Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Engineering

إنشاء 50 نيوتن متر الفرعية علم الموائع النانوي المفارق في PDMS ميكروفلويديك رقاقة عن طريق عملية التجميع الذاتي من الغروية الجسيمات

Published: March 13, 2016 doi: 10.3791/54145

Abstract

ثنائي ميثيل بولي سيلوكسان (PDMS) هي مواد البناء السائدة لجعل أجهزة ميكروفلويديك نظرا لسهولة صب والترابط وكذلك شفافيتها. بسبب ليونة من المواد PDMS، ومع ذلك، فإنه يشكل تحديا لاستخدام PDMS لبناء nanochannels. القنوات تميل إلى الانهيار بسهولة خلال الترابط البلازما. في هذه الورقة، نقدم طريقة التجميع الذاتي يحركها تبخر النانوية السيليكا الغروية إلى إنشاء تقاطعات علم الموائع النانوي مع الفرعي 50 نانومتر المسام بين اثنين microchannels. حجم المسام وكذلك تهمة سطح تقاطع علم الموائع النانوي هو الانضباطي ببساطة عن طريق تغيير الغروية السيليكا حبة حجم والسطحية functionalization خارج الجهاز ميكروفلويديك تجميعها في قارورة قبل عملية التجميع الذاتي. باستخدام التجميع الذاتي للجزيئات النانوية مع حجم حبة من 300 نانومتر و 500 نانومتر، و 900 نانومتر، وكان من الممكن أن يصنع غشاء مسامي مع حجم المسام من ~ 45 نانومتر، ~ 75 نانومتر، و~ 135 نانومتر، على التوالي. تحت الكهربائيةآل المحتملة، وهذا nanoporous غشاء بدأ تركيز أيون الاستقطاب (ICP) بصفتها غشاء الموجبة انتقائي للتركيز الحمض النووي التي كتبها ~ 1700 مرات في غضون 15 دقيقة. تفتح هذه العملية nanofabrication غير معدني يصل فرصة جديدة لبناء تقاطع علم الموائع النانوي الانضباطي لدراسة عمليات النقل النانو الأيونات والجزيئات داخل شريحة ميكروفلويديك PDMS.

Introduction

علم الموائع النانوي هو المجال الناشئ البحوث μ TAS (مايكرو إجمالي تحليل النظم) لدراسة العمليات البيولوجية أو الظواهر نقل الأيونات والجزيئات في نطاق طول 10 يناير - 10 فبراير نانومتر. مع ظهور أدوات علم الموائع النانوي مثل nanochannels، يمكن رصد عمليات نقل الجزيئات والأيونات بدقة لم يسبق لها مثيل والتلاعب بها، إذا لزم الأمر، من خلال استغلال الميزات التي لا تتوفر إلا في هذا النطاق طول لفصل وكشف 1،2 أحد هذه الميزات النانو مميزة هي نسبة عالية من السطح إلى المسؤول الأكبر (أو عدد Dukhin) في nanochannels التي يمكن أن تسبب خلل الاتهام وبدء الاستقطاب تركيز أيون (ICP) بين نانوية ومتناهية 3

منصة جهاز مشتركة لدراسة الظواهر علم الموائع النانوي يتكون من نظام ثنائي متناهية متصلة بواسطة مجموعة من nanochannels بمثابة مفترق 4-6 7 ومع ذلك، تصنيع الجهاز السيليكون يتطلب أقنعة مكلفة وكمية كبيرة من المعالجة في منشأة غرف الأبحاث. 8- 10 نظرا لسهولة تصنيع الجهاز من خلال (PDMS) الصب، وارتباط البلازما، ثنائي ميثيل بولي سيلوكسان تمت على نطاق واسع تم قبول كمادة بناء لعلى microfluidics وسيكون مثاليا للمادة علم الموائع النانوي كذلك. ومع ذلك، معامل منخفضة يونغ لها في جميع أنحاء 360-870 الجيش الشعبي الكوري، يجعل قناة PDMS للطي بسهولة خلال الترابط البلازما. الحد الأدنى لنسبة أبعاد نانوية (العرض إلى العمق) يجب أن تكون أقل من 10: 1 وهذا يعني أن تصنيع الأجهزة PDMS عبر ضوئيه القياسية ستصبح صعبة للغاية إذا كان عمق نانوية يجب أن يكون أقل من 100 نانومتر، والتي تتطلب عرض القناة أقل من الحد الحالي من photolithography في حوالي 1 ميكرون. للتغلب على هذا القيد، وكانت هناك محاولات لخلق nanochannels في PDMS باستخدام أساليب غير الزخرفية مثل تمتد إلى الشروع في الشقوق مع عمق متوسط ​​من 78 نانومتر 11 أو لتشكيل التجاعيد بعد العلاج البلازما 12 تنهار قناة PDMS مع الضغط الميكانيكي سمحت ارتفاع نانوية منخفضة تصل إلى 60 نانومتر. 13

