Introduction
En las últimas décadas, las tecnologías de imágenes han revolucionado la forma en que los médicos a diagnosticar y controlar la enfermedad. Estas tecnologías de la imagen, sin embargo, han sido en gran parte limitada a los sistemas de formación de imágenes de todo el cuerpo, como la tomografía por emisión de positrones (PET), emisión de fotón único tomografía computarizada (SPECT), tomografía computarizada (TC) y la resonancia magnética nuclear (RMN). Especial atención se ha prestado a cáncer, y los avances tecnológicos de imagen han mejorado en gran medida la forma en que esta enfermedad es diagnosticada y tratada. A pesar de estos avances, hay un lugar donde estas tecnologías de imagen simplemente no encajan: la sala de operaciones. Mientras que las técnicas de imagen de todo el cuerpo puede ayudar en la planificación quirúrgica, por lo general carecen de resolución espacial lo suficientemente altas como para ayudar a los médicos a determinar en tiempo real si todo el tejido del tumor ha sido eliminado o tejido tumoral residual permanece oculto en los márgenes quirúrgicos 1. Asegurándose de que no infiltrantelos márgenes del tumor se quedan atrás es uno de los objetivos quirúrgicos más importantes, y los cirujanos deben caminar una cuerda floja entre la resección de tejido rigurosa y prudente. Si se quita demasiado, se exacerban los efectos secundarios no deseados para el paciente; si no hubiese suficiente se retira, las tasas de recurrencia se incrementan 2, 3. Por lo tanto, es crucial para delinear los márgenes tumorales precisos, y creemos que las imágenes intraoperatorias quimioluminiscente puede ayudar a mejorar la precisión de la identificación de los márgenes del tumor, ayudando a los cirujanos visualizar el tejido maligno que de otro modo podrían no ser detectados con técnicas establecidas.
Hay muchas tecnologías de imagen que actualmente se investigan por su posible utilidad como sistemas de imágenes intraoperatorias. Estos incluyen sondas y ß-γ-emisores de radiación de fluorescencia óptica 4, 5, 6 espectroscopia Raman >, 7 y Cherenkov luminiscencia 8, 9. Hasta la fecha, sin embargo, ninguno de ellos se han establecido como herramientas clínicas estándar. imágenes de fluorescencia óptica hasta ahora ha demostrado ser el más prometedor de estas técnicas y por lo tanto es el más explorado. Si bien ya se ha demostrado ser una herramienta valiosa para muchas aplicaciones, no es sin sus limitaciones. De hecho, su principal inconveniente es la fluorescencia de fondo generado por el tejido biológico inherentemente autofluorescent. Esta señal de fondo autofluorescente es un producto de la excitación del tejido circundante, además de la fluoróforo, por la fuente de luz externa necesaria para la generación de una señal fluorescente. Desde una perspectiva práctica, esta autofluorescencia puede potencialmente conducir a bajas relaciones señal-ruido, que pueden limitar la utilidad de esta tecnología en la sala de operaciones.
El directorventaja de quimioluminiscencia de imágenes sobre imágenes de fluorescencia es que ninguna luz de excitación es necesario. Como resultado, no hay fondo autofluorescencia. En las imágenes de quimioluminiscencia, la energía de excitación en su lugar se genera químicamente. Este proceso no produce señal de fondo no deseada y por lo tanto puede dar lugar a mayores relaciones de señal a ruido. Esto podría resultar en última instancia, la detección más precisa y exacta de los márgenes quirúrgicos. Sorprendentemente, la utilidad de este enfoque como una técnica de imagen intraoperatoria ha permanecido inexplorado 10. De hecho, el ejemplo más cercano a esta técnica es la oxidación del luminol por la mieloperoxidasa en ratones 11, 12, 13. Por lo tanto, las imágenes biomédicas quimioluminiscente es una zona bastante inexplorada de la investigación que podría ofrecer las siguientes ventajas: (1) autofluorescencia mínima que resulta en una señal de fondo baja con hiGher relaciones de señal a ruido; (2) longitudes de onda sintonizables de las emisiones de quimioluminiscencia que van desde lo visible a lo infrarrojo cercano; y (3) los complejos de quimioluminiscencia funcionalizables que, cuando se combina con las tecnologías de engarce y biomoléculas que ya existen dirigido, proporcionan acceso a bibliotecas enteras de sondas de imagen moleculares específicos 14.
