hastalığın ilerlemesine 23 bir rol oynadığı düşünülmektedir. Efektör T hücreleri demiyelinizasyon bölgelerinde OPC farklılaşmasını inhibe pro-enflamatuar faktörler salgılar olabilir. Bu nedenle Thera tespit etmek ilgi çekicidirOPC korumak ve yaralanma exacerbating bu pro-enflamatuar faktörler engelleyebilir Therapeutics. DIFS tahlil T hücreleri süspansiyonda büyür ve uzak oligodendrosit kültüründen önce MBP niceliği yıkanabilir olarak bu etkinliği modellemek için ideal olabilir. Bu nöronlar, astrositler ve mikroglia olarak yapışmış olan hücrelerin içeren ko-kültür çalışmaları için, olig2 normalleşme özellikle oligodendrositler veri toplamak için kullanılabilir. Böylece, DIFS testinin esnekliği deneysel tasarımlar çeşitli kolaylaştırabilir.
Sonuç olarak, bu protokol in vitro A2B5-pozitif sıçan OPC ve oligodendrogenesis ölçmek için hızlı ve güvenilir bir yöntem sağlar. Bu izolasyon yöntemi sürekli kurulmuş farklılaşma ipuçlarına duyarlı canlı OPC yüksek verim sağlar. Hassas analizi ma bu sistemin kullanımını uzanan deneysel paradigmalar çeşitli kullanılarak çoklu gözlü filtre kaplarda yapılabilirny farklı uygulamalar. Ayrıca, DIFS deney yüksek verimli ilaç taraması için adapte edilebilir veya bu nicel PCR ve Batı lekesi gibi düşük verimli tahlillerin sonuçları doğrulamak için kullanılabilir. Önemli olarak, bu sistem, örneğin, multipl skleroz gibi demiyelinizan hastalıklar OPC hedeflenen terapilerin belirlenmesi için basit ama etkili bir yol sunabilir.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Yazarlar ifşa hiçbir şey yok.
Acknowledgments
; Ulusal Sağlık Enstitüleri: sponsor Grant Hibe numarası: R37 NS041435.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Dissection Materials | |||
| PBS without Ca2+ and Mg2+ | Mediatech | 21-040-CV | 1x |
| 10 cm Polystyrene Petri Dishes | Fisherbrand | 0857512 | |
| Light Dissection Microscope | Motic | SM2-168 | |
| Dissociation Materials | |||
| Tube Rotator | Miltenyi Biotec | 130-090-753 | Dissociation Tube Rotator |
| Neural Tissue Dissociation Kit (P) | Miltenyi Biotec | 130-092-628 | Enzymatic Dissociation Kit |
| PBS with Ca2+ and Mg2+ | Corning | 20-030-CV | 1x |
| 40 μm Cell Strainer | Corning | 352340 | |
| A2B5 Column Purification | |||
| Anti-A2B5 Microbeads | Miltenyi Biotec | 130-097-864 | Bead Bound A2B5 Antibody |
| LS Columns | Miltenyi Biotec | 130-042-401 | Magnetic Selection Columns |
| EDTA | Corning | 46-034-Cl | 2 mM |
| PBS with Ca2+ and Mg2+ | Corning | 20-030-CV | 1x |
| Bovine Serum Albumin | Sigma-Aldrich | A9647 | 0.50% |
| Culture Materials | |||
| PDGF-AA | PeproTech Inc | 100-13A | 20 ng/ml |
| Dimethyl sulfoxide | Sigma-Aldrich | D2650 | Hybri-Max 100 ml |
| Triiodothyronine | Sigma-Aldrich | T6397 | 45 nM |
| Clemastine fumarate salt | Sigma-Aldrich | SML0445-100MG | 1 μM |
| Quetiapine hemifumarate salt | Sigma-Aldrich | Q3638-10MG | 1 μM |
| N-acetyl cysteine | Sigma-Aldrich | A9165 | 5 μg/ml |
| Progesterone | Sigma-Aldrich | P8783 | 60 ng/ml |
| Poly-L-lysine | Sigma-Aldrich | P1524 | 10 μg/ml |
| Putrecine | Sigma-Aldrich | P7505 | 16 μg/ml |
| Sodium Selenite | Sigma-Aldrich | S5261 | 40 ng/ml |
| Hydrocortisone | Sigma-Aldrich | H0135 | 50 ng/ml |
| d-Biotin | Sigma-Aldrich | B4639 | 10 ng/ml |
| Insulin | Sigma-Aldrich | I6634 | 5 μg/ml |
| Apo-Transferrin | Sigma-Aldrich | T1147 | 100 μg/ml |
| Bovine Serum Albumin | Sigma-Aldrich | A4161 | 100 μg/ml |
| Trace Elements B | Corning | 25-022-Cl | 1x |
| B-27 Supplement | Life Technologies | 17504044 | 1x |
| Penicillin/Streptomycin | Life Technologies | 15140122 | 1x |
| DMEM | Life Technologies | 11995-065 | 1x |
| 24-well Black Visiplate with lid | Perkin Elmer | 1450-605 | Tissue culture grade |
| Immunocytochemistry and Quantification | |||
| PFA | Sigma-Aldrich | 100-13A | 4% |
| Triton X-100 | Sigma-Aldrich | 78787 | 0.10% |
| Normal Goat Serum | Jackson Immuno Research | 005-000-121 | 5% |
| mouse monoclonal anti-MBP | Biolegend | SMI-99P | 1:1,000 Dilution |
| rabbit polyclonal anti-Actin | Santa Cruz Biotecnology | SC-7210 | 1:200 Dilution |
| rabbit polyclonal anti-Olig2 | Millipore | AB9610 | 1:1,000 Dilution |
| goat anti-mouse 680RD | Licor | 926-68070 | 1:500 Dilution |
| goat anti-rabbit 800CW | Licor | 926-32211 | 1:500 Dilution |
| Alexa Fluor 594 goat anti-mouse | Life Technologies | A11032 | 1:1,000 dilution |
| Alexa Fluor 488 goat anti-rabbit | Life Technologies | A11008 | 1:1,000 dilution |
| Prolong Gold antifade with DAPI | Life Technologies | P36931 | |
| DPBS with Ca2+ and Mg2+ | Corning | 21-030-CV | |
| Licor Odyssey Clx Infared Imaging System | Licor |
References
- Rowitch, D. H., Kriegstein, A. R. Developmental genetics of vertebrate glial-cell specification. Nature. 468 (7321), 214-222 (2010).