على الرغم من أن هذه الأساليب المبتكرة للغاية غير معدني سمحت nanochannels بناء أقل من 100 نانومتر في العمق، والتحكم الأبعاد للتصنيع نانوية لا يزال يشكل عقبة أمام قبول واسع من PDMS كمادة بناء لأجهزة علم الموائع النانوي. مشكلة خطيرة أخرى من nanochannels، سواء في السيليكون أو PDMS، هو functionalization السطح في حالة وجود حاجة لتغيير تهمة السطحية على الجدار قناة للتلاعب من الأيونات أو الجزيئات. بعد تجميع الجهاز من خلال الترابط، وnanochannels من الصعب للغايةوصول إلى functionalization السطح بسبب نقل محدودة الانتشار. لإنشاء قناة النانو مع الإخلاص الأبعاد عالية وfunctionalization سطح سطحي، وطريقة التجميع الذاتي للجزيئات الغروية الناجم عن تبخر 14-16 في أجهزة ميكروفلويديك يمكن أن يكون واحدا من النهج الواعدة. بالإضافة إلى إمكانية التحكم في حجم المسام والممتلكات السطح، بل هناك إمكانية لضبط حجم المسام في الموقع عند استخدام الجسيمات الغروية المغلفة مع polyelectrolytes عن طريق التحكم في درجة الحرارة، درجة الحموضة 17، 18،19 والقوة الأيونية. 18 وبسبب هذه تطبيقات من المزايا، وطريقة التجميع الذاتي للجزيئات الغروية قد وجدت بالفعل لاستشراب كهربي، 20 أجهزة الاستشعار، وتركيز البروتين 21 22 و الفصل بين البروتينات والحمض النووي في على microfluidics. 14،23 في هذه الدراسة، قمنا بنشر هذه الطريقة التجميع الذاتي لبناء جهاز preconcentration حركي كهربي فيPDMS يتطلب تقاطع علم الموائع النانوي بين اثنين microchannels 24 آلية الأساسية وراء تركيز حركي كهربي يقوم على الاستقطاب تركيز أيون (ICP). وضمت 25 وصفا مفصلا لتصنيع وتجميع الخطوات في البروتوكول التالي.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