Este estudio de prueba de principio ilustra la utilidad potencial de las imágenes quimioluminiscente en el entorno biomédico utilizando un agente de formación de imágenes basado en rutenio. Las propiedades de este compuesto quimioluminiscente están bien estudiados, con las investigaciones que se remontan a mediados de la década de 1960 15. Tras la activación química, el agente produce la luz en torno a 600 nm 16, que es muy adecuado para los propósitos de imágenes médicas. La energía de activación se proporciona por una reacción redox que conduce a un estado excitado, que tiene una duración de 650 ns en agua 17 -folladeudado por la generación de fotones sobre la relajación de este estado excitado. A través del uso de un nebulizador a distancia especialmente diseñado, hemos sido capaces de detectar el compuesto tanto ex vivo como in vivo. Los resultados de los experimentos iniciales son muy prometedores, lo que sugiere una mayor investigación de esta tecnología.
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Protocol
Declaración de la ética: Todos los experimentos con animales en vivo descritos se llevaron a cabo de acuerdo con un protocolo aprobado y bajo las directrices éticas del Memorial Sloan Kettering Cancer Center (MSK) Cuidado de Animales institucional y el empleo Comisión (IACUC).
1. Construcción de un dispositivo de nebulización
- Adjuntar parte de madera A (12,5 x 2,5 x 1,8 cm 3) en posición vertical en el centro de la parte B (12,7 x 10,7 x 1,8 cm 3), utilizando dos tornillos (4 x 25 mm 2). Adjuntar madera parte C (11 × 2,5 × 1,8 cm 3) a la mitad de la parte A (12,5 x 2,5 x 1,8 cm 3) mediante un tornillo, de manera que la parte C (11 x 2,5 x 1,8 cm 3) todavía se pueden mover. Ver Figura 1.
- Haga dos agujeros a través de la punta inferior de la botella de spray de disparo de un 3 oz mini rociador plástico (D) y empujar una varilla de acero inoxidable (10 cm de "acero 1/16) (E) a través para formar dos bucles, uno a cada lado del gatillo. Envuelva la parte inferior de la botella de spray con cinta adhesiva (F) para evitar los lazos de cable se deslice. Coloque la botella de spray a la madera la parte C (11 x 2,5 x 1,8 cm 3), utilizando las dos bridas de plástico (28 cm) (G).
- Cortar el motor servo 011 (I) y volverlo a conectar con los cables sueltos de la servo control (H). A continuación, conecte el servomotor a la parte superior de la parte de madera A (12,5 x 2,5 x 1,8 cm 3) el uso de cinta adhesiva.
- Adjuntar un lápiz (J) a la palanca de servomotor con el clip de papel (K). Firmemente conectar las partes más externas del lápiz para los bucles de varilla de acero recubiertas de plástico que utilizan cables de torsión (L) y asegurar los extremos en el lápiz con cinta adhesiva.
- Cortar el conector del cable magnético de la unidad de control del motor servo (M) y vuelva a conectarlo al cable del altavoz (N). A continuación, la cinta de la unidad de control del motor servo a la madera de la parte B (12,7 x 10,7 x 1,8 cm 3). Cortar un cable con conectores magnéticos W1 por la mitad y colocar una parte por el extremo suelto de la s cobrepeaker cable (1 m). Conectar el interruptor de palanca (magnética) i2 y el poder p1 al cable W1 disponible y una batería de 9V.
2. Sensibilidad determinación del método
- En un tubo de microcentrífuga de 1,5 ml, preparar soluciones de [Ru (bpy) 3] Cl 2 en el agua de ósmosis inversa (100 l) en cantidades de 260 mg (347 nmol), 52 mg (69 nmol), 26 mg (34 nmol) , 5 g (6,9 nmol), 3 g (3,5 nmol), 520 ng (694 pmol), 260 ng (347 pmol), 52 ng (69 pmol), 26 ng (34 pmol), 5 ng (6,9 pmol), y 3 ng (3,5 pmol).
