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JoVE Journal Cancer Research
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Cancer Research

hyperpolarized Published: December 30, 2016 doi: 10.3791/54751
Automatic Translation
*1,2,3, *1, 1, 1,2, 1, 3,4, 1,5,6, 1, 2, 3, 3, 1
1Department of Nuclear Medicine, Klinikum rechts der Isar, Technische Universität München, 2Department of Chemistry, Technische Universität München, 3GE Global Research, 4Zentralinstitut für Medizintechnik der Technischen Universität München (IMETUM), Technische Universität München, 5Institute for Biological and Medical Imaging (IBMI), Helmholtz Zentrum München, 6IDG Institute of Developmental Genetics, Helmholtz Zentrum München
* These authors contributed equally

Abstract

Negli ultimi decenni, nuovi metodi per la stadiazione del tumore, ristadiazione, monitoraggio risposta al trattamento, e la rilevazione ricorrenza di una varietà di tumori sono emersi in concomitanza con la tomografia state-of-the-art emissione di positroni con 18 F-fluorodeossiglucosio ([18 F ] -FDG PET). 13 C spettroscopia imaging a risonanza magnetica (13 CMRSI) è un metodo di imaging minimamente invasivo che permette il controllo del metabolismo in vivo ed in tempo reale. Come con qualsiasi altro metodo basato su 13 C risonanza magnetica nucleare (NMR), affronta la sfida di bassa polarizzazione termica e una successiva basso rapporto segnale-rumore dovuto alla relativamente basso rapporto giromagnetico di 13 C e la sua bassa abbondanza naturale in campioni biologici. Superando questi limiti, la polarizzazione nucleare dinamica (DNP), con conseguente scioglimento del campione ha recentemente permesso comunemente utilizzati sistemi di imaging a risonanza magnetica (MRI) NMR e misurare, Lo studio, e di immagine principali vie metaboliche nei vari sistemi biologici. Una molecola particolarmente interessante e promettente utilizzato in 13 CMRSI è [1- 13 C] piruvato, che, negli ultimi dieci anni, è stato ampiamente utilizzato in vitro, preclinici, e, più recentemente, studi clinici per indagare il metabolismo energetico cellulare nel cancro e altre malattie. In questo articolo, descriviamo la tecnica di scioglimento DNP utilizzando un 3.35 T preclinico hyperpolarizer DNP e dimostrare il suo utilizzo in studi in vitro. Un protocollo simile per iperpolarizzazione può essere applicato per la maggior parte in studi in vivo pure. Per farlo, abbiamo utilizzato lattato deidrogenasi (LDH) e catalizzato la reazione metabolica di [1- 13 C] piruvato in [1- 13 C] lattato in una linea di cellule di carcinoma della prostata, PC3, in vitro utilizzando 13 CMRSI.

Introduction

Attualmente, il metodo clinico più utilizzato per la stadiazione del tumore, ristadiazione, monitoraggio risposta al trattamento, e la rilevazione ricorrenza di una vasta gamma di tumori è [18 F] -FDG PET. 1 Tuttavia, recentemente, diversi approcci nuovi e alternativi sono emersi. Uno di questi metodi è 13 CMRSI. Questa tecnica prevede l'introduzione del 13 C-molecola in un campione biologico, seguita da MRI minimamente invasiva per valutare il metabolismo in vitro o in vivo in tempo reale. Tuttavia, la sfida del 13 CMRSI, rispetto agli altri metodi come [18 F] -FDG PET o tomografia computerizzata, è il basso rapporto segnale-rumore.

Il segnale NMR è direttamente proporzionale al livello di polarizzazione, un rapporto tra la differenza di popolazione di spin ½ nuclei in due stati di energia alla popolazione totale (Figura 1A). La polarizzazione è un prodotto di the rapporto giromagnetico (γ) dei nuclei e l'intensità del campo magnetico applicato sopra la temperatura. Una polarizzazione tipica di 1 H nuclei è dell'ordine di 0,001% a 0,005% a 3 T, che dà una relativamente scarsa rapporto segnale-rumore. Odierna state-of-the-art MRI è stato un metodo di imaging successo solo a causa della grande abbondanza di 1 H in campioni biologici e l'elevato rapporto giromagnetico di 1 H (γ 1H = 42,576 MHz / T). Tuttavia, osservando altri nuclei, come carbonio, è più esigente. L'unica stabile, isotopo di carbonio magneticamente attivi, 13 C, costituisce solo l'1,1% di tutti gli atomi di carbonio. Inoltre, il rapporto giromagnetico di 13 C (γ 13C = 10.705 MHz / T) è quattro volte inferiore a quella del 1 H, portando ad una efficienza di rivelazione inferiore. In sintesi, la scarsa abbondanza 13 C e bassa 13C γ causano misurazioni 13 C termici per raggiungere 0,0176% della sensibilità di un 1Misurazione H-NMR in vivo.

Polarizzazione nucleare dinamica

Un metodo per superare la relativamente scarsa sensibilità di 13 misurazioni C è DNP. E 'stato originariamente descritto per i metalli nel 1953 da Albert W. Overhauser. Nel suo articolo, afferma: "Si dimostra che se la risonanza di spin elettronico degli elettroni di conduzione è saturo, i nuclei vengono polarizzati nella stessa misura sarebbero se il loro rapporto giromagnetico fosse quello dello spin dell'elettrone." 2 tardi quell'anno, Carver e Slichter sperimentalmente confermato l'ipotesi di Overhauser 3. Nel 1958, Abragam e Proctor descritti questo effetto per gli elettroni nei liquidi e chiamarono "l'effetto solido." A temperature inferiori a 4 K, electron spin polarizzazione raggiunge quasi il 100% ed è più di tre ordini di grandezza superiore al nucleare polarizzazione di spin (Figura 1B) 4. Tla verifica perché il rapporto giromagnetico dell'elettrone (γ e = 28024,944 MHz / T) è di tre ordini di grandezza superiore al rapporto giromagnetico nucleari. Le interazioni deboli tra elettroni e nuclei, come l'effetto Overhauser, l'effetto solido, l'effetto trasversale, e l'effetto di miscelazione termica, consentono il trasferimento di polarizzazione da electron spin a spin nucleari mediante irradiazione a microonde con una frequenza prossima al corrispondente elettroni risonanza paramagnetica (EPR) 5,6 frequenza. teoria DNP è stato ulteriormente sviluppato per coinvolgere più elettroni e miscelazione termica. Tuttavia, ad oggi, non unificato descrizione quantitativa teorica di DNP è stato pubblicato 7,8.

