Abstract
küçük moleküllü ilaç keşfi olduğu gibi, peptid agonistleri için eleme konsantrasyon-tepki eğrileri elde etmek peptidlerin seri seyreltme gerektirir. peptidler Tarama geleneksel uç tabanlı numune alma yöntemleri adsorpsiyon yoluyla peptid kaybı için artan bir fırsat sağlayarak, plasticware geniş bir yüzey alanına peptidler maruz olarak karmaşıklık ek bir katman tanıyor. Plasticware aşırı maruz kalma önlenmesi plastik bağlılık yoluyla peptid kaybını azaltır ve böylece gücü tahmininde yanlışlıklar en aza indirir, ve biz daha önce peptid agonistleri 1 in vitro yüksek verimli tarama için dağıtım temassız akustik faydalarını tarif var. Burada fare glukagon benzeri peptit-1 reseptörü (GLP-1 R) peptit agonistlerinin taranmasında örnek kullanılarak mikrotiter plakalarında peptid seri dilüsyonları temassız akustik hazırlanması için bir tam entegre bir otomasyon çözümü tartışılmıştır. Bizim yöntemler yüksek izin-throughput agonistlerinin taranmasında da tahlilleri hücre bazlı ve kolay bir şekilde yüksek bir numune test etme desteklemek için, ya da (daha fazla hedef hücre çizgilerinin bir panel için, örneğin) deney plakası kopya sayısında artış sağlamak için büyütülebilir.
Introduction
GLP-1 R tip 2 diyabet 2 tedavisinde kurulu bir ilacın bir hedeftir. Bu reseptör için yerli peptit agonisti, GLP-1, 2-3 dakika 3 bir in vivo yarı-ömrü vardır. adenilil siklaz aktivasyonuna doğal G protein bağlanması yoluyla ikinci haberci cAMP'nin alt üretimindeki G protein bağlı hedef reseptör sonuçlarına GLP-1 bağlanması. biriken cAMP ölçümü sağlam bir tahlil reseptör aktivasyonunun izlemek ve tercih edilen bir fiziko-kimyasal özellikleri, aktif GLP-1 analogları taranması için içerir. Böyle bir deney, konsantrasyon-tepki eğrilerini oluşturmak için test numunelerinin seri seyreltme gerektirir ve peptid örnekleri teslim Bu, özellikle karmaşıktır. Ucu tabanlı seri seyreltme hazırlanmasından potansiyel hatalar, daha önce 1,4,5 tarif edilmiştir. Peptidler güvenilmez potens tahminlerinde sonuçlanan plasticware yapışır. Peptit kaybı t yoluyla minimize edilebilirO sığır serum tamponlarda albümini (BSA) ve silikonlu plasticware kullanımı, ama bağlayıcı proteinin eklenmesi düzensiz kalmaktadır. Özel olarak, deney kaplarına GLP-1 bağlanması değişim 6 tarif edilmiştir. Sulu tahlil tampon içine ipuçları ve mikrotiter plakaları liç ve protein fonksiyonu 7, 8 engelleyebilir laboratuvar plasticware kullanılan bu istikrar ajanlar daha da komplikasyon var. Bu nedenle, yöntemler plasticware maruziyeti azaltmak için ölçümlerin doğruluğunu artırmak için gereklidir.
Akustik Sıvı dağıtıcıları bitişik tahlil plaka 9 içinde hassas nanolitre damlacıklarının ejeksiyon sonuçlanan bir sıvı numunesinin yüzeyi üzerine, yüksek frekanslı akustik sinyal odaklanır. Akustik ejeksiyon kullanımı hazırlanması ve büyük sentetik bileşik kütüphanelerinin taranması için ilaç endüstrisinde standart ve teknoloji de küçük Moleküller için valide edilmiştires 10. Bildiğimiz kadarıyla, rekombinant ve sentetik peptidlerin hazırlanması için akustik dağıtılmasını tanımlamak için birinci grup ve daha önce bilinen ucu tabanlı yöntem 1 ile karşılaştırıldığında geliştirilmiş doğruluk bildirmiştir.