- Mezclar 100 l de cada [Ru (bpy) 3] Cl 2 solución con 100 l de una solución acuosa de nitrato de cerio amonio ((NH4) 2 Ce (NO 3) 6) en agua (25 mM) en un portaobjetos de microscopio.
- Configurar la adquisición en el lector de bioluminiscencia inicializando el software de imágenes.
- Iniciar sesión en el perfil de usuario y buscar la adquisición del panel de control. Haga clic en "Iniciar" y esperar hasta que el instrumento está listo.
- Busque "Modo de imagen" y asegúrese de que "luminiscente" y "Fotografía" se comprueban y que "fluorescente" no esté marcada.
- Cambio "tiempo de exposición" para establecer "luminiscente" a 20 s. Establecer los ajustes restantes para "luminiscente" de la siguiente manera: "Agrupación": Media; "F / parada": 1; y "filtro de emisión": Abierto.
NOTA: que tenga que ser adaptada de acuerdo con la instrumentación y configuración experimental utilizada Los tiempos de exposición, si es diferente de la configuración presentada. - Por "Fotografía", utilice los siguientes ajustes: "El tiempo de exposición": auto; "Agrupación": Media; y "F / parada": 8. Ajuste el "Asunto Altura" en las imágenes de target.Look para el menú desplegable "Campo de visión". El ajuste inicial es "C" Cambiará a "B" (14 cm de distancia entre la cAmera y etapa de la muestra).
- Configurar el nebulizador mediante la colocación de un portaobjetos de microscopio en una hoja de papel de construcción negro en el suelo de la cámara de formación de imágenes para protegerlo de agente oxidante. Mezclar un 100 μLdroplet de [Ru (bpy) 3] 2 Cl solución al con 100 l de una solución acuosa de (NH4) 2 Ce (NO3) 6. Observe el cuadro de cruz verde.
- Colocar el tema de imagen en el papel de construcción negro, de tal manera que el área de interés está en el centro de la caja de luz verde en forma de cruz aparece en la etapa de la muestra. Preparar el nebulizador separando la botella con atomizador de plástico del soporte de madera. Llene una solución de trietilamina (1: 3 en agua / etanol) en su depósito de plástico y vuelva a conectarlo al soporte de madera.
- Coloque el nebulizador en el interior del lector de bioluminiscencia y asegúrese de que el cable de alimentación está desconectado del cable de nebulizador. Asegúrese de que el interruptor de encendidoestá activado, el interruptor de palanca está apagado, y el LED rojo está encendido Coloque el nebulizador de tal forma que el flujo de pulverización está dirigido hacia el área de interés en la materia de formación de imágenes, al tiempo que minimiza la vista obstrucción de la cámara hacia el tema de formación de imágenes por la cabeza de la boquilla de pulverización.
- Colocar las piezas pequeñas, negro de papel de construcción más puntos calientes potenciales (por ejemplo, las marcas blancas en las placas del microscopio o en los sitios de inyección) para protegerlos de aerosol. Coloque al menos 40 cm de la cuerda alejada nebulizador dentro de la cámara de formación de imágenes, de manera que no interfiera con el sujeto de formación de imágenes, el nebulizador, o el pestillo de la puerta magnética. Cierre la puerta del sistema de imagen.
NOTA: El punto de mira cambiará el tamaño basándose en el "campo de visión" en la configuración "imagen viva"; asegúrese de que está ajustado a "B".
- Adquirir una imagen mediante el inicio de la secuencia de imágenes. Haga clic en "Adquirir" en el "Panel de control de adquisición". En la primera imagen lentejcia, permiten el guardado automático si se desea (recomendado) y elija una carpeta de datos. Ignorar el cuadro de diálogo "Editar etiquetas de formación de imágenes" hasta el final de la secuencia.