Figura 1
Figura 1: comprensione dinamica di polarizzazione nucleare e Iperpolarizzazione. A) Un confronto schematica della popolazione di spinnello stato di equilibrio di polarizzazione termico e lo stato iperpolarizzato. B) La polarizzazione dipende dalla temperatura. La polarizzazione di un elettrone (e -) raggiunge il 100% inferiore a 1,4 K. Il DNP permette il trasferimento della polarizzazione dalla e- ai 13 C nuclei, che aumenta la polarizzazione fino a 10 5 fold. Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.

Per introdurre DNP negli studi di sistemi biologici utilizzando 13 C NMR, successivo scioglimento rapido del campione doveva essere sviluppato. 50 anni dopo l'ipotesi di Overhauser, Jan H. Ardenkjaer-Larsen et al. risolto il problema tecnicamente impegnativo di portare il campione congelato iperpolarizzato allo stato liquido con una perdita minima iperpolarizzazione 6. Scioglimento DNP ha aperto un nuovo campo di ricerca chiamato 13 CMRSIo, che fornisce un nuovo metodo per studiare e caratterizzare i vari stati di malattia 9,10. Come vettori stabili di un elettrone spaiato, un tritile tris radicale (8-carbossi-2,2,6,6-tetra (idrossietil) -benzo- [1,2-4,5] bis- (1,3) -dithiole-4-il) -metil sale di sodio (OX063) o oxyl (2,2,6,6-tetrametilpiperidin-1-il) (TEMPO) è di solito utilizzato. Questi sono mescolati con 13 molecola di C-marcato desiderata e esposti a irradiazione a microonde con una frequenza vicina alla frequenza corrispondente EPR. Usando questa tecnica, la polarizzazione di 13 C nuclei può essere aumentata fino al 37% 11. Ciò si traduce in un 10 5 fold miglioramento polarizzazione rispetto all'equilibrio termico di polarizzazione 11,12. Tuttavia, non appena l'irraggiamento a microonde è fermo e / o 13 C-molecola viene trasferito allo stato liquido, la polarizzazione decade con il tempo di rilassamento longitudinale (T 1) del nucleo 13 C che è stato polarizzato. Così, lainvenzione di tecniche di dissoluzione veloce o qualsiasi successiva tecnica accorciando il tempo prima misura sperimentale (ad esempio, l'iniezione) è di fondamentale importanza per le applicazioni biologiche 13.

Ci sono tre requisiti principali che la molecola candidato deve soddisfare per successo 13 studi CMRSI. Innanzitutto, il nucleo 13 C di interesse deve avere un tempo sufficientemente lungo T 1 (> 10 s). La scelta del 13 C-label è cruciale. Le migliori nuclei candidati sono atomi di carbonio con alcun contatto diretto con 1 H-nuclei tramite un legame. Inoltre deve essere rapidamente metabolizzato entro 2 - 3 T 1 volte, risultando in un prodotto metabolico a valle con una significativamente diverso chemical shift dalla sostanza originale. La miscela campione deve inoltre formare un vetro amorfo allo stato solido in modo che la distribuzione spaziale diminuisce la distanza tra l'elettrone e 13 C, permettendo transFer di polarizzazione. Se la molecola candidata non forma vetrosa amorfa naturalmente, deve essere altamente solubile in un agente glassing, come il glicerolo o dimetilsolfossido 14. Questi requisiti comportano un numero relativamente piccolo di molecole candidate. Tuttavia, anche dopo la scoperta di successo di una molecola adatta, sviluppando un protocollo di lavoro per iperpolarizzazione può essere tecnicamente impegnativo 9,14,15.

Negli ultimi anni, diversi substrati sono stati correttamente polarizzata, ad esempio [1- 13 C] piruvato 12,16 - 36, [2- 13 C] piruvato 37, [1- 13 C] etil piruvato 38, [1- 13 C ] lattato 39, [1- 13 C] fumarato 40-43, 13 C-bicarbonato 36,44,45, [1- 13 C] acetato di sodio 43,46 - 49, 13 C-urea 6,36,50,51 , [5- 13 C] glutamine 15,52,53, [1- 13 C] glutammato 53,54, [1- 13 C] 2-oxoglutarato 55, [1- 13 C] alanina, e altri 14,56. Un substrato particolarmente interessante e comunemente usato per iperpolarizzazione è [1- 13 C] piruvato. E 'ampiamente utilizzato negli studi preclinici per indagare il cellulare energetico del metabolismo in varie malattie 14,17,22. [1- 13 C] piruvato soddisfa tutti i requisiti per iperpolarizzazione successo, compreso un relativamente lungo T 1 e rapido trasporto attraverso la membrana cellulare prima successivamente essere metabolizzata. Gli studi preclinici con [1- 13 C] piruvato vengono attualmente tradotte in clinica 57.

Il metabolismo del piruvato

E 'ben noto che vi è un legame diretto tra le mutazioni nel DNA e cambiamenti nelle loro vie metaboliche un cancro cellule. Già nel 1920, Otto Warburg scoEred che vi è un aumento del metabolismo del glucosio e la produzione di lattato in tumori rispetto al tessuto sano 58 - 60. Successivamente, varie alternanze di altre vie metaboliche, come la via dei pentoso-fosfati, il ciclo degli acidi tricarbossilici, fosforilazione ossidativa e la sintesi dei nucleotidi e lipidi, sono stati descritti.

Il piruvato è il prodotto finale della glicolisi. Nel tumore, subisce glicolisi anaerobica catalizzata dalla LDH 61 e reagisce con la forma ridotta del coenzima nicotinamide adenina dinucleotide (NADH), con conseguente lattato e la forma ossidata del coenzima (NAD +). In alternativa, piruvato subisce una reazione di transaminazione con glutammato per formare alanina, catalizzata da alanina transaminasi (ALT). Entrambe le reazioni sono facilmente reversibili. Piruvato subisce decarbossilazione catalizzata dalla piruvato deidrogenasi (PDH) in anidride carbonica e acetil-CoA, representing una reazione irreversibile, in questa fase. Alternanze di queste velocità di reazione possono essere collegati al metabolismo tumorale 17,21,22,25,62. Le vie metaboliche sono riassunti nella figura 2.

figura 2
Figura 2: Schema del forte reazione metabolica del piruvato. Piruvato / conversione del lattato è catalizzata dalla LDH, e la conversione piruvato / alanina è catalizzata da ALT. Il piruvato è irreversibilmente convertito in acetil-CoA e CO 2 di PDH, e CO 2 è in un equilibrio pH-dipendente con bicarbonato 80. Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.