Bu makalede, bir tam otomatik plaka taşıma robotik sistem üzerine temassız akustik transferi ile peptid seri ve direkt dilüsyonları hazırlanması entegrasyonunu anlatmaktadır. Örneklerin akustik transfer kapsayan bir dizi yöntem, daha önce, 11 tarif edilmiştir. Bu, iki aşamalı bir yöntem, ara stok konsantrasyonları hazırlamak için ve seri olarak tam doz-tepki eğrisi oluşturacak şekilde peptit analoglarını seyreltmek için kullanmaktadır. hazırlanan peptidler, hedef hücreler, fare GLP-1R ifade ile inkübe edilir, ve peptid agonisti activ bir okuma olarak, bu hücreler içinde, cAMP birikiminin ölçülmesi için ticari olarak elde edilebilen homojen zaman çözümlü bir fluoresans (HTRF) deneyi kullanımıSığ. Deney sağlam ve yüksek verimli bir 384-gözlü formata müsait ve rutin olarak, her iki deney geliştirme tatbik edildi ve ilaç tarama 12 çıkıntı olan.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
1. Peptid seri seyreltme
- deney tamponu hazırlayın: Hanks, 25 mM HEPES,% 0.1 BSA ve 0.5 mM 3-izobutil-1-metilksantin (IBMX), pH 7.4 ile takviye edilmiş tuz çözeltisi (HBSS) tamponlu.
- sistematik beş 384-düşük hacimli deney plakalarının her çukuruna deney tamponu 5 ul bir hacim tepkin madde dağıtıcı kullanın.
- üreticinin talimatlarına göre 384 oyuklu bir plakanın her bir oyuğuna 5 ul hacmi ilave edilmesi için bir dağıtma programı oluşturmak için iç yazılım kullanın.
- deney tamponu ve prime sıvısında kaset boru dağıtım daldırın.
- plaka taşıyıcısı üzerindeki 384 de düşük hacimli tahlil plaka koyun.
- Başlata basınız.
- 100x peptid stokunun üretilmesi için deney tamponu içine ne olursa olsun, bir depolama aracı, her peptit örnekleri seyreltilir.
Not: tarama gerektiren peptidlerdir örneğin, DMSO (w uygun görüldüğü şekilde fosfat-tamponlu salin (PBS) veya dimetil sülfoksit (DMSO) içinde temin edilebilirHasta bu PEGilasyon gibi sekonder değişikliklerin) sahip peptidler üzerinde zararlı bir etkiye sahiptir. - sütunlar akustik nitelikli 384-polipropilen mikroplaka 1-5 içine 25 ul 100x peptid stokları koyun. Bu plaka 'kaynak plaka A' belirlenmiştir. bu kaynak plakaları olun, ancak hedef plakaları, düz dipli ve akustik enstrümanlar üreticisi tarafından tanımlanan belirli akustik toleranslar uygundur.
- kuyular A23 içine 25 ul 100x referans kontrolü dağıtın ve kaynak plaka A. A24
- Kaynak plaka A. sütun 21-22 içine sütun 11-15 ve 30 ul tahlil tamponu içine 10 ul deney tamponu dağıtın
- sütunlar ikinci akustik nitelikli 384 polipropilen mikroplaka 6-10 ve sütunları 16-20 içine 10 ul deney tamponu koyun. Bu plaka 'kaynak plaka B' belirlenmiştir.
- 1 dakika boyunca 300 x g'de santrifüjleyin kaynağı A ve B levhalarının. uygun bir denge levhasını içerir.
- akustik flui kullanınKaynak A sütun 1 100x peptid stokları (deney tamponu içinde), 100, ara seyreltiler: D dağıtıcılar, sıralı üç 1 hazırlanması için bir otomatik robotlu sisteme entegre
NOT: Programlama kaynak A ve kaynak B (plaka düzenleri için bakınız Şekil 1) arasında üç akustik transferlerine izin plaka yeniden biçimlendirme ve (akustik sıvı dağıtıcısının üreticisi tarafından sağlanan gibi) doz-yanıt yazılım gerektirir. Özellikle 1,9 ayrıntıları otomatik robot kontrolü altında bu laboratuvarda kullanılan sıvı dağıtıcıları kullanımı Adım (Malzeme Tablo bakınız):- robotik plaka otel bölümünde yükleyin kaynak plakaları ve tahlil plakaları.