- Nave, K. A. Myelination and the trophic support of long axons. Nat Rev Neurosci. 11 (4), 275-283 (2010).
- Dawson, M. R. L., Polito, A., Levine, J. M., Reynolds, R. NG2-expressing glial progenitor cells: an abundant and widespread population of cycling cells in the adult rat CNS. Mol Cell Neurosci. 24 (2), 476-488 (2003).
- Goldschmidt, T., Antel, J., König, F. B., Brück, W., Kuhlmann, T. Remyelination capacity of the MS brain decreases with disease chronicity. Neurology. 72 (22), 1914-1921 (2009).
- Duncan, I. D., Brower, A., Kondo, Y., Curlee, J. F., Schultz, R. D. Extensive remyelination of the CNS leads to functional recovery. Proc Natl Acad Sci USA. 106 (16), 6832-6836 (2009).
- Nishiyama, A., Chang, A., Trapp, B. D. NG2+ glial cells: a novel glial cell population in the adult brain. J Neuropath Exp Neur. 58 (11), 1113-1124 (1999).
- Baracskay, K. L., Kidd, G. J., Miller, R. H., Trapp, B. D. NG2-positive cells generate A2B5-positive oligodendrocyte precursor cells. Glia. 55 (10), 1001-1010 (2007).
- Ffrench-Constant, C., Raff, M. C. Proliferating bipotential glial progenitor cells in adult rat optic nerve. Nature. 319 (6053), 499-502 (1986).
- Popko, B., et al. Myelin deficient mice: expression of myelin basic protein and generation of mice with varying levels of myelin. Cell. 48 (4), 713-721 (1987).
- Bourre, J. M., et al. Density profile and basic protein measurements in the myelin range of particulate material from normal developing mouse brain and from neurological mutants (Jimpy; quaking; Trembler; shiverer and its mld allele) obtained by zonal centrifugation. J Neurochem. 35 (2), 458-464 (1980).
- Baxi, E. G., et al. A selective thyroid hormone β receptor agonist enhances human and rodent oligodendrocyte differentiation. Glia. 62 (9), 1513-1529 (2014).
- Watkins, T. A., Emery, B., Mulinyawe, S., Barres, B. A. Distinct stages of myelination regulated by gamma-secretase and astrocytes in a rapidly myelinating CNS coculture system. Neuron. 60 (4), 555-569 (2008).
- Chen, Y., et al. Isolation and culture of rat and mouse oligodendrocyte precursor cells. Nat Protoc. 2 (5), 1044-1051 (2007).
- Warringa, R. A., et al. Hydrocortisone stimulates the development of oligodendrocytes in primary glial cultures and affects glucose metabolism and lipid synthesis in these cultures. Brain Res. 431 (1), 79-86 (1987).
- Tosic, M., Torch, S., Comte, V., Dolivo, M., Honegger, P., Matthieu, J. M. Triiodothyronine has diverse and multiple stimulating effects on expression of the major myelin protein genes. J Neurochem. 59 (5), 1770-1777 (1992).
- Xiao, L., et al. Quetiapine facilitates oligodendrocyte development and prevents mice from myelin breakdown and behavioral changes. Mol Psychiatry. 13 (7), 697-708 (2008).
- Mei, F., et al. Micropillar arrays as a high-throughput screening platform for therapeutics in multiple sclerosis. Nat Med. 20 (8), 954-960 (2014).
- Deshmukh, V. A., et al. A regenerative approach to the treatment of multiple sclerosis. Nature. 502 (7471), 327-332 (2013).
- Najm, F. J., et al. Drug-based modulation of endogenous stem cells promotes functional remyelination in vivo. Nature. 522 (7555), 216-220 (2015).
- Zhang, S. C. Defining glial cells during CNS development. Nat Rev Neurosci. 2 (11), 840-843 (2001).
- O'Meara, R. W., Ryan, S. D., Colognato, H., Kothary, R. Derivation of enriched oligodendrocyte cultures and oligodendrocyte/neuron myelinating co-cultures from post-natal murine tissues. J Vis Exp. (54), (2011).
- Dugas, J. C., Emery, B. Purification of oligodendrocyte precursor cells from rat cortices by immunopanning. Cold Spring Harb Protoc. 2013 (8), 745-758 (2013).
- Fletcher, J. M., Lalor, S. J., Sweeney, C. M., Tubridy, N., Mills, K. H. G. T cells in multiple sclerosis and experimental autoimmune encephalomyelitis. Clin Exp Immunol. 162 (1), 1-11 (2010).