Il rilevamento di iperpolarizzato [1- 13 C] piruvato e dei suoi metaboliti è stata precedentemente dimostrata nel ratto haArte 37,63 - 65, del fegato 66, muscoli, reni e 62,67. Uno studio ha dimostrato differenze significative nel rapporto lattato-to-alanina tra il normale e digiuno fegato di ratto 66 e dimostrato un [1- 13 C] livello lattato altamente elevato e iperpolarizzato nel cancro del fegato 68,69. Ci sono prove che il grado del tumore può essere identificato in un adenocarcinoma prostatico transgenico di mouse (TRAMP) utilizzando hyperpolarized [1- 13 C] piruvato 22, con i livelli di lattato hyperpolarized che mostrano una forte correlazione con il grado istologico dei tumori asportati. L'alanina catalizzata dalla piruvato dal ALT stato anche suggerito come marker utile nel ratto carcinoma epatocellulare 23.

La misurazione del flusso metabolico piruvato-lattato è stato utilizzato per il monitoraggio di ischemia 63,65,70 e come risposta al trattamento con farmaci chemioterapia citotossica 17,40, mirati <sup> 24,25,41, 26 o radioterapia in modelli animali. E 'stato utilizzato anche per il rilevamento della fosfatidilinositolo 3-chinasi (PI3K) inibitore della risposta LY294002 nel glioblastoma e il cancro al seno modelli murini 25. I cambiamenti nel metabolismo del piruvato in tumori cerebrali 26 e il cancro alla prostata 24,71 sono stati osservati anche dopo il trattamento.

Carcinoma della prostata

Il carcinoma della prostata è il cancro predominante negli uomini anziani e il secondo tumore che porta legate alla morte negli uomini in tutto il mondo 72. Ad oggi, esistono metodi affidabili, non invasivi sono disponibili per una diagnosi precoce e caratterizzazione di cancro alla prostata 73,74, sottolineando la necessità urgente di nuove tecniche di imaging metabolico per consentire la rilevazione rigorosa e la stadiazione dei pazienti. Carcinoma della prostata è stato usato come modello per dimostrare le possibilità di dissoluzione DNP combinati con 13 CMRSI nel pazienteS 57. Questo lavoro è stato continuato in un primo studio clinico che impiegano [1- 13 C] piruvato e 13 CMRSI per l'imaging del cancro alla prostata, ed è proprio di recente è stato completato (NCT01229618).

La motivazione di questo lavoro era di illustrare più in dettaglio e per un pubblico più vasto l'applicazione del metodo CMRSI 13 in un ambiente preclinico con le cellule. Misurare il metabolismo LDH-catalizzata di [1- 13 C] piruvato di [1- 13 C] lattato in vitro nella linea di cellule di carcinoma della prostata PC3, dimostriamo l'eventuale applicazione di scioglimento DNP negli studi in vitro e affrontare i punti cruciali e sfide durante gli esperimenti.

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Protocol

1. Campione della soluzione Stock Preparazione

  1. Aggiungere gadoterate meglumina (GadM, 0,5 mol / L) per concentrato [1- 13 C] acido piruvico per dare una concentrazione finale di 1-mmol / L GadM. Aggiungere tritile tris radicale (8-carbossi-2,2,6,6-tetra (idrossietil) -benzo- [1,2-4,5] bis- (1,3) -dithiole-4-il) - sale di sodio metil (OX063) a questa miscela per ottenere una concentrazione finale di 15 mmol / L. Vortex fino a completa dissoluzione.
    NOTA: Questa preparazione magazzino soluzione è stata progettata per l'utilizzo con un 3.35-T preclinica DNP hyperpolarizer. Quando viene utilizzato un hyperpolarizer clinica 7-T, la meglumina gadoterate non è necessario perché, in un campo magnetico maggiore, i suoi vantaggi sono trascurabili. L'aggiunta di un agente di contrasto gadolinio a base aumenta la polarizzazione ottenibile allo stato solido e anche il tasso di polarizzazione. Tuttavia, allo stato liquido, l'agente di contrasto accorcia il tempo di rilassamento T 1.

2. Crescere la coltura cellulare

    2 la crescita. Utilizzare mezzo F-12K contenente 10% di siero fetale bovino (FCS) e mantenere le cellule a 37 ° C in atmosfera umidificata al 5% CO 2. Prima della fase di dissoluzione, rimuovere il mezzo dal pallone di coltura.
    NOTA: Ogni linea cellulare richiede un particolare protocollo di preparazione per la propagazione delle cellule. Consultare i requisiti con il provider di linea cellulare.

3. Preparazione delle Cellule per l'esperimento

  1. Rimuovere il medium delle cellule e lavare le cellule con ~ 10 mL di tampone fosfato salino (PBS).
  2. Aggiungere 5 ml di tripsina al pallone e restituire i palloni di coltura cellulare per l'incubatore per 3 a 5 minuti.
  3. Aggiungere ~ 5 ml di mezzo F-12K per disattivare la tripsina.
  4. Contare le cellule utilizzando un contatore di cellule automatica. Mescolare 10 ml della soluzione di cellule con 10 ml di soluzione macchia. Mescolare bene con la pipetta e trasferire 10 ml della miscela in the camera di un "vetro contare".
  5. Rimuovere e contare le cellule nel pallone (s). Trasferire i volumi appropriati contenenti il numero desiderato di cellule (ad esempio, 5 x 10 6 fino a 10 8) in fiale di plastica.
  6. Centrifugare le cellule a 1200 xg per 5 minuti e scartare il surnatante.
  7. Risospendere le cellule in medium F-12K contenente 10% FCS ad un volume totale di 800 microlitri e trasferirli in una tazza di reazione (2 mL). Posizionare la coppa di reazione in una fiala di plastica riempito con acqua calda.

4. Scioglimento Preparato

NOTA: L'agente di dissoluzione è un liquido che viene utilizzato per sciogliere il campione iperpolarizzato. In applicazioni biologiche, dissoluzione viene solitamente eseguita con H 2 O o basato su ossido di deuterio (D 2 O) buffer basati, come PBS o tris (idrossimetil) amminometano (Tris), contenente acido etilendiamminotetraacetico 1 g / L (EDTA).

  1. preparazione di 20 mmol tampone / L PBS
    1. Per preparare 100 mL di agente di dissoluzione, sciogliere 36 mg di fosfato monosodico (NaH 2 PO 4), 247 mg di disodio fosfato (Na 2 HPO 4), e 10 mg di EDTA in una soluzione di idrossido / L di sodio 20 mmol ( NaOH) in D 2 O. Mix correttamente fino a completa dissoluzione.
      NOTA: EDTA (1 g / L) viene aggiunto al buffer per eliminare eventuali ioni ferromagnetici, che possono rovinare l'iperpolarizzazione. La NaOH è utilizzato per neutralizzare l'acido piruvico in un rapporto 1: 1 mol per raggiungere un pH di 7,4.