- Açık, otomatik robotlu yazılım ve yük plakası yeniden biçimlendirme ve doz-yanıt programı genişletme protokolleri. 'Çalıştır' düğmesine tıklayın.
NOT: Otomasyon kaynak plakası B sütunları 6-10 içine kaynak plakası A sütunları 1-5 250 nl aktarmak için bir akustik sıvı dağıtıcı talimatı ve ikinci akustik birkarıştırmak için 15 ul deney tamponu ile doldurmak için büyük sıvı hacimlerini işleme yeteneğine c sıvı dağıtıcısı. Otomasyon sonra entegre santrifüj ve 1 dakika boyunca 300 xg'de santrifüj (uygun bir denge plakası tüm santrifüj adımları dahildir) kaynak plakası B aktarır. Kaynak plaka B kaynak plakası A sütunları 11-15 içine kaynak plakası B sütunları 6-10 250 nl transferi için akustik sıvı dağıtıcı döndü ve karıştırmak için 15 ul deney tamponu ile dolgu edilir. Entegre santrifüj ve 1 dakika boyunca 300 xg'de santrifüj Otomasyon transferleri kaynak plakası A. Kaynak levhası ardından kaynak plakası B sütunları 16-20 içine kaynak plakası A sütunları 11-15 250 nl transferi için akustik sıvı dağıtıcı döndü ve karıştırmak için 15 ul deney tamponu ile dolgu edilir. Otomasyon sonra 1 dakika boyunca 300 xg'de entegre santrifüj ve santrifüjler kaynak plakası B aktarır.
NOT: Son olarak doz tepki protokolü aktarmak için akustik dağıtılmasını yönlendirir(Kaynak levhasının ve kaynak plakası B hem de) 4 seri olarak seyreltilmiş, kaynak plakası kuyularının her biri gerekli hacmi deney plakalarında iki kez tam 11 noktalı eğri oluşturmak için (yukarıda Adım 1.2'de 5 ul deney tamponu ile önceden doldurulmuş ). Otomasyon Entegre santrifüj transferler tahlil plaka ve santrifüjler 1 dakika boyunca 300 xg'de.
2. Hücre Hazırlanması
- 20 mi tayin tamponu içinde 37 ° C bir su banyosu ve tekrar süspansiyon hızla hedef fare, GLP-1 reseptörü eksprese eden çözülme dondurulan Çin hamsteri yumurtalık (CHO) hücreleri.
- Oda sıcaklığında 200 xg (RT), 5 dakika boyunca santrifüj hücre süspansiyonu. uygun bir denge ekleyin.
- Süpernatant atın ve 10 ml tahlil tamponu hücre pelletini.
- Tripan mavi 1 ve otomatik bir hücre sayacı kullanılarak, canlı hücrelerin yoğunluğunu belirler: hücre stoku: 1 seyreltin. Wel 8.000 hücrelerine (eşdeğer, ml başına 1.6 x 10 6 hücre olarak tahlil tamponu içinde yeniden süspanse hücreleriDeney plakaları l).
- 30 dakika boyunca oda sıcaklığında (5 ul deney tamponu içinde seri halinde seyreltilmiş peptid içeren) deney plakalarının her çukuruna hücre süspansiyonu 5 ul ve inkübasyona bir kütle reaktif dağıtıcı kullanın.
3. HTRF cAMP tespitinde
- kullanımdan önce, 30 dakika boyunca oda sıcaklığına HTRF cAMP tahlili kiti getirin.
- (CAMP tarama deneyinde üreticisi tarafından sağlanan özel formülasyon) liziz tamponu içinde 1:20 seyreltide ayrı ayrı HTRF reaktif (cryptate ve D2) hazırlayın.