NOTA: El software de control muestra las acciones del instrumento paso a paso en tiempo real. Después de preparar la medición y moviendo la etapa de la muestra a la posición correcta, se abre el obturador de la cámara y cuenta el tiempo de medición. La apertura del obturador también puede ser escuchado por un sonido de clic generada por la máquina. - A medida que se abre el obturador, rocíe tres explosiones de una solución de trietilamina (1: 3 en agua / etanol, 0,24 ± 0,04 ml por ráfaga spray) cambiando el interruptor de palanca de tres veces para generar quimioluminiscencia.
NOTA: La etapa de la muestra se mueva durante la medición. Deje suficiente cable (mínimo 40 cm) dentro del instrumento para permitir esto. Asegúrese de que la solución a pulverizar por el nebulizador puede ser aspirado por el tubo ascendente y que no hay burbujas de aire en la tubería. Tienen varias incluye batería de repuestos para el nebulizador listo en caso necesario.
3. Después de imágenes in vivo Sistémico inyección intravenosa
- En un tubo de microcentrífuga de 1,5 ml, preparar 100 l de solución salina tamponada con fosfato (PBS) que contiene entre 8 y 33 nmol de [Ru (bpy) 3] Cl 2. Preparar una solución acuosa de (NH 4) 2 Ce (NO 3) 6 en agua (25 mM) al mismo tiempo.
- Por vía intravenosa inyectar 100 l de [Ru (bpy) 3] Cl 2 en la vena caudal de ratones sanos (n = 5).
- La eutanasia a los ratones 10 minutos después de la inyección mediante asfixia con CO2.
- Quitar la piel con un Y-corte del torso, a continuación, quitar el arco costal en forma de U para exponer el corazón y los pulmones. Perfundir los ratones mediante la reducción de una salida en la aurícula derecha y la inyección de 20 ml de PBS a través de una aguja de calibre 24 en el ventrículo izquierdo 18. Corte con cuidado a través del vientrepiel y exponer el riñón y el hígado. Cortar longitudinalmente a través de los órganos para crear un corte visible.
- Configurar la adquisición como se describe en los pasos 2,3-2,6, con los siguientes cambios.
- Después de lavar a fondo el depósito de plástico nebulizador, llenarlo con una solución de (NH4) 2 Ce (NO3) 6 en agua (25 mM) en lugar de trietilamina.
NOTA: Es importante aclarar a fondo la boquilla del nebulizador después de cada uso, dado que la cristalización (NH4) 2 Ce (NO3) 6 pueden destruir la boquilla de pulverización después de varios usos.
- Después de lavar a fondo el depósito de plástico nebulizador, llenarlo con una solución de (NH4) 2 Ce (NO3) 6 en agua (25 mM) en lugar de trietilamina.
- Utilice el conjunto de muestras de órganos animales o para la imagen.
- Para obtener imágenes de todo el abdomen, coloque la carcasa del ratón con el abdomen abierto frente a la cámara y la cabeza apuntando hacia la parte posterior del instrumento. Centrar el órgano para formar una imagen (por ejemplo, el hígado o el riñón) en el cuadro de luz verde en forma de cruz.
- Fo individuo de imágenes de órganos y cuantificación, quitar el ratón desde el instrumento de imagen y el pin hacia abajo. A partir de la cavidad del cuerpo ya abierto-, extirpar los órganos internos (por ejemplo, riñón, hígado, pulmón, músculo, bazo, cerebro, y corazón). Corte a través de la piel de la pierna trasera para extirpar el tejido muscular. Abra cuidadosamente el cráneo con un bisturí para cortar el cerebro.
- Si el órgano de interés es el hígado, los riñones o el bazo, cortar todos los órganos en la mitad longitudinalmente, coloque cada órgano en una placa de Petri o un pedazo de papel de construcción negro.
- Siga el procedimiento descrito en los pasos 2.3-2.6 para establecer la relación de emisión del trazador de quimioluminiscencia de órganos individuales.
4. imágenes in vivo de los ganglios linfáticos
- Preparar 10 l de una solución de PBS que contiene 80 nmol de [Ru (bpy) 3] Cl 2. Preparar una solución acuosa de (NH 4) 2 Ce (NO 3) 6 en water (25 mM) al mismo tiempo.
