Abstract
A obesidade é um problema de saúde pública, com uma prevalência de 4-28% para os homens e 6,2-36,5% para as mulheres na Europa (2003-2008). A obesidade mórbida é frequentemente associada a complicações metabólicas, como diabetes tipo 2, hipertensão e dislipidemia, reduzindo a expectativa de vida e qualidade. Na ausência de quaisquer tratamentos não invasivos eficazes, a cirurgia bariátrica é uma opção terapêutica valiosa para pacientes com obesidade mórbida (índice de massa corporal (IMC)> 40 kg / m 2), levando a longo prazo, sustentado perda de peso e melhorias em complicações metabólicas . No entanto, os mecanismos celulares e moleculares subjacentes à sustentação dos efeitos benéficos da cirurgia bariátrica não são ainda totalmente compreendidas. Devido às inúmeras linhagens geneticamente modificados disponíveis, o modelo de rato é o modelo animal mais conveniente para explorar os mecanismos moleculares por trás dos efeitos benéficos pleiotrópicos das cirurgias bariátricas. Aqui, detalhou o healthc otimizadasão métodos e protocolos cirúrgicos em ratos para as duas cirurgias bariátricas mais utilizados: a gastrectomia vertical e do bypass gástrico Roux-en-Y modificada. Decifrar os mecanismos moleculares subjacentes aos efeitos terapêuticos de cirurgias bariátricas oferece a promessa de identificação de novos alvos terapêuticos.
Introduction
A pandemia mundial de obesidade e diabetes é devastador em termos de gravidade. Mais de dois mil milhões de adultos em todo o mundo (30% da população) estão com sobrepeso (IMC> 25 kg / m 2) ou obesidade (IMC> 30 kg / m 2) 1. Isto pode vir junto com complicações metabólicas, tais como diabetes tipo 2, hipertensão, dislipidemia e, levando a um aumento da morbidade e mortalidade. A obesidade aumenta o mortalidade geral e a prevalência de câncer 2. Devido à falta de quaisquer tratamentos eficazes não invasivos, cirurgia bariátrica representa a única opção que pode conduzir a longo prazo, a perda de peso sustentada 3, 4. Um número de diferentes métodos cirúrgicos foram desenvolvidos, mas a gastrectomia vertical (SG) e de bypass gástrico Roux-en-Y (RYGB) são os dois procedimentos mais comumente utilizados na prática clínica. Durante o procedimento de SG, 80% do volume inicial do estômago estáremovido; Assim, esta técnica é uma das cirurgias restritivas que melhora a saciedade. O BGYR é uma das técnicas de acordos e de má absorção. Durante BGYR, uma pequena bolsa gástrica (1-2% do volume gástrico total) é criado e o intestino é rearranjado em uma forma de Y, o que retarda a digestão e a absorção de nutrientes. Estas duas técnicas levar a reduções significativas de peso corporal e melhorias gerais na comorbidades frequentemente associados (por exemplo, hipertensão, diabetes tipo 2 e dislipidemia) 3, com uma maior eficiência visto em RYGB. No entanto, os mecanismos moleculares por trás dos efeitos benéficos pleiotrópicos das cirurgias bariátricas muitas vezes não são completamente elucidados. Devido às inúmeras linhagens geneticamente modificados disponíveis, um modelo do rato é o modelo animal mais conveniente para explorar esses mecanismos moleculares.
No entanto, os procedimentos bariátricos são difíceis de se adaptar diretamente para modelos animais de pequeno porte e requirE High destreza cirúrgica. Enquanto SG pode ser facilmente realizado em roedores com uma muito boa taxa de sobrevivência, RYGB é letal em camundongos devido a obstruções intestinais graves 5. Diferentes técnicas RYGB modificados têm sido propostos para combater este problema, nomeadamente a oesojejunostomy 5. Aqui, apresentamos uma outra alternativa: o gastrojejunostomy sem excisão estômago. Este BGYR modificado reproduz a maioria dos efeitos benéficos observados em seres humanos (isto é, uma redução de peso de corpo significativa e uma melhoria na glucose e lípidos homeostase).
Este manuscrito visa resumir e discutir os detalhes técnicos e experimentais de SG e RYGB em camundongos e facilitar estes procedimentos com a ajuda de vídeos. Um destaque específico será feita em relação a otimização dos protocolos de cuidados de saúde pré-operatórias e pós-operatórias que permitem a redução das deficiências de vitaminas e ferro.