NOT: DİKKAT: Lizis tampon potasyum zehirlidir florid (KF) ve teratojen 13 içerir. Atıkları, KF içeren tahlil tabak mühürlü ve yakılarak ve herhangi bir sıvı atık önce lavaboya aşağı elden su ile <1 mg / L seyreltilmiş gerekmektedir edilmelidir. - deney plakalarının tüm oyuklara 5 ul kriptat reaktif ekleme bir kütle reaktif dağıtıcı kullanın.
- colum 5 ul d2 reaktifi eklemek için toplu reaktif dağıtıcı kullanınns tahlil plakaları 1-22.
- Hemen el ile spesifik olmayan bağlanma (NSB) kontrol kuyuları ve kuyu E23-P24 içinde D2 reaktif 5 ul elde deney plakaları kuyu A23-D24 içinde 5 ul lizis tamponu pipetle.
- kuyu karıştırmak oda sıcaklığında 200 xg'de 1 dakika için deney plakaları santrifüjleyin.
- buharlaşma ve foto-ağartma en aza indirmek ve 1 saat boyunca oda sıcaklığında inkübe tahlil plakaları örtün.
- 620 nm'de bir plaka okuyucu kullanılarak 665 nm 'de 320 nm' de bir eksitasyon ve emisyon ile flüoresan rezonans enerji transferi (FRET) sinyali ölçer.
4. Veri Analizi
- tüm kuyulardan arka plan çıkarmak için NSB ortalama kullanın.
- aşağıdaki şekilde 665 nm / 620 nm oranından% Delta F hesaplanır:
Oran = (A 665nm / A 620) 10 4 x
Delta F = ((Numune Oranı - Oran NSB) / Oran NSB)) x 100
nerede Oran NSB hiçbir d2 reaktifi ile kuyu =. - % Activat hesaplayınaşağıda uyarılmamış hücrelerde ve hücreler arasında iyon maksimum GLP-1 ligand ile uyarılmış:
% Aktivasyon = (% Delta Fsample -% DeltaFunstimulated hücreleri) / (% DeltaFGLP-1 uyarılan hücreler -% DeltaF uyarılmamış hücreler) x 100 - Referans kontrol 1 ile tanımlanan,% aktivasyonu gibi 4-parametreli lojistik analizi ve grafik ile konsantrasyon-tepki eğrileri analiz edin.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Biz rutin akustik havalesiyle peptidler sulandırmak için iki adımlı bir yöntemini kullanın. İlk adımda, otomasyon ile uyumlu bir akustik dağıtıcı iki kaynak plakalar arasındaki dört stok peptid ara dilüsyonları oluşturmak için kullanılır (Şekil 1a, b). İkinci adım olarak, biz daha fazla her test peptid (Şekil 1c) için 11 maddelik konsantrasyon aralığı oluşturmak için kaynak plakaları A ve B hisse senedi dilüsyonları sulandırmak için bir akustik dağıtıcı kullanın. Her bir peptid konsantrasyon aralığı 16 farklı peptit 384 gözlü esey plâkasının (Şekil 1c) göre taranır sağlayan, bir deney plakası soldan sağa doğru, iki kopya halinde harekete geçirilir. Tahlil tamponu dolgu deney plakası (Şekil 1d) üzerinde oyuk başına sabit bir hacim sağlamak üzere gerçekleştirilir. Referans peptid pozitif kontrolleri de maksimum etkili konsantrasyonda hedef plakalarına aktarılır.