5. Temperatura Inserisci variabile (VTI) Cooldown

  1. Nella finestra principale del programma polarizzatore DNP-NMR, clicca su "raffreddamento."
    NOTA: Questo accende la pompa del vuoto e evacua il VTI a circa 5,0 mbar. Successivamente, la valvola a spillo tra il VTI ed il serbatoio elio liquido si apre completamente, permettendo elio liquido di fluire nel VTI. La portata è regulated dalla valvola a spillo per mantenere la quantità ottimale di elio liquido nel VTI fino a raggiungere la temperatura di ebollizione dell'elio. Poi, il VTI viene evacuato quasi completa vuoto e la temperatura raggiunge circa 1,4 K. Il VTI è riempito con elio liquido fino al 65%. A questo punto, lo strumento è pronto per l'inserimento del campione.

6. Preparazione del campione e inserimento

  1. Usando una micropipetta, aggiungere ~ 8 ml di 13 C-marcato soluzione di esempio stock in un bicchiere di plastica.
  2. Fissare il bicchiere di plastica per l'asta di inserimento e avviare il processo di inserimento del campione premendo il tasto "Inserisci campione" nella finestra principale del programma. Selezionare "campione normale" e cliccare su "Continua".
    NOTA: Durante questo processo, la valvola a spillo chiude prima di interrompere il flusso di elio liquido in VTI, e la pressione nel VTI quindi aumenta. Il titolare del campione all'interno del VTI è sollevata dal elio liquido, la valvola di aspirazionenella parte superiore della VTI apre, e un flusso di elio gassoso viene introdotto dalla valvola di aspirazione per evitare contaminazioni esterne dall'umidità dell'aria.
  3. Quando richiesto, spingere l'asta di inserimento con il bicchiere di plastica attaccato giù nel VTI. Assicurarsi per raggiungere il supporto esempio nella parte inferiore della VTI. Altrimenti, l'elio gassoso può spingere il campione dalla VTI.
  4. Staccare e rimuovere l'asta di inserimento.
  5. Terminare la procedura facendo clic su "Avanti" nella finestra di dialogo. La procedura di inserimento del campione non dovrebbe richiedere più di 10 s.
    NOTA: la valvola di aspirazione si chiude poi, il flusso di elio gassoso viene interrotta, il titolare del campione con la coppa campione viene immerso in elio liquido, e si apre la valvola a spillo per consentire l'elio liquido di fluire nel VTI. Dopo 5 - 10 min, il VTI viene raffreddato al di sotto 1.4 K, consentendo tutte le elettroni liberi di essere polarizzata.
  6. Verificare che il bicchiere di plastica con il campione è stato introdotto correttamente nella VTI controllando tcappello non è collegata alla barra inserimento o spinto fuori dal VTI gas elio. Quindi fare clic su "Fine".

7. Forno a microonde Sweep (opzionale)

NOTA: Una spazzata microonde permette la determinazione della frequenza delle microonde ottimale per massimizzare il tasso iperpolarizzazione dei 13 C nuclei nel composto di destinazione.

  1. Per misurare lo sweep microonde, avviare il programma RINMR, digitare "HYPERSENSENMR," e fare clic su "Seleziona Config" e "Do Microsweep."
  2. Per avviare il processo, selezionare la scheda "calibrare" sulla finestra principale del programma.
  3. Istruzioni "Generate" e scegliere l'inizio e la frequenza finale (ad esempio, 94,100 GHz-94,200 GHz), il passo di frequenza (ad esempio, 20 MHz), la potenza (100 mW), e il tempo (60 s). Fai clic su "Continua", "Attiva" e "Start".
    NOTA: Con queste impostazioni, il hyperpolarizer prima polarizza il campioneper 60 s utilizzando una frequenza di microonde 94.100 GHz e una potenza di 100 mW. Poi, si applica un impulso a 90 ° radiofrequenza (RF) e acquisisce il segnale iperpolarizzato 13 C utilizzando lo spettrometro incorporato. Questi passaggi vengono ripetuti per ogni passo di frequenza specificata. Per la successiva iperpolarizzazione, scegliere la frequenza a microonde con l'ampiezza del segnale massima misurata.

8. Polarizzazione

  1. Per misurare la polarizzazione build-up, avviare il programma RINMR, digitare "HYPERSENSENMR," e fare clic su "Seleziona Config" e "Build-up solido."
  2. Nella finestra principale del programma polarizzatore DNP-NMR, fai clic su "Polarizzazione" per avviare il processo di iperpolarizzazione.
  3. Scegliere la frequenza ottimale forno a microonde (ottenuto durante lo sweep a microonde) e la potenza (ad esempio, 100 mW) per il campione e fare clic su "Avanti".
  4. Attiva "Polarizzazione monitoraggio build-up" e fare clic su "Fine".
  5. Polarizzare il campione> 95% (~ 60 min [1- 13 C] piruvato).
    NOTA: Durante la polarizzazione, le microonde sono guidati nella VTI e al campione, causando il 13 C gira per allinearsi con gli spin di elettroni spaiati hyperpolarized. Per misurare l'accumulo iperpolarizzazione, impulsi RF con un flip angle (FA) del 5 ° vengono applicate periodicamente (ad esempio ogni 300 s), ed il segnale risultante viene tracciata come una curva accumulo polarizzazione.