- Inyectar 10 l de la solución por vía subdérmica en la pata trasera de ratones sanos (n = 5). Como control negativo, inyectar la pata contralateral con 10 l de PBS puro. Sacrificar los ratones mediante asfixia con CO2 15 minutos después de la inyección. Retire la piel de ambas patas traseras para dejar al descubierto los canales linfáticos hasta los ganglios linfáticos poplíteos.
- Configurar la adquisición como se describe en el paso 3.4.
- Extraer los ganglios linfáticos poplíteos de ambas patas traseras, cortarlos por la mitad, y rociarlas con oxidante en un plato de Petri, como se ha descrito antes (etapa 3.5.3), con el propósito de cuantificación.
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Representative Results
El sistema nebulizador se describe en la sección de protocolo 1 puede construirse a partir de materiales fácilmente disponibles a un bajo costo. Se tiene la intención de ser una inserción para-remoto activado pulverización del agente reductor / oxidante dentro de un lector de bioluminiscencia (Figura 1). Nuestro diseño permite la operación segura del nebulizador en el lector de bioluminiscencia a una distancia de 14 cm desde el objetivo. No se observó ningún empañamiento o difuminación de la lente durante la operación. Hemos seleccionado el agente quimioluminiscente disponible comercialmente [Ru (bpy) 3] Cl 2 para el desarrollo de nuestro método basado en su bajo precio, la estabilidad en solución acuosa, el comportamiento redox bien descrito, y las propiedades de quimioluminiscencia (figura 2) 19. La señal mínima detectable se puede determinar como se describe en la sección 2 del protocolo mediante la oxidación de una gota de [Ru (bpy) 3] Cl 2 (100 l, 6,9 pmol- 347 nmol en H2O) con (NH4) 2 Ce (NO3) 6 (100 l, 25 mM) en un portaobjetos de microscopio. Luego, utilizando el nebulizador y la pulverización de una solución de trietilamina (1: 3 en agua / etanol), se activa la señal quimioluminiscente. En nuestro caso, se determinó la señal detectable mínimo para ser 6,9 pmol / cm 2 (Figura 3). Es concebible, sin embargo, que optimiza las condiciones de reacción, la sensibilidad de la cámara, los tiempos de obturación, volúmenes y concentraciones de reactivos podrían conducir a los umbrales de detección aún más bajos. Estas condiciones de reacción también se pueden usar para explorar y probar la quimioluminiscencia de cualquier combinación dada de complejos metálicos, agentes oxidantes, y reductores.
Pasando a los experimentos in vivo en los apartados 3 y 4 del protocolo, desnudos femeninos (no consanguínea) ratones 5-6 semanas de edad y ratones machos NU / J 6-8 semanas de edad fueron utilizados. Para inyecciones intravenosas, las cantidades de8-33 nmol de [Ru (bpy) 3] Cl 2 en 100 l de PBS por ratón (n = 5) fueron elegidos. Los animales se sacrificaron 10 min después de la inyección, y la cavidad abdominal se expuso. Los ratones se colocaron en el lector de bioluminiscencia con el nebulizador que señala hacia el tejido de interés (Figura 4). Para imágenes con inyecta por vía intravenosa-[Ru (bpy) 3] Cl 2, se detectó predominantemente la señal quimioluminiscente en los riñones, lo que sugiere fuertemente la eliminación renal de la molécula pequeña hidrófilo (Figura 5). Relaciones de señal a ruido para los ratones inyectados con [Ru (bpy) 3] Cl 2 frente a PBS fueron 27/1 para el riñón y 21/1 para el hígado. Para imágenes de ganglios linfáticos, 80 nmol de [Ru (bpy) 3] Cl 2 en 10 l de PBS se inyectaron por vía subdérmica en la almohadilla de la pata trasera de los ratones (n = 5). Los ratones fueron sacrificados 15 minutos después de la inyección mediante asfixia con CO2. La piel que cubre tanto el interior patas traseras was eliminado para exponer el músculo, ganglios linfáticos y vasos linfáticos. Tras la visualización de quimioluminiscencia de los ganglios linfáticos poplíteos condujo a la observación de que los ganglios linfáticos que contienen [Ru (bpy) 3] 2+ mostrar un 10 ± 4,3 veces luminosidad mayor que los no tratados (167.000 p / (s cm × 2 × sr) y 17.000 p / (s · cm 2 × sr); p <0,028) (Figura 6).