ent. "fo: keep-together.within sayfa =" 1 "> Plakalar gösterilmiştir (Şekil 2a) bir floresan plaka okuyucu ve iki nüsha halinde 16 peptitler içeren bir örnek plaka için bir ısı haritası ile okunduğunda cAMP birikimi tahlil kullanılan (mor olarak gösterilir), bir ters çevrilmiş bir rekabet deneyi, bu şekilde düşük değerler veri konsantrasyon-yanıt eğrileri ile ifade edilir, yinelenen nokta tekrarlanabilirliği belirgindir cAMP. yüksek bir konsantrasyon temsil (Şekil 2b). örnek 1 (A sırası, Şekil 2a) deney için pozitif kontrol etmektedir. Örnekler 2, 3 ve 4 (satırlar B, C ve sırasıyla, D, Şekil 2a) aktif olmayan ve Şekil 2b'de, düz çizgiler eşit. Örnekler 5-16 (P sıraları e) bir etkin temsil Test peptidler. yöntemi, geniş bir etki gücü aralığında tam konsantrasyon-tepki eğrilerinin oluşturulması için izin verir. tüm iş akışını ayrıntılı bir Akış Şeması gösterilir 
Şekil 1:. Seri seyreltme yöntemi dağıtım akustik Plaka Düzenleri açıklaması. (A, b) 384 kaynağı plakalar bir Düzen ve dolgu için, 100 x pozitif kontrol, deney tamponu sadece oyuklara (kaynak plaka başına mümkün olan 80 peptidleri ile örnek) her bir peptidin 100x stok konsantrasyonu 25 ul ihtiva eden B ve üç 1: hem kaynak plakaları arasındaki otomatik akustik transferi ve dolgu tarafından hazırlanan her peptit 100 seri seyreltme. (C) Tek bir deney plakası düzeni plaka üzerinde iki kez 16 peptidler için 11 noktalı konsantrasyon aralığını gösteren. (D), 10 | il son deney hacminde, 11 noktalı bir konsantrasyon aralığı için tipik dağıtma protokolü. Tüm hedef kuyuları sabit nihai devir vo sağlamak için bir tahlil tampon dolgu var 100 nl per ve lume iyi. Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız. 
Şekil 2: ısı haritası ve doz-yanıt eğrileri A665 nm'de floresans gösteren ısı haritası.. Plaka boyunca iki nüsha halinde 16 peptidler (a) 11-noktalı konsantrasyon aralığı. Menekşe cAMP (max) yüksek bir konsantrasyonu belirtir kırmızı cAMP (min), düşük bir konsantrasyonu belirtir. (B) hücreleri (16 bileşikleri) ifade fare GLP-1R karşı GLP-1 reseptör agonisti peptid bir dizi etkinlik gösteren tek bir plaka tahlil Temsilcisi peptit konsantrasyon-cevap eğrileri. Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız. 
Şekil 3:.. Bütün iş akışının tarama süreci Detay Akış Şeması bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayınız.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Bu protokol, seri örnek 1 'den az ul gerektiren, 3 x 10 6 bir konsantrasyon aralığı üzerinde peptid örnekleri seyreltilmesi için otomatik bir akustik dağıtma başarılı bir uygulama açıklanmaktadır. Bu yöntemin en önemli avantajı, normal reaktif ve karıştırmak için gerekli olan deney kapları (örneğin, pipet uçları gibi) plasticware örneklerin düşük maruz kalma ile plasticware peptit adsorpsiyonu en aza indirmek suretiyle veri kalitesinin artırmaktır. akustik dağıtım tamamen plasticware kullanımını ekarte etmez iken, önemli ölçüde azaltmak gelmez. Bundan başka, uç-bazlı pipetleme uzaklaştırılması aynı zamanda örnek taşınmasını ortadan kaldırır ve hatalar konsantrasyon-yanıt eğrileri 14,15 hem güvenilir ve yeniden üretilebilen bir üretim sağlayan tüm seri seyreltme boyunca yayılır.