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Protocol
Animal e habitação: Obter ratos 8 semanas de idade C57BL / 6 do sexo masculino. Às 10 semanas de idade, dê o acesso gratuito camundongos C57BL / 6 para a água e uma dieta rica em gordura (DIO dieta: 35% kcal de gordura, 25,8% caseína, 1,30% AIN mineral, 1,30% de vitaminas, fosfato bicálcico 1,70%, 0,7 carbonato% de cálcio, 2,10% citrato de potássio, 0,026% de bitartrato de colina, 8,9% de sacarose, 0,384% de cistina, 6,5% de celulose, 31,7% de banha, óleo de soja 3,3%, e 16,29% de maltodextrina) para oito (SG) ou 14 (BGYR) semanas antes das cirurgias bariátricas. Para promover o ganho de peso, dar a ratinhos dedicada à cirurgia BGYR (Sham & BGYR) de água contendo 20% de frutose (w / v) em adição à dieta rica em gordura.
Declaração de Ética: Todos os passos protocolo descrito a seguir seguir as orientações do Comitê de Ética em Experimentação Animal da Pays de la Loire sob o número de aprovação 01.953,01.
1. Geral pré-operatória Preparação
- Jejuar ratos durante 6 h antes da cirurgia. gel diet alimentos foi dada 3 dias antes da cirurgia e exclusivamente um dia antes da cirurgia. Induzir a anestesia em uma câmara com 5% de isoflurano (0,4 L / min) e O 2 (dioxigénio; 0,4 L / min). Realizar um teste toe-pitada para confirmar que a anestesia é eficaz. Administrar analgésicos (0,1 mg / kg de buprenorfina), antibióticos (10 mg / kg marbofloxacine), e pró-cinética (de 1 mg / kg de cloridrato de metoclopramida) por meio de injecções subcutâneas.
- Alocar uma área de trabalho específica para procedimentos cirúrgicos (distantes dos fãs de tráfego laboratório e ventilação). Limpar a área cirúrgica com desinfetantes de superfície dura dedicados. Coloque uma almofada de aquecimento na área de espaço de trabalho para manter homeothermy mouse durante a cirurgia. Aplique uma underpad limpo, absorvente sobre a almofada de aquecimento.
- Raspar o abdômen do esterno às pelve usando um barbeador elétrico. Enrole o abdômen do mouse no esterilizados de plástico envoltório (Figuras 1A e 2A) e coloque o mouse na posição supina sobre o aquecimento pde Anúncios.
- Aplicar vet pomada sobre os olhos para evitar a secura e sob anestesia. Colocar o rato dentro do cone de nariz e manter a anestesia com isoflurano a 2% (0,4 L / min) e O 2 (0,4 L / min).
- Antes de iniciar a cirurgia, colocar um avental estéril exame, uma tampa esfrega descartável, uma máscara e luvas estéreis. Abrir um pacote de autoclavada contendo uma esterilizados set instrumento cirúrgico, que é exigido para todas as etapas da cirurgia. Cortar uma janela no filme plástico esterilizado e desinfectar a pele com 2 soluções Iodopovidona sucessivas.
2. gastrectomia vertical: Procedimento Cirúrgico
- Laparotomia mediana (Figura 1B)
- Sob um microscópio binocular e com um bisturi, executar uma incisão na linha média a partir do esterno até ao meio do abdómen para abrir a cavidade abdominal (não danificar os músculos abdominais). Proteger a pele com uma compressa esterilizada embebida em solução salina C 37 °.
- Exposição do estômago (Figura 1C)
- Gentilmente mobilizar o estômago usando cotonetes de algodão umedecido. Livre o estômago de suas laterais estreitas anexos de tecido conjuntivo usando cotonetes humedecidos ou micro tesoura.
- Gentilmente, externalizar o estômago totalmente e coloque um colágeno hemostática comprimir atrás do estômago. Sutura do piloro e vasos esófago ao longo da grande curvatura do estômago com 8,0 suturas não absorvíveis para evitar futuro hemorragia (Figura 1D e E). Nota: o uso Hemostat pode induzir dano tecidual, certifique-se apenas para usá-lo em tecido que pretendem ser ressecado.