Figura 1: Fotografía del nebulizador. Partes usadas: piezas de la estructura de madera (A, B, C), botella de spray (D), varillas de acero (E), cinta adhesiva (F), bridas de plástico (G), 011 conector servo parte (H), servomotor (I), lápiz ( J) en poder de clip de papel doblada (K), recubiertas de plástico precintos de alambre (L) conector de cable W1 (M) y el cable del altavoz (N) que conduce a la batería. Esta cifra se basa en la investigación publicada originalmente en la refrencia 19. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Figura 2. Propiedades de [Ru (bpy) 3] 2+. Estructura (A) y espectros de excitación y de emisión (B) de [Ru (bpy) 3] 2+. La oxidación / reducción basada ciclo catalítico quimioluminiscente (C). Esta cifra se basa en una investigación publicada originalmente en 19 de referencia. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Figura 3: Umbral de detección de [Ru (bpy) 3] 2+. intensidades de señal representativas a diferentes concentraciones de [Ru (bpy) 3] 2+ en un portaobjetos de microscopio (A). La cuantificación de la señal de imagen con umbral de detección (línea roja punteada) y el fondo (negro línea de puntos) (B). Esta cifra se basa en una investigación publicada originalmente en 19 de referencia. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Figura 4: La quimioluminiscencia de imagen. Dibujo esquemático de un ratón y un nebulizador posicionado en el lector de bioluminiscencia (A g>) y el dibujo esquemático (B) del nebulizador pulverización en un ratón. Esta cifra se basa en una investigación publicada originalmente en 19 de referencia. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Figura 5: Detección de [Ru (bpy) 3] 2+ después de la administración sistémica. La luz blanca, quimioluminiscencia, y superposición (de izquierda a derecha). Imágenes de una cavidad corporal de ratón que fue inyectado con 33 nmol de [Ru (bpy) 3] 2+ y rociado con (NH 4) 2 Ce (NO 3) 6. Las puntas de flecha blancas hacia el riñón derecho. Esta cifra se basa en una investigación publicada originalmente en 19 de referencia.ftp_upload / 54694 / 54694fig5large.jpg "target =" _ blank "> Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Figura 6: Detección de [Ru (bpy) 3] 2+ tras la administración subdérmica. Poplítea formación de imágenes del ganglio linfático que muestra la luz blanca, quimioluminiscencia, y las imágenes de material compuesto para los ratones inyectados con [Ru (bpy) 3] 2+ (arriba) y PBS (parte inferior) en las extremidades traseras; 80 nmol en 10 l de PBS, fotografiada 15 min después de la inyección (A). La luz blanca y las imágenes compuestas de [Ru (bpy) 3] 2+ (parte superior) y PBS (abajo) tratados con extirparon los ganglios linfáticos poplíteos (B). La cuantificación de las señales quimioluminiscentes de PBS y [Ru (bpy) 3] 2+ ganglios linfáticos tratados con (C) .La datos representan la media ± SD. Esta cifra se basa en la investigación originalpublicada inreference 19. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
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Discussion
Aquí, hemos presentado una tecnología que es capaz de delinear ópticamente tejido por medio de la emisión de fotones creados por un reportero de quimioluminiscencia. En contraste con otras, más establecido, las tecnologías de 4, 5, 6, 7, 8, 9, este sistema reportero quimioluminiscente emplea una sonda de formación de imágenes que no es radiactivo y facilita la detección a niveles muy altos de sensibilidad. Quizás aún más importante, las imágenes de quimioluminiscencia no requiere una fuente de luz incidente (como en la imagen de fluorescencia óptica) 20, un rasgo que minimiza la autofluorescencia y reduce drásticamente las señales de fondo.