9. Scioglimento

  1. Quando la polarizzazione raggiunge> 95%, avviare il processo di dissoluzione facendo clic su "Dissolution" nella finestra principale del programma polarizzatore DNP-NMR.
  2. Scegliere il processo di dissoluzione dal menu a tendina e cliccare su "Avanti".
    NOTA: Il polarizzatore consente di definire il processo di dissoluzione desiderato scegliendo la temporizzazione del gas caccia.
  3. Carico ~ 5 mL dell'agente di dissoluzione attraverso la valvola superiore in una pozza riscaldata in tegli lo scioglimento parte del polarizzatore. Calcolare il volume esatto dell'agente di dissoluzione necessario utilizzare seguente equazione:
    Equazione 1
    dove V è il volume DA desiderata di agente di dissoluzione, m PA, m OX063, e m Gad sono le masse del piruvato, OX063 e gadoterate meglumina, rispettivamente aggiunti alla soluzione di esempio stock.
  4. Posizionare il bastone dissoluzione in posizione operativa sopra la valvola di aspirazione.
    NOTA: Questo consente allo strumento di collegare la sua strumentazione dissoluzione alla coppa campione nel VTI.
  5. Fai clic su "Fine" per avviare il processo di dissoluzione.
    NOTA: L'agente di dissoluzione è pressurizzato a 3 bar gas elio e viene successivamente riscaldata fino a 200 ° C, provocando un aumento della pressione. Quando la pressione raggiunge 10 bar, la valvola a spillo chiude di interrompere il flusso di elio liquido nella VTI. Il titolare del campione alza la coppadal elio liquido. Il bastone di dissoluzione è abbassato nel VTI e collegato alla coppa campione. L'agente di dissoluzione condizionata è spinto dalla pressione, che risulta dal recipiente di riscaldamento contenente il tampone di dissoluzione ed elio, attraverso il bastone di dissoluzione alla tazza, provocando una rapida dissoluzione del campione. La soluzione poi esce nel pallone di raccolta tramite tubi di plastica. Il bastone di dissoluzione con la coppa in allegato viene poi portata dal VTI.
  6. Portare lo stick di dissoluzione con la coppa attaccato alla posizione di "pulizia" e terminare il processo con "Fine".

10. Riconoscimento del 13 C iperpolarizzato segnale

  1. 13 C metabolica spettroscopia di risonanza magnetica in vitro
    1. Miscelare 200 ml di 20 mmol / L disciolto campione iperpolarizzato dal pallone di raccolta con 800 microlitri della soluzione di cellule.
      NOTA: La concentrazione finale risultantedi [1- 13 C] piruvato è 4 mmol / L.
    2. Mescolare bene la sospensione con una micropipetta e trasferimento ~ 600 ml in un tubo NMR di 5 mm.
    3. Inserire il tubo NMR 5 mm nello spettrometro NMR 1-T. Nella finestra principale del software, fare clic su "Esegui" per avviare la misurazione, l'applicazione di una serie di un centinaio di 10 ° impulsi RF ogni 3 s.
      NOTA: Misurare il tempo tra la miscelazione iniziale del campione iperpolarizzato con le cellule e l'inizio dell'acquisizione spettroscopica. Assicurarsi che la procedura di miscelazione non supera i 30 s per ridurre al minimo la perdita di polarizzazione.
  2. 13 C metabolica risonanza magnetica
    1. Per costruire un contenitore per gli esperimenti in vitro utilizzando lo spettrometro RMN, prendere una siringa da 5 ml e collegarlo a un catetere (d = 1,2 mm) che è abbastanza lungo da raggiungere da iso-centro di spettrometro per l'area accessibile del spettrometro.
    2. Riempire il contenitore in vitro con °soluzione e cellule della concentrazione desiderata per l'esperimento (ad esempio, 10 8) o con una soluzione enzimatica.
    3. Collocare un contenitore in vitro all'isocentro del magnete MRI. Posizionare una bobina ricevente radio frequenza 13 C-sintonizzato sul contenitore. Posizionare un concentrato 13 C-marcato corpo di calibrazione (ad esempio, 10-mol / L 13 C-urea) nelle vicinanze.
    4. Inserire il "contenitore in vitro" nei pressi della iso-centro dello scanner NMR.
    5. Eseguire 3 serie piano sequenza di localizzazione dello scanner e regolare la posizione del contenitore in vitro al iso-center, in base alle esigenze.
    6. Eseguire un 1 H T2 ponderata sequenza "anatomica" che copre la vitro localizzazione contenitore. Utilizzare le seguenti impostazioni: spin echo 2D con orientamento assiale, tempo di ripetizione (TR) = 2.000 ms, tempo di eco (TE) = 20 ms, fetta di spessore = 1 mm, campo visivo che copre il contenitore in vitro, e16 echi per l'eccitazione. Assicurarsi che shimming campo viene fatta su protoni durante questa fase.
    7. Nelle immagini anatomiche, seleziona 5 fette contigue centrate sulla regione di interesse. Prescrivere un 13 C acquisizione calibrazione spettroscopica che copre le fette anatomiche selezionati. Utilizzare le seguenti impostazioni: 2D Block-Siegert sequenza di taratura con orientamento assiale 12 x 12 centric codificato, TR = 1.000 ms, spessore dello strato = 5 mm, campo di vista corrispondenti immagini anatomiche, numero di scansioni (NS) = 64, la larghezza di banda = 5.000 Hz, e FA = 90 °.
    8. Selezionare la sequenza di taratura spettroscopica 13 C (per ulteriori informazioni, vedere Schulte et al. 2011) 75 dalla libreria sequenza di impulsi. Scarica la sequenza di impulsi per lo scanner dal computer facendo clic su "Download". Clicca su "Spectra Prescan" per eseguire la scansione preliminare spettroscopica. Nella trama spettro grandezza, regolare il picco dal corpo di calibrazione 13 C al Center della frequenza scanner. Impostare i guadagni ricevitore al massimo. Fai clic su "Start" per eseguire la sequenza di calibrazione spettroscopica 13 C. Nota il guadagno di trasmissione e la frequenza riportata centric.
    9. Impostare una acquisizione 13 C di imaging chemical shift (CSI) che coprono le fette anatomiche selezionati. Utilizzare le seguenti impostazioni: 2D di imaging eco-planare spettroscopica (EPSI) con orientamento assiale 12 x 12 centric codificato, TR = 400 ms, spessore dello strato = 5 mm, campo di vista corrispondenti immagini anatomiche, NS = 300, e la larghezza di banda = 5.000 Hz .
      NOTA: i campioni EPSI una singola linea in k-spazio più volte dopo che uno di eccitazione RF di acquisire sia informazioni spaziali e spettrali contemporaneamente. Per ulteriori informazioni sulle tecniche di acquisizione, vedere l'articolo di Durst et al. 2015 76.
    10. Scarica la sequenza C CSI 13 ed eseguire il scansione preliminare spettroscopica. Regolare la frequenza di scansione e trasmettere il guadagno come specificato dalla sequenza di taraturaproduzione.
    11. Dopo che la soluzione iperpolarizzato viene depositato nel pallone di raccolta, elaborare ~ 3 ml in una siringa e poi iniettare nel catetere collegato al contenitore in vitro. Avviare l'acquisizione. Dopo l'acquisizione è stata completata, salvare il file di dati grezzi per la successiva ricostruzione.