1. إعداد الخرزة المعلقات السيليكا الغروية

  1. إعداد 300 نانومتر و 500 نانومتر تعليق حبة السيليكا
    1. دوامة تعليق السيليكا الأسهم حبة (10٪ ث / ت في الماء) لمدة 30 ثانية. للحصول على تعليق متجانسة. ماصة ما مجموعه 600 تعليق الأسهم ميكرولتر في أنبوب 1.5 مل وأجهزة الطرد المركزي أنه في 2600 x ج لمدة 1 دقيقة.
    2. استبدال طاف مع 400 ميكرولتر من العازلة 1 ملم فوسفات الصوديوم (PB، ودرجة الحموضة 7.0).
    3. تعليق الخرز السيليكا إلى تركيز النهائي من 15٪ في 1 ملي حل فوسفات الصوديوم في 7.0 درجة الحموضة من خلال vortexing ل.
  2. functionalize سطح الخرز 500 نانومتر السيليكا الكربوكسيل مع بولي (آليلامين هيدروكلوريد، الهيئة العامة للإسكان)، ومع بولي polyelectrolytes (الصوديوم الستايرين سلفونات، PSS)
    1. تعليق 0.1 غرام من 500 حبات السيليكا نانومتر مع مجموعة الكربوكسيل مع 10 مل 1 M كلوريد الصوديوم (7.0 درجة الحموضة) للفترة من 1٪ (ث / ت) تعليق حبة.
    2. تحضير 0.4٪ الهيئة العامة للإسكان (MW 65K) في 1 M بريدال عن طريق تذويب 300 ميكرولتر من محلول المخزون (20٪ ث / ت في الماء) في 15 مل من 1 M كلوريد الصوديوم. تحضير 0.9٪ PSS (MW 70K) في 1 الحل M كلوريد الصوديوم عن طريق إذابة 0.18 ز جهاز الأمن الوقائي في 20 مل محلول 1 M كلوريد الصوديوم. دوامة كلا حلول لمدة 1 دقيقة. حل polyelectrolytes تماما.
    3. إضافة 200 ميكرولتر من حل الهيئة العامة للإسكان إلى 9.8 مل من 1٪ حبات السيليكا الكربوكسيل في أنبوب 15 مل لإيداع طبقة متضاعف الكتروليتي موجبة على حبات السيليكا مع مجموعة وظيفية الكربوكسيل. دوامة تعليق حبة لمدة 1 دقيقة. واحتضان على محور دوار أنبوب لمدة 60 دقيقة. في RT.
    4. الطرد المركزي تعليق حبة في 1801 x ج لمدة 1 دقيقة. ويغسل غير منضم الهيئة العامة للإسكان خمس مرات بالماء DI 10 مل. بعد كل الطرد المركزي وإزالة طاف، كانت معبأة في حبات كثيفة في الجزء السفلي من الأنبوب. تعطيل أجمة حبة من قبل pipetting قوية مع 2 مل من الماء DI قبل إضافة 8 مل من الماء DI بحيث حبات يمكن إعادة علقت وغسله قبل خطوة الطرد المركزي المقبلة.
    5. إتبعالخطوات في 1.2.3 و1.2.4 لطلاء PSS لإيداع طبقة مشحونة سلبا على الخرز. إعادة تعليق الخرز في 9.8 مل من 1 M كلوريد الصوديوم قبل ترسب PSS بعد إزالة طاف المياه DI من الخطوة غسل الموافق 5 من 1.2.4.
      1. استخدام نفس الخطوة pipetting لنشطة باستخدام 2 مل من 1 M كلوريد الصوديوم لتفريق أجمة حبة في الجزء السفلي من أنبوب 15 مل ثم قم بإضافة 8 مل من 1 M كلوريد الصوديوم. إضافة 200 ميكرولتر من حل جهاز الأمن الوقائي إلى 9.8 مل من الخرز السيليكا المودعة لدى طبقة الهيئة العامة للإسكان واحدة. بعد vortexing لمدة 1 دقيقة. والحضانة لمدة 60 دقيقة. على محور دوار أنبوب، كرر 5 خطوات الغسيل بالماء DI.
      2. قياس إمكانات زيتا من الخرز قبل وبعد كل طلاء متضاعف الكتروليتي باستخدام نظام تشتت الضوء الحيوي وفقا لبروتوكول الشركة المصنعة للتحقق من إجراءات متضاعف الكتروليتي ترسب تم تنفيذها بشكل صحيح (انظر الجدول 1).
    6. كرر خمس خطوات الغسل بالماء DI بعد طبقة واحدة PSSترسب وإعادة تعليق الخرز في 650 ميكرولتر من 1 ملي العازلة فوسفات الصوديوم مع 0.05٪ توين 20 (15٪ ث / ت) قبل استخدامها في الجهاز ميكروفلويديك لتعزيز سيولتها لها.
  3. اتبع الإجراء الموضح أعلاه من 1.2.5 إلى 1.2.6 عن 500 نانومتر حبات السيليكا مع مجموعة وظيفية أمين لإيداع طبقة واحدة من جهاز الأمن الوقائي.