- Ressecção da região cardíaca do estômago (fundo)
- Executar uma gastrotomia na linha anatômica presente entre a região pilórica (corpus) e na região cardíaca do estômago (fundo) (Figura 1F).
- Retire os alimentos residual com 2 zaragatoas de algodão humedecido em relação uns aoslado do estômago. Utilizando micro-tesoura, cortar o estômago ao longo da fronteira entre o fundo do útero e o corpo do estômago (Figura 1G).
- Pressione uma colágeno hemostática comprimir por 2 min em caso de hemorragia grave. Fechar a abertura do estômago com 8,0 suturas não absorvíveis a partir da junção gastro-esofágico para o fim da incisão (Figura 1H).
- Ressecção da região pilórica do estômago (corpus)
- Conclua a ressecção do estômago ao longo da curvatura maior, de modo a remover aproximadamente 80% do estômago (Figura 1I). Padronizar a largura do SG a 3 mm. Pressione uma colágeno hemostática comprimir por 2 min em caso de hemorragia grave.
- Fechar a abertura da região pilórica do estômago com 8,0 sutura não absorvível (Figura 1J). Agite-2 cotonetes de algodão humedecido no sentido de cada lado do estômago para assegurar que a sutura é à prova de fugas.
- Completo com 8,0 suturas não absorvíveis em caso de vazamento. Retirar as compressas de colagénio hemostáticos e devolver o estômago para a cavidade abdominal. Deixar um colágeno hemostática comprimir contra a sutura.
- fechamento abdominal
- Feche a camada muscular da parede abdominal com 5,0 suturas não-absorvíveis (Figura 1K). Reduzir a anestesia através da redução da concentração de isoflurano a 1%. Feche a pele usando 5,0 suturas não-absorvíveis (Figura 1D).
3. Roux-en-Y bypass gástrico: Procedimento Cirúrgico
- laparotomia mediana
- Sob um microscópio binocular e com um bisturi, executar uma incisão na linha média a partir do esterno até ao meio do abdómen para abrir a cavidade abdominal (não danificar os músculos abdominais). Proteger a pele com uma compressa estéril embebida com uma solução salina a 37 ° C (Figura 2B).
- Membro biliopancreática e tubo alimentar
- Externalizar o intestino (Figura 2C). Medida 8 cm a partir do piloro e executar duas ligaduras do intestino com 5,0 suturas não absorvíveis (Figura 2D).
- Cortar o intestino entre as duas ligaduras (Figura 2E). Coloque o membro proximal das duas extremidades no quadrante superior esquerdo do abdome. Nota: Isto será utilizado como o tubo alimentar (Figura 2F).
- Coloque a parte distal do membro de as duas extremidades de frente para o tubo alimentar 6 cm abaixo do membro proximal (Figura 2F).
NOTA: Este valor será usado como o membro biliar.
- Jejuno-jejunostomia
- Cortar tanto o membro proximal e o loop intestino utilizando micro tesouras e fazer duas incisões antimesentéricas do mesmo comprimento (Figura 2G e 2H).
- Executar lado a lado anastomose com dois 8,0suturas não absorvíveis. Realização da anastomose lado dorsal primeiro (Figura 2I), seguido pela anastomose lado ventral (Figura 2J).
- Delicadamente rolar 2 compressas de algodão umedecidos para com cada lado da anastomose para garantir que a sutura é à prova de fugas. Completo com 8,0 suturas não absorvíveis em caso de vazamento.
- Gastro-jejunostomia
- Gentilmente mobilizar o estômago usando cotonetes humedecidos. Livre o estômago de suas laterais estreitas anexos de tecido conjuntivo usando cotonetes humedecidos ou micro tesoura.
- Gentilmente, externalizar o estômago totalmente, colocando um colágeno hemostática re-absorvível comprimir atrás do estômago. Realizar uma ligadura do piloro usando uma sutura 5.0 não absorvível passado através do omento usando micro pinça curva (Figura 2K e 2L).
- Cortar o lado ventral do estômago, a 1,5 cm do piloro, e parte distal do membroutilizando micro-tesoura, criando duas incisões do mesmo comprimento (Figura 2M).
- Execute anastomose lado-a-lado com dois 8,0 suturas não absorvíveis. Comece com a anastomose lado dorsal (Figura 2 N) e, em seguida, executar a anastomose lado ventral (Figura 2O). Delicadamente rolar 2 compressas de algodão embebido em direção cada lado da anastomose