Diğer gruplar için DMSO içinde çözünür hale test bileşiklerinin doğrudan akustik transfer bildirmiştirzaman 16,17 fazla deney plakası ve inkübasyon ters dışında gerektirmeyen karıştırma adımları uzun süreli deneyler (> 48 saat) hücreler. DMSO yüksek kutupsal olan ve çok daha yumuşak hazırlanmış ve PBS içinde saklanmalıdır biyolojik örnekler daha sulu çözeltisi ile karıştırılması etmektir. Peptid numuneler akustik transferi için otomatik bir yöntem kabul ederken nedenle, doğru örnek seri seyreltme için izin bir karışım sağlamak için ek dolgu ve santrifüj aşamaları kullanmışlardır. Tecrübemiz "ıslak transferi 'yöntemi bir 15 ul dolgu, ardından sulu tampon arasında olan bir 10 ul hacim içinde akustik transfer oluşan geliştirilmiş ve böylece sadece santrifüj sulu örneklerin tam karışımını sağlamak için yeterli olmadığını gösterir ve aynı sulu tampon. Olacak hızlı eva sulu bir peptit çözeltisi olarak, kuru bir kaynak plaka peptidler ateş ve ardından küçük moleküller için bir gücü olarak doldurmak için mümkün değildiryaygýnlaþsýn ve peptid geri dönüşümsüz kuru plastik plaka yapışır. Bu sulu örneklerin karıştırılması yardım etmez, ancak santrifüj hala akustik transferi için bir seviye numunesi menisküs sağlamak için gereklidir. daha az manuel örneklerin çok sayıda hazırlanması ve otomasyon kullanımı daha böylece denetimsiz verim sağlar, ancak birden fazla ara transfer, dolgu ve santrifüj adımları dahil, biraz zaman alıcıdır. Diğer 96-yuvalı plakalar 17 karıştırma el bileşik için gereksinim duyulmaktadır. Burada tam otomatik süreci ve DMSO kullanımı mümkün olmadığı durumlarda manuel müdahaleye gerek kaldırdık. enstrümantasyon ve sarf malzemesi maliyetleri bazı ortamlarda bu sürecin kullanımını sınırlamak olacaktır. Bu durumda ise, biz test numunesinin doğası bu (örneğin, sentetik peptidler) için uygun ise, uç-tabanlı seri seyreltileri, her zaman DMSO içinde gerçekleştirilir önerilir. Numuneler (DMSO ile tedavi edilemez ise, örneğin,PEG'lenmiş peptidleri) gücü verileri yorumlanırken daha önce tamamen adsorpsiyonu 1 engellemez BSA artan konsantrasyonlarda bile dahil göstermiştir çünkü dikkatli kullanılmalıdır.
Akustik, uç-az transferi genellikle hayvan veya insan biyolojik örnekler için olduğu gibi örnek / sonlu kıt ise esastır tahlil miniaturization ilişkin ek faydalar vardır ve biz daha önce giden hayvan örneklerinin hacminin azaltılması için potansiyel tanımlamışlardır çalışmanın 1 başına daha az hayvanlar için bir gereklilik. Peptidler biyolojik örnekler ve bu şekilde ele alınması gerektiğini hatırlamak önemlidir; kendi bütünlüğü tekrar donma-erime döngülerinden muhafaza edilmesi amacıyla kaçınılmalıdır. Biyolojik yeni terapötiklerin hızla büyüyen bir alandır, ve peptidlerin hazırlanması için otomatik yüksek verimli bir yöntem kolayca yeniden birleştirici proteinler ve antikorlar da dahil olmak üzere diğer biyolojik maddeler de uygulanabilir.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Hanks’ Balanced Salt solution | Sigma-Aldrich | H8264 | |
| HEPES | Sigma-Aldrich | H3375 | |
| Bovine Serum Albumin | Sigma-Aldrich | A9418 | |
| 3-Isobutyl-1-methylxanthine | Sigma-Aldrich | I7018 | Prepared as a 0.5 M stock in DMSO |
| GLP-1 (7-36) amide | Bachem | H-6795 | Prepared as a 1 mg/ml stock in PBS, referred to as '100x reference control' |
| Test peptides | Produced in-house at MedImmune | Supplied at various concentrations in DMSO or PBS as appropriate | |
| 100x peptide stock | Produced in-house at MedImmune | Test peptide diluted into assay buffer to 100x final required concentration | |
| Trypan Blue Solution, 0.4% | Thermo Fisher Scientific | 15250-061 | |
| Cedex XS Cell Analyzer | Innovatis | ||
| Corning 384 well plates, low volume | Sigma-Aldrich | 4514 | |
| Echo Qualified 384-Well Polypropylene Microplate | Labcyte Inc. | P-05525 | |
| Echo Qualified Reservoir | Labcyte Inc. | ER-0055 | |
| Echo 550 Liquid Handler | Labcyte Inc. | Droplet transfer volumes in increments of 2.5 nl | |
| Echo 525 Liquid Handler | Labcyte Inc. | Droplet transfer volumes in increments of 25 nl | |
| ACell Benchtop Automation | HighRes Biosolutions | MC522 | |
| Cellario Lab Automation Scheduling software for Life Science Robotics | HighRes Biosolutions | ||
| MultidropCombi Reagent Dispenser | ThermFisher Scientific | 5840300 | Referred to as 'bulk reagent dispenser' |
| HTRF cAMP Dynamic 2 kit | Cisbio Bioassays | 62AM4PEJ | |
| EnVision Multilabel Reader | PerkinElmer |
References
- Naylor, J., Rossi, A., Hornigold, D. C. Acoustic Dispensing Preserves the Potency of Therapeutic Peptides throughout the Entire Drug Discovery Workflow. J.Lab.Autom. 21 (1), 90-96 (2016).