2. تلفيق من PDMS ميكروفلويديك رقاقة

  1. التصنيع الدقيق للسيد السيليكون
    1. افتعال سيد السيليكون لقالب PDMS باستخدام تقنيات التصنيع الدقيق على النحو التالي.
      1. تدور معطف 1 ميكرون مقاومة للضوء رقيقة في 4000 دورة في الدقيقة على رقاقة السيليكون. نمط طبقة باستخدام الطباعة الحجرية الإسقاط (زمن التعرض 170 ميللي ثانية) وحفر 700 نانومتر nanochannels مستو عميق و 2 ميكرون واسع (بدور nanotraps لحبات السيليكا) مع النقش ايون على رد الفعل.
      2. استخدام المعلمات النقش التالية لتحقيق معدل حفر من 3.5 نانومتر / ثانية: CHF 3 (45 SCCM)، CF 4 (15 SCCM)، هارون (100 SCCM)، الضغط 100 mTorr، والطاقة RF 200 W.
    2. تدور معطف الثانية 1 ميكرون طبقة سميكة مقاومة للضوء في 2000 دورة في الدقيقة وإجراء محاذاة إلى nanotraps نمط سابقا. نمط و microchannels عن طريق الطباعة الحجرية الاتصال والحفر العميق رد الفعل أيون (DRIE) من السيليكون. استخدام DRIE المعلمات 26 في الجدول 2.
  2. تلفيق PDMS العفن
    1. Silanize سيد السيليكون مع trichlorosilane (50 ميكرولتر) في فراغ جرة O / N.
      تنبيه: Tricholorosilane هو مادة سامة وقابلة للتآكل. دائما استخدامها في غطاء الكيميائية مع المعدات المناسبة الحماية الشخصية.
    2. مزيج القاعدة إلى وكيل المعالجة في 10: 1 نسبة ويلقي PDMS على سيد السيليكون silanized وعلاجه عند 70 درجة مئوية لمدة 2 ساعة في الفرن الحراري.
    3. إزالة بلاطة PDMS من سيد السيليكون بسكين والبلازما السندات على رقاقة فارغة باستخدام نظافة البلازما بعد ررالعلاج أسماء في نظافة البلازما لمدة 1 دقيقة. نعلق الأشرطة على طول الحافة للاحتفال خط التقسيم لPDMS التالية الصب خطوة.
    4. Silanize القالب PDMS في جرة فراغ مع trichlorosilane (50 ميكرولتر) O / N.
    5. PDMS المصبوب (قاعدة: وكيل علاج في 10: 1 نسبة) على قالب PDMS silanized وعلاجه عند 70 درجة مئوية لمدة 2 ساعة في الفرن الحراري.
  3. تصنيع الجهاز PDMS
    1. انزع بلاطة PDMS شفي من العفن PDMS على طول خط التقسيم ملحوظ مع الشريط.
    2. لكمة ثقوب الخزان مع 1.5 مم لكمة خزعة ونظيفة مع شريط، شطف مع ايزوبروبيل (IPA) وجافة مع النيتروجين.
    3. البلازما السندات الجهاز PDMS على 25 ملم × 75 ملم شريحة ميكروسكوب بعد العلاج البلازما في نظافة البلازما لمدة 1 دقيقة.
  4. Ultrasonicate تعليق حبة لمدة 60 دقيقة. في حمام بالموجات فوق الصوتية قبل التعبئة. ماصة تعليق حبة 10 ميكرولتر (300 نانومتر السيليكا غير functionalized يكونالإعلانات، أو 500 الخرز نانومتر السيليكا الكربوكسيل مع طبقات الهيئة العامة للإسكان، جهاز الأمن الوقائي، أو 500 حبات الأمينات نانومتر السيليكا مع طبقة PSS) في مداخل 4 و 6 لكل (انظر الشكل 1 A، B) مباشرة بعد الربط البلازما من الشريحة PDMS ل الركيزة الزجاج. اضغط بلطف على الرقاقة PDMS مع طرف ماصة لتعزيز التعبئة حبة.
    1. بعد ملء قنوات التوزيع حبة، تغطية جميع المنافذ ما عدا 1 و 9 مع الشريط. الهواء الجاف الجهاز لمدة 3 ساعة وتخزينها في +4 درجة مئوية قبل استخدامها. الشكل 2 يعطي التخطيطي خطوة بخطوة عملية التجميع الذاتي الغروية.