11. Dati Ricostruzione

  1. Applicare uno dei due modelli cinetici descritti per analizzare i dati acquisiti.
    1. Nel primo metodo per descrivere la cinetica LDH, valore cinetica (k), confrontare la somma del segnale di lattato (M LAC) al segnale di tutte le molecole hyperpolarized (M x) 21,77.
      Equazione 2
    2. Nella altro metodo, misurare il lattato e piruvato segnali nel tempo e montare questi ad un modello di cinetica 17,25,71. Per risolvere il tasso di cambio metabolico, k PA → LAC, e l'effettivasegnale di velocità di decadimento del lattato, r LAC, utilizzare i seguenti equazioni differenziali lineari che utilizzano il modello di scambio differenziale di due siti, cedendo per lattato:

      Equazione 3

Nota: L'efficace segnale di lattato tasso di decadimento r LAC dipende dal tempo di rilassamento longitudinale lattato (T 1, LAC), il tasso di cambio metabolico opposta dal lattato a piruvato k LAC → PA, il applicata FA e TR, e l'intensità del segnale di piruvato (M PA) e lattato (M LAC), tenendo conto della riduzione del segnale irreversibile dopo ogni eccitazione successive:

Equazione 4

Pertanto, R LAC si traduce in un unico, inscindibile termine di decadimento del segnale. Poiché è possibile correggere per donnaha capovolgere angolazione e il tempo di ripetizione, e anche se vi è un flusso LAC → PA, si assume che il tasso di cambio da lattato a piruvato (k LAC → PA) non deve essere inclusa nel calcolo, in base ai risultati di Harrison et al. 2012 78. I loro risultati mostrano che la k LAC → PA non gioca un cruciale ruolo si potrebbe supporre. Questa modalità permette al T 1 tempo di rilassamento di lattato da quantificare. Questo modello è indipendente dell'amministrazione piruvato alla misura, che, nel caso di esperimenti in vitro, non è cruciale e può essere trascurato. Essa, tuttavia, svolgono un ruolo importante per le misurazioni in vivo in 79.

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Representative Results

I risultati del "microonde sweep" sono illustrati in Figura 3. Essa mostra che la frequenza delle microonde ottimale per [1- 13 C] campione piruvato è a 94,156 GHz per l'hyperpolarizer 3,35-T locale. Tutti seguente esperimento iperpolarizzazione (n = 14) sono state eseguite utilizzando questa frequenza a microonde con una potenza di 100 mW. L'irradiazione a microonde è stata applicata per 60 a 80 minuti, portando ad una iperpolarizzazione stato solido superiore al 90%. I risultati sono presentati in Figura 4. Il iperpolarizzato [13 C] piruvato è stato mescolato con 5 × 10 6 (n = 2), 10 7 (n = 2), 2 × 10 7 (n = 1), 3 × 10 7 (n = 2), 4 × 10 7 (n = 1), 6 × 10 7 (n = 2), 8 × 10 7 (n = 2), e 10 8 (n = 1), del cancro della prostata linea cellulare PC3.

I dati ottenuti sono riassunti nella figura 5 Figura 6. I dati acquisiti con risoluzione spettrale e temporale sono mostrati in Figura 5A-D e Figura 6A-D, con solo una risoluzione temporale per ogni molecola constatato (Figura 5E-H e Figura 6E-H), e con solo una risoluzione spettrale (Figura 5I -L e Figura 5I-L). Abbiamo osservato tre principali segnali che rappresentano hyperpolarized [1- 13 C] piruvato, [1- 13 C] piruvato idrato, e [1- 13 C] lattato, con spostamenti chimici a 173 ppm, 181 ppm, e 185 ppm, circa il relativo all'acido trimetilsilil propanoico (TMSP) a pH 7,4 e la temperatura di 20 ° C. I rapporti di segnale tra i tre metaboliti sono riassunti nella Tabella 1. I dati mostrano una chiara correlazione tra il segnale lattato e il numero di cellule presenti nel campione (Figura 7). Tuttavia, i risultatidagli esperimenti con meno di 2 × 10 7 cellule esporre deviazione significativa, probabilmente a causa di un basso rapporto segnale-rumore. Pertanto, si consiglia di utilizzare più celle di questo per ulteriori esperimenti. Quando il segnale lattato relativa (valore cinetica) viene normalizzato per il numero di cellule (Figura 8), e dimostra l'assorbimento e il metabolismo simile durante tutte le celle. Tuttavia, vi è una tendenza a ridurre la produzione di lattato per cella con un numero crescente di cellule. Crediamo che una delle cause di attività metabolica delle cellule ridotta è l'alta concentrazione di cellule in un volume molto piccolo, con conseguente aumento della viscosità del campione. I risultati del modello scambio differenziale a due siti sono riassunti nella Tabella 2 e mostrati in figura 9. I dati seguono un andamento simile al modello precedente: l'aumento k PA → LAC con un crescente numero di cellule. Tuttavia, risultato questo modellos in un aumento ripido della cinetica con il numero di cellule. Quando il tasso di cambio metabolico k PA → LAC è normalizzato al numero di cellule, possiamo vedere ancora una chiara tendenza decrescente k PA → LAC con un crescente numero di cellule (Figura 10).

Figura 11 dimostra la possibilità dell'aggiunta di localizzazione spaziale per l'esperimento. Essa mostra un fantasma iniettati con 80 mmol / L iperpolarizzato [1- 13 C] piruvato accanto a un 10 mol / L 13 C-urea phantom. La tecnica consente il raggiungimento di uno spettro con risoluzione temporale e speciale (Figura 11A) o del segnale di decadimento dei segnali metaboliti scelti nel tempo (Figura 11B). Gli spettri nel dominio del tempo può anche essere sintetizzato a ricevere un migliore rapporto (Figura 11C) segnale-rumore. La risoluzione speciale consente la scelta della frequenza desiderata regione of spettro 13 C appartenente ad alcuni metaboliti, come [1- 13 C] piruvato (Figura 11D), [1- 13 C] piruvato idrato (Figura 11E), o riferimento 13 C-urea (Figura 11F). Può essere co-registrato un'immagine di 1 h con. La sequenza di impulsi utilizzata (EPSI) permette l'acquisizione di una immagine dell'intero fetta ogni 4.9 s. In sintesi, questa tecnica può fornire dati con una risoluzione spaziale, temporale e spettrale per qualsiasi metabolita.

figura 2
Figura 3: Risultati di un forno a microonde Sweep con [1- 13 C] piruvato presso il locale 3.35-T Hyperpolarizer. Il risultato delle misurazioni che determinano la frequenza ottimale microonde per massimizzare il tasso iperpolarizzazione di 13 C nuclei nel composto bersaglio di [1- 13 C] piruvato. La spazzata microonde ha una forma di un assorbimento EPRspettro. La forma e la separazione dei picchi si basano sul radicale utilizzato (in questo caso, tritile radicali), e la più grande influenza avere un effetto solido e miscelazione termica. Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.