- Campbell, J. E., Drucker, D. J. Pharmacology, physiology, and mechanisms of incretin hormone action. Cell.Metab. 17 (6), 819-837 (2013).
- Hui, H., Farilla, L., Merkel, P., Perfetti, R. The short half-life of glucagon-like peptide-1 in plasma does not reflect its long-lasting beneficial effects. Eur.J.Endocrinol. 146 (6), 863-869 (2002).
- Harris, D., Olechno, J., Datwani, S., Ellson, R. Gradient, contact-free volume transfers minimize compound loss in dose-response experiments. J.Biomol.Screen. 15 (1), 86-94 (2010).
- Ekins, S., Olechno, J., Williams, A. J. Dispensing Processes Impact Apparent Biological Activity as Determined by Computational and Statistical Analyses. PLoS ONE. 8 (5), 62325 (2013).
- Goebel-Stengel, M., Stengel, A., Tache, Y., Reeve, J. R. The importance of using the optimal plasticware and glassware in studies involving peptides. Anal.Biochem. 414 (1), 38-46 (2011).
- McDonald, G. R., et al. Bioactive Contaminants Leach from Disposable Laboratory Plasticware. Science. 322 (5903), 917 (2008).
- Belaiche, C., Holt, A., Saada, A. Nonylphenol ethoxylate plastic additives inhibit mitochondrial respiratory chain complex I. Clin Chem. 55 (10), 1883-1884 (2009).
- Sackmann, E. K., et al. Technologies That Enable Accurate and Precise Nano- to Milliliter-Scale Liquid Dispensing of Aqueous Reagents Using Acoustic Droplet Ejection. J.Lab.Autom. 21 (1), 166-177 (2016).
- Grant, R. J., et al. Achieving accurate compound concentration in cell-based screening: validation of acoustic droplet ejection technology. J.Biomol.Screen. 14 (5), 452-459 (2009).
- Turmel, M., Itkin, Z., Liu, D., Nie, D. An Innovative Way to Create Assay Ready Plates for Concentration Response Testing Using Acoustic Technology. J.Lab.Autom. 15 (4), 297-305 (2010).
- Butler, R., et al. Use of the site-specific retargeting jump-in platform cell line to support biologic drug discovery. J.Biomol.Screen. 20 (4), 528-535 (2015).
- Panchal, S., Verma, R. J. Effect of sodium fluoride in maternal and offspring rats and its amelioration. Asian Pac.J.Reprod. 3 (1), 71-76 (2014).
- Hanson, S. M., Ekins, S., Chodera, J. D. Modeling error in experimental assays using the bootstrap principle: understanding discrepancies between assays using different dispensing technologies. J.Comput. Aided Mol.Des. 29 (12), 1073-1086 (2015).
- Harris, D., Olechno, J., Datwani, S., Ellson, R. Gradient, Contact-Free Volume Transfers Minimize Compound Loss in Dose-Response Experiments. J.Biomol. Screen. 15 (1), 86-94 (2010).
- Chan, G. K. Y., Wilson, S., Schmidt, S., Moffat, J. G. Unlocking the potential of high-throughput drug combination assays using acoustic dispensing. J.Lab.Autom. 21 (1), 125-132 (2016).
- Roberts, K., et al. Implementation and challenges of direct acoustic dosing into cell-based assays. J.Lab.Autom. 21 (1), 76-89 (2016).