3. تجربة للحركي كهربي تركيز الحمض النووي

  1. ملء الخزانات 3 و 7 مع حل العازلة (10 ميكروليتر من 1 ملم PB) وخزان 5 مع عينة الحمض النووي (10 ميكرولتر 10 نانومتر في 1 ملم PB) وتطبيق الضغط السلبي لطيف مع تلميح ماصة مقلوب على الخزانات 2 و 8 و 10 لملء قنوات مع حلول دون فقاعات (انظر
  2. إضافة 10 ميكرولتر من 1 ملم PB إلى الخزانات 2 و 8 و 10 ميكرولتر من 10 نانومتر الحمض النووي للخزان 10 لتحقيق التوازن في الضغط والانتظار لمدة 5 دقائق. للوصول إلى التوازن.
  3. إدراج الأسلاك حزب العمال في مكامن 3، 5، 7، 10.
  4. تطبيق الجهد عبر تقاطع علم الموائع النانوي باستخدام مقسم الجهد متصلة متر مصدر وأسلاك حزب العمال. تطبيق أول 30 V على الخزانات 5 و 10 و GND على الخزانات 3 و 7.
  5. تقليل الجهد إلى 25 V على خزان 10 بعد ~ 30 ثانية.
  6. استخدام مفتاح ميكانيكي مع افتتاح الدوري في كل 5 ثوان لتقليل photobleaching من العينة عند تسجيل الاشارات مضان من الحمض النووي.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Poly(Styrenesulfonic Acid) Sodium Salt Polysciences  08772
Poly(allylamine) Solution Sigma Aldrich 479144-5G
Silica Microsphere - 300 nm Polysciences  24321
Silica Microsphere - 500 nm Polysciences  24323
Silica Microsphere Carboxyl Functional - 500 nm Polysciences  24753
Silica Microsphere Amine Functional - 500 nm Polysciences  24756
Sylgard 184 Silicone Elastomer kit Dow Corning
Trichlorosilane Sigma Aldrich 175552
Ultrasonic Cleaner Branson 3510
Tube Rotator  VWR 10136-084
Vortex Mixer WiseMix VM-10
Microcentrifuge VWR Micro 1207
Plasma Cleaner Harrick Plasma PDC-001-HP
PDMS Mixer Thinky ARE-250
Oven Thermo Scientific PR305220M
Epi-fluorescence Microscope Nikon Eclipse Ti
CCD Camera Andor Clara
Platinum Electrodes Alfa Aesar 43014
Source Meter Keithley 2400
Digital Multimeter  Extech 410
Microscopy Glass Slides Thermo Scientific 2951-001
Tween 20 Merck Millipore 822184
Sodium chloride Fisher Scientific 7646-14-5
Sodium phosphate monobasic Sigma Aldrich 71505
Sodium phosphate dibasic Sigma Aldrich S3264
DNA IDT CAA CCG ATG CCA CAT CAT TAG CTA C
B-Phycoerythrin Life Technologies P-800
Dynamic light scattering system for Zeta Potential Measurement Malvern Zetasizer Nano S
Photoresist  Shipley SPR700-1.0
Projection lithography Nikon NSR2005i9
Reactive Ion Etcher Applied Materials AME P5000
ICP deep reactive ion etcher STS STS-6"
Contact lithography Electronic Visions EV620
Photoresist Coater Developer SSI SSI 150
Non-contact surface profiler Wyko NT 9800