figura 2
Figura 4: Solid State Polarizzazione alla formazione di un [1- 13 C] piruvato campione. Una media di n = 13 polarizzazione a stato solido accumuli con l'errore rappresentato dalla deviazione standard misurata ogni 300 s per un massimo di 4.500 s. Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.

figura 2
Figura 5: Risultati del 13 C NMR Spectroscopy per il numero di cellule (5 x 10 6 a 3 x 10 7 cellule). I dati acquisiti tracciati con risoluzione spettrale e temporale (AD), tracciate con risoluzione temporale solo per [1- 13 C] piruvato, [1- 13 C] piruvato idrato, e [1- 13 C] lattato (EH), e tracciati con risoluzione spettrale unica, sommando tutte le fasi temporali (IL). Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.

figura 2
Figura 6: Risultati del 13 C NMR Spectroscopy per il numero di cellule (4 x 10 7 a 1 x 10 8 cellule). I dati acquisiti tracciati con risoluzione spettrale e temporale ( 13 C] piruvato, [1- 13 C] piruvato idrato, e [1- 13 C] lattato (EH), e tracciata con risoluzione spettrale unica, sommando tutte le fasi temporali (IL). Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.

figura 2
Figura 7: I risultati del Rapporto di Metaboliti semplice Kinetic Modeling. Dati rappresenta il rapporto tra il [1- 13 C] segnale lattato alla somma di [1- 13 C] piruvato, [1- 13 C] piruvato idrato, e [1- 13 C] lattato rispetto al numero di cellule nel esperimenti. L'errore rappresenta la deviazione standard. Pleasing clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.

figura 2
Figura 8: I risultati del Rapporto di Metaboliti semplice Kinetic Modeling normalizzato per il numero di cellule. I dati rappresentano il rapporto di [1- 13 C] segnale lattato alla somma di [1- 13 C] piruvato, [1- 13 C] piruvato idrato, e [1- 13 C] lattato normalizzato al numero di cellule rispetto al numero di cellule negli esperimenti. L'errore rappresenta la deviazione standard. Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.

figura 2
Figura 9: risultati dei due siti di Exchange Modello differenziale. Il repr dati ESENT il tasso di cambio metabolico (k PA → LAC) rispetto al numero di cellule negli esperimenti. L'errore rappresenta la deviazione standard. Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.

figura 2
Figura 10: risultati dei due siti di Exchange Modello differenziale normalizzati per il numero di cellule. I dati rappresentano il cambio metabolico (k PA → LAC) normalizzato al numero di cellule rispetto al numero di cellule negli esperimenti. L'errore rappresenta la deviazione standard. Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.

ent "fo: keep-together.within-page =" 1 "> figura 2
Figura 11: Risultato della risonanza magnetica del iperpolarizzato [1- 13 C] piruvato sonda. A) Lo spettro acquisito su tutta la fetta e tutti i passaggi di tempo. B) Il decadimento del [1- 13 C] piruvato e [1- 13 C] segnale idrato piruvato nel tempo. Il terzo segnale è il C-urea riferimento localizzazione 10 M 13. C) Lo spettro acquisito da tutta risoluzione spaziale e temporale. D) L'immagine 1 H sovrapposto l'immagine 13 C del riassunto [1- 13 C] segnale piruvato su tutti i passi del tempo con. E) L'immagine 1 H sovrapposto l'immagine 13 C del riassunto [1- 13 C] segnale piruvato idrato su tutti i passi del tempo con. F) L'immagine 1 H sovrapposto con il <sup> 13 C immagine del segnale 13 C-urea cumulativamente su tutti fasi temporali (di riferimento). Il 13-C segnale CE è normalizzato al massimo del segnale del metabolita specifico. Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.

Numero di cellulare
5 × 10 6 (n = 2) 10 7 (n = 2) 2 × 10 7 (n = 1) 3 × 10 7 (n = 2) 4 × 10 7 (n = 1) 6 × 10 7 (n = 2) 8 × 10 7 (n = 2) 10 8 (n = 1)
[1- 13 C]
piruvato 		92.9 ± 1.4 91.7 ± 1.0 86,7 77.5 ± 2.7 76 69,7 ± 0,5 65.9 ± 3.7 42.9
[1- 13 C]
piruvato idrato 		6.8 ± 1.2 6.7 ± 1.6 9.5 10.1 ± 1.8 8.9 7.7 ± 1.5 10.4 ± 0.2 13.4
[1- 13 C]
lattato 		0.3 ± 0.3 1.6 ± 0.6 3.8 12.4 ± 4.5 15.1 22.5 ± 1.1 23.7 ± 3.5 43,7

Tabella 1: Il rapporto relativo di hyperpolarized metaboliti rispetto al diverso numero di celle.

Numero di cellulare 5 × 10 6 (n = 2) 10 7 (n = 2) 2 × 10 7 (n = 1) 3 × 10 7 (n = 1) 4 × 10 7 (n = 1) 6 × 10 7 (n = 2) 8 × 10 7 (n = 2) 10 8 (n = 1) k PA → LAC [* 10 -4] 0,924 ± 0,870 4,984 ± 1.19 15,135 36,289 58,904 112,174 ± 10,491 114.3 ± 37,059 349,234

Tabella 2:Risultati dei due-sito modello di scambio differenziale.

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Discussion

13 CMRSI con sonde hyperpolarized è un metodo promettente per monitorare in tempo reale il metabolismo in vitro e in vivo. Un aspetto molto importante quando si impiega questo processo sperimentale è la corretta normalizzazione, soprattutto per quanto riguarda gli esperimenti in vitro. Innanzitutto, la preparazione del campione deve essere fatto correttamente e costantemente per ottenere la stessa concentrazione di materiale iperpolarizzato in ogni esperimento. Ciò richiede una precisa pesatura sia del campione da hyperpolarized e il buffer. Se la concentrazione non è corretto, il pH finale della soluzione non è preciso, che può avere un'influenza sul T 1 e le risposte delle cellule '. È inoltre fondamentale per gestire le cellule più uniforme possibile. Le cellule devono essere sempre preparati in modo tale che vi sia un ritardo minimo tra la raccolta di cellule e il successivo esperimento per minimizzare la durata del tempo le cellule sono mantenuti ad un alto concentration e basso volume. Variazione protocollo preparazione cellulare, come ad esempio un diverso tempi di preparazione o temperature, potrebbe causare variazioni sostanziali dei dati ottenuti. La miscelazione del campione con le celle deve anche essere standardizzato. È importante misurare il tempo tra le aggiunte del tracciante alla sospensione cellulare e l'inizio della misurazione, perché questo può variare; durante l'analisi dei dati, questo dovrebbe essere considerato.

La corretta scelta della analisi dei dati e la modellazione cinetica è cruciale nella interpretazione dei dati acquisiti. Il modello semplice è adatto per una reazione unidirezionale lineare con un tasso di cambio costante di due metaboliti. Come descritto nell'introduzione, piruvato subisce diverse reazioni enzimatiche e, soprattutto, subisce anche una reazione reversibile scambio non enzimatica con piruvato idrato. Questa reazione ha avuto un ruolo cruciale negli esperimenti, e il suo effetto è ben dimostrato in per l'esperimento con 8 × 10 7 cellule. Sebbene Tabella 1 indica che il piruvato idrato concentrazione relativa è simile ad altri esperimenti, quando strettamente studiato in figura 6D, mostra un segnale piruvato idrato di molto superiore all'inizio dell'esperimento rispetto agli altri esperimenti. Tuttavia, quando la risoluzione temporale è riassunta, queste informazioni importanti viene persa e causa un errore nella ricostruzione dei dati. D'altra parte, il modello scambio differenziale a due siti è una descrizione più robusta e precisa della cinetica perché comprende la risoluzione temporale nel calcolo. Così, include lo scambio non-enzimatica con piruvato idrato, anche se scambia rapidamente con piruvato durante la misurazione.

Ci sono diverse strategie di imaging di scegliere tra osservare il segnale iperpolarizzato o per monitorare il metabolismo di una molecola iperpolarizzato in preclinical e studi clinici. Durst et al. dimostrato i vantaggi e gli svantaggi dei diversi impulsi sequnces 76. La sequenza libera di induzione decadimento di imaging chemical shift (FIDCSI) è relativamente robusta, ma ha un uso limitato per il multi-slice e di imaging temporalmente risolta. l'imaging spettroscopico eco-planare (EPSI) è robusto per le questioni di gradiente e off-risonanza effetti, ma, è incline a manufatti di ricostruzione. La decomposizione iterativo di acqua e grasso con eco asimmetrica e minimi quadrati stima (IDEAL) 81, spirale di imaging chemical shift (ISPCSI), sequenza di impulsi 35, e di imaging spostamento a spirale chimica (SPCSI) hanno efficienze alta di codifica, ma sono sensibili a B 0 disomogeneità. La scelta della sequenza dipenderà dalle caratteristiche dello scanner, la questione biologica, ed il sistema indagato.

Ci sono molti requisiti che devono essere soddisfatte per iperpolarizzazione successo. Tuttavia, tqui ci sono anche diversi limiti che la iperpolarizzato 13 tecnica CMRSI è oggi ad affrontare. Il limite principale ed immutabile è il T 1 tempo di rilassamento del nucleo 13 C nella molecola, che definisce la quantità di segnale rilevabile disponibili al momento specifico della misurazione. Il segnale viene abbassato da ogni eccitazione RF che causa una perdita del segnale iperpolarizzazione ripetutamente durante l'acquisizione dei dati. Un'altra limitazione è il periodo di tempo relativamente lungo necessario per hyperpolarize una molecola. Questo richiede in genere da 30 a 90 min.

In confronto ad altre tecniche dell'imaging molecola, come [18 F] -FDG PET, hyperpolarized 13 CMRSI non richiede tumori con aumentato vie metaboliche glicolitico e quindi aumentato consumo di glucosio. La tecnica mostra un vero flusso metabolico in tempo reale. D'altra parte, [18 F] -FDG PET non dà informazioni direttemetabolismo, ma solo informazioni indirette sulla accumulo nella zona metabolicamente attiva. Ciò potrebbe causare un risultato falso negativo, in cui il tumore sembra essere metabolicamente inattivo ma è in realtà utilizzando differenti vie metaboliche, quali glutaminolysis, come fonte di carbonio per la proliferazione.

In conclusione, la dissoluzione DNP può essere utilizzato in una varietà di applicazioni per studiare un elenco illimitato di malattie (come il diabete) 82, misurare il pH 15,36,45, o monitorare i cambiamenti metabolici in vari tipi di cancro. Queste misure possono essere realizzate su diversi livelli, da esperimenti in vitro delle cellule, attraverso studi preclinici su modelli animali (come i topi, ratti, conigli, maiali e cani), recenti studi clinici umani 57. Le future applicazioni cliniche saranno caratterizzate da un molto potente e non invasiva strumento diagnostico che può non solo rilevare e localizzare la malattia, ma anche permettere l'osservazione del trattamentorisposta in tempo reale 83.

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Materials

Name Company Catalog Number Comments
HyperSense DNP Polariser Oxford Instruments 3.35 T preclinical DNP hyperpolarizer
GE/Agilent MR901 GE Healthcare/Agilent Technologies 7 T preclinical MRI scanner, with small bore designed for experiments onrodent
Spinsolve Carbon Magritek 1 T NMR spectrometer with permanent magnet
Deuterium Oxide Sigma Aldrich 7789-20-0
Sodium phosphate dibasic Sigma Aldrich 7558-79-4
Sodium phosphate monbasic Sigma Aldrich 7558-80-7
Sodium hydroxide Sigma Aldrich 1310-73-2
Disodium edetate Sigma Aldrich 6381-92-6
Pyruvic acid - 13C1 Cambridge Isotopes Laboratories CLM-8077-1
Dotarem (0.5 mmol/L) Guerbet gadoterate meglumine  
tris (8-carboxy-2,2,6,6-tetra-(hydroxyethyl)-benzo-[1,2–4,5]-bis-(1,3)-dithiole-4-yl)-methyl sodium salt (OX063) GE Healthcare trityl radical used as a sourse of free electron
PC3 cell line ATCC CRL1435
F-12K medium  ATCC 30-2004
Fetal Bovine Serum ATCC SCRR-30-2020
Trypsine-EDTA Solution, 1x ATCC 30-2101
Sample plastic cup Oxford Instruments
Trypan blue Bio-Rad 145-0013-MSDS

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Cancer Research iperpolarizzazione DNP, NMR spettroscopia di risonanza magnetica risonanza magnetica risonanza magnetica, LDH piruvato lattato carcinoma prostatico
hyperpolarized<sup&gt; 13</sup&gt; C metabolica spettroscopia di risonanza magnetica e Imaging
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