El reportero de rutenio [Ru (bpy) 3] Cl 2 tiene una in vivo toxicidad tolerable para fines de imagen (intLD raperitoneal ratón 50: 20 mg / kg) 21, es soluble en agua (hasta 8 mM), y es estable en el torrente sanguíneo. Las propiedades físico-químicas del complejo de metal están bien caracterizados y ya han sido investigados para la terapia fotodinámica del cáncer 22, 23. El agente oxidante (NH 4) 2 Ce (NO 3) 6 se ha informado que tienen una toxicidad muy baja (LD oral rata 50: 1.600 a 3.200 mg / kg) 24 y es soluble en agua a concentraciones de hasta 2,57 M en 20 ° C 25. En este artículo, una demostración visual, así como orientación basado en texto para la construcción de un dispositivo de nebulización operado a distancia-se presentan. Además, proporcionamos protocolos robustos para obtener imágenes de quimioluminiscencia en un dispositivo de imágenes de bioluminiscencia estándar. Se ilustra el uso de [Ru (bpy) 3] Cl 2 para los visualizatien tejidos después de ambas inyecciones intravenosas y subdérmicos en ratones.
Sin embargo, como con cualquier otra tecnología de imagen naciente, hay espacio para la mejora de nuestros protocolos. Creemos que este estudio de prueba de principio podría estimular el desarrollo de múltiples aplicaciones de quimioluminiscencia de los sistemas vivos. Los siguientes puntos pueden ser dirigidas a mejorar aún más la tecnología y ampliar su ámbito de aplicación.
Una segunda generación más pequeño de dispositivos de pulverización de forma remota desencadenados permitiría que la muestra a estar más cerca de la cámara, mejorando por lo tanto la resolución espacial. equipo óptico mejorado podría mejorar aún más los límites de detección del método. El protocolo también podría extenderse a la formación de imágenes de animales vivos. Control exacto del par (por corriente y tensión) permitiría un control más preciso del volumen de reactivo liberado con cada pulverización. Es importante mantener el nebulizador bien mantenido. No enjuague el nebulizador puede destruir la nozzLe. Una batería nueva es crucial para el correcto desempeño del nebulizador. Sin embargo, todos los materiales utilizados para el nebulizador son baratos y fácilmente disponibles comercialmente. Siguiendo los protocolos establecidos sintéticos, el [Ru (bpy) 3] 2+ complejo puede ser modificado fácilmente con varios conectores, incluyendo maleimidas 26, 27 aminas, y ésteres de NHS 28, 29. Esto permitiría bioconjugation, pequeñas moléculas, péptidos o anticuerpos, y que de este modo facilitar la orientación molecular específica 30, 31, 32, 33. En última instancia, la entrega sonda específica podría permitir a los cirujanos identificar lesiones pequeñas y para delinear con precisión los márgenes quirúrgicos en la sala de operaciones con muy alta especificidad. Además, la encapsulación de la altamente soluble en agua [Ru (bpy) 3] 2+ en nanomateriales-dirigidos y no dirigidos tanto, puede también permiten la visualización de las lesiones mientras están siendo extirpado quirúrgicamente 34, 35, 36. Por último, la modificación de la esfera de coordinación del reportero de complejo de metal y / o cambiar el propio centro de metal de transición representan rutas atractivas para modular y ajustar las longitudes de onda de emisión dentro de lo visible y NIR rangos de 37, 38.
formación de imágenes de quimioluminiscencia intraoperatoria necesita un reportero quimioluminiscente y, en nuestro caso, un oxidante, que sólo puede ser utilizado dentro de los límites de su toxicidad y solubilidad. membranas de tejido pueden representar una barrera para la difusión del oxidante en el tejido, y por lo tanto, la generación de la señal. Desde el reportero quimioluminiscente sólo se está generando un fotón por ciclo, la señal generada es más bien débil.Por tanto, la luz ambiente en la sala de operaciones tendrá que ser impedido entrar en la cámara mientras que la técnica está en uso. Esto podría hacer que ICI particularmente interesante para el desarrollo de aplicaciones laparoscópicas, que se excluye, naturalmente, la luz ambiente.
Esperamos que este método puede convertirse en una herramienta valiosa para los cirujanos en el quirófano. La ausencia de radiactividad es beneficioso para el paciente y el equipo operativo por igual y hace menos precauciones de seguridad necesarias, lo que podría prestar esta técnica en una alternativa más atractiva.
El buen funcionamiento del nebulizador y su posicionamiento desempeñan un papel crucial para obtener buenos resultados. ángulos subóptima y áreas pueden contribuir a la señal de varianza. El cable de control debe ser puesto a través de la puerta con cuidado, y suficiente cable tiene que permanecer en el interior del lector de bioluminiscencia para que no se obstaculiza o arrancado.
En última instancia, chemiluminescence de imágenes es un nuevo enfoque muy atractivo para la imagen molecular. Se basa en una base de la química bien establecida, emplea materiales de bajo costo y fácilmente disponibles, y rehuye tanto fuentes de luz de excitación y la radiación. Como resultado, los dos somos optimistas y confiamos en que en un futuro, las imágenes de quimioluminiscencia podría tener un profundo efecto en el tratamiento quirúrgico de la enfermedad.
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Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Wood part A (12.5 × 2.5 × 1.8 cm) | Woodcraft | 131404 | Cut from a 3/4” x 24” x 30” birch plywood sheet |
| Wood part B (12.7 × 10.7 × 1.8 cm) | Woodcraft | 131404 | Cut from a 3/4” x 24” x 30” birch plywood sheet |
| Wood part C (11 × 2.5 × 1.8 cm) | Woodcraft | 131404 | Cut from a 3/4” x 24” x 30” birch plywood sheet |
| Screws (4 × 25 mm) | Screwfix | 79939 | |
| Harmon Face Values 3 oz mini sprayer | Bed, Bath and Beyond | ||
| stainless steel rod (10 cm of 1/16” steel) | Metals Depot Int. Inc. | 2192 | |
| Pencil Classic HB | Papermate | 58592 | |
| Paper clip | Office Depot | 221720 | |
| speaker cable | RCA Inc. | AH1650SN | |
| Energizer 9V alkaline battery | Energizer Holdings Inc. | EN22 | |
| Hitech HS-82MG Micro Servo Motor, 3.4 kg/cm output torque @ 6V | Hitech RCD USA Inc. | 32082S | |
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 28 cm plastic cable ties | General Electric Inc. | 50725 | |
| Duct tape | 3M Inc. | 3939 | |
| littleBits w1 wire | littleBits Inc. | w1 wire | |
| littleBits p1 power | littleBits Inc. | p1 power | |
| littleBits i2 toggle switch | littleBits Inc. | i2 toggle switch | |
| littleBits 011 servo | littleBits Inc. | 011 servo | |
| 20 cm plastic covered wire twist ties | Four Star Plastics | 71TIE8000 | |
| Tris(2,2′-bipyridyl)dichlororuthenium(II) hexahydrate | Sigma-Aldrich Inc. | 224758 | |
| Ammonium cerium(IV) nitrate | Sigma-Aldrich Inc. | 22249 | |
| Isofluorane | Baxter Healthcare | 1001936060 | |
| PBS | Sigma-Aldrich | PBS1 | |
| Ethanol | Sigma-Aldrich | 2854 | |
| Triethylamine | Sigma-Aldrich Inc. | T0886 | |
| Water | Water was purified using a Milipore Mili-Q (R ≥ 18 MΩ) | ||
| Female nude (outbred) mice | Jackson Laboratories | 1929 | age 5 - 6 weeks |
| Strain C57BL/6J | |||
| NU/J male mice at | Jackson Laboratories | 2019 | age 6 – 8 weeks |
| IVIS 200 bioluminescence reader | Caliper Live Science | ||
| Live Image 4.2 software | Perkin-Elmer | 128165 | |
| Microscope slides | ThermoScientific | 4951PLUS4 |
References
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