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Mawatari, K., Kazoe, Y., Shimizu, H., Pihosh, Y., Kitamori, T. Extended-Nanofluidics: Fundamental Technologies, Unique Liquid Properties, and Application in Chemical and Bio Analysis Methods and Devices. Anal Chem. 86, 4068-4077 (2014).
  2. Tsukahara, T., Mawatari, K., Kitamori, T. Integrated extended-nano chemical systems on a chip. Chem Soc Rev. 39, 1000-1013 (2010).
  3. Mani, A., Zangle, T. A., Santiago, J. G. On the Propagation of Concentration Polarization from Microchannel-Nanochannel Interfaces Part I: Analytical Model and Characteristic Analysis. Langmuir. 25, 3898-3908 (2009).
  4. Aizel, K., et al. Enrichment of nanoparticles and bacteria using electroless and manual actuation modes of a bypass nanofluidic device. Lab Chip. 13, 4476-4485 (2013).
  5. Wang, Y. C., Stevens, A. L., Han, J. Million-fold preconcentration of proteins and peptides by nanofluidic filter. Anal Chem. 77, 4293-4299 (2005).
  6. Karnik, R., et al. Electrostatic control of ions and molecules in nanofluidic transistors. Nano letters. 5, 943-948 (2005).
  7. Mao, P., Han, J. Y. Fabrication and characterization of 20 nm planar nanofluidic channels by glass-glass and glass-silicon bonding. Lab Chip. 5, 837-844 (2005).
  8. Mao, P., Han, J. Massively-parallel ultra-high-aspect-ratio nanochannels as mesoporous membranes. Lab Chip. 9, 586-591 (2009).
  9. Balducci, A., Mao, P., Han, J. Y., Doyle, P. S. Double-stranded DNA diffusion in slitlike nanochannels. Macromolecules. 39, 6273-6281 (2006).
  10. Yamada, M., Mao, P., Fu, J. P., Han, J. Y. Rapid Quantification of Disease-Marker Proteins Using Continuous-Flow Immunoseparation in a Nanosieve Fluidic Device. Anal Chem. 81, 7067-7074 (2009).
  11. Huh, D., et al. Tuneable elastomeric nanochannels for nanofluidic manipulation. Nat Mater. 6, 424-428 (2007).
  12. Chung, S., Lee, J. H., Moon, M. W., Han, J., Kamm, R. D. Non-lithographic wrinkle nanochannels for protein preconcentration. Adv Mater. 20, 3011-3016 (2008).
  13. Park, S. M., Huh, Y. S., Craighead, H. G., Erickson, D. A method for nanofluidic device prototyping using elastomeric collapse. Proc Natl Acad Sci. 106, 15549-15554 (2009).
  14. Zeng, Y., Harrison, D. J. Self-assembled colloidal arrays as three-dimensional nanofluidic sieves for separation of biomolecules on microchips. Anal Chem. 79, 2289-2295 (2007).
  15. Malekpourkoupaei, A., Kostiuk, L. W., Harrison, D. J. Fabrication of Binary Opal Lattices in Microfluidic Devices. Chem Mat. 25, 3808-3815 (2013).
  16. Merlin, A., Salmon, J. -B., Leng, J. Microfluidic-assisted growth of colloidal crystals. Soft Matter. 8, 3526-3537 (2012).
  17. Schepelina, O., Zharov, I. PNIPAAM-modified nanoporous colloidal films with positive and negative temperature gating. Langmuir. 23, 12704-12709 (2007).
  18. Schepelina, O., Zharov, I. Poly(2-(dimethylamino)ethyl methacrylate)-Modified Nanoporous Colloidal Films with pH and Ion Response. Langmuir. 24, 14188-14194 (2008).
  19. Smith, J. J., Zharov, I. Ion transport in sulfonated nanoporous colloidal films. Langmuir. 24, 2650-2654 (2008).
  20. Gaspar, A., Hernandez, L., Stevens, S., Gomez, F. A. Electrochromatography in microchips packed with conventional reversed-phase silica particles. Electrophoresis. 29, 1638-1642 (2008).
  21. Lee, S. Y., et al. High-Fidelity Optofluidic On-Chip Sensors Using Well-Defined Gold Nanowell Crystals. Anal Chem. 83, 9174-9180 (2011).
  22. Hu, Y. L., et al. Interconnected ordered nanoporous networks of colloidal crystals integrated on a microfluidic chip for highly efficient protein concentration. Electrophoresis. 32, 3424-3430 (2011).
  23. Zhang, D. -W., et al. Microfabrication-free fused silica nanofluidic interface for on chip electrokinetic stacking of DNA. Microfluid Nanofluid. 14, 69-76 (2013).
  24. Syed, A., Mangano, L., Mao, P., Han, J., Song, Y. A. Creating sub-50 nm nanofluidic junctions in a PDMS microchip via self-assembly process of colloidal silica beads for electrokinetic concentration of biomolecules. Lab Chip. 14, 4455-4460 (2014).
  25. Kim, S. J., Song, Y. A., Han, J. Nanofluidic concentration devices for biomolecules utilizing ion concentration polarization: theory, fabrication, and applications. Chem Soc Rev. 39, 912-922 (2010).
  26. Fu, J. P., Mao, P., Han, J. Y. Continuous-flow bioseparation using microfabricated anisotropic nanofluidic sieving structures. Nat Protoc. 4, 1681-1698 (2009).
  27. Plecis, A., Nanteuil, C., Haghiri-Gosnet, A. M., Chen, Y. Electropreconcentration with Charge-Selective Nanochannels. Anal Chem. 80, 9542-9550 (2008).
  28. Ko, S. H., et al. Nanofluidic preconcentration device in a straight microchannel using ion concentration polarization. Lab Chip. 12, 4472-4482 (2012).
إنشاء 50 نيوتن متر الفرعية علم الموائع النانوي المفارق في PDMS ميكروفلويديك رقاقة عن طريق عملية التجميع الذاتي من الغروية الجسيمات
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Wei, X., Syed, A., Mao, P., Han, J., More

Wei, X., Syed, A., Mao, P., Han, J., Song, Y. A. Creating Sub-50 Nm Nanofluidic Junctions in PDMS Microfluidic Chip via Self-Assembly Process of Colloidal Particles. J. Vis. Exp. (109), e54145, doi:10.3791/54145 (2016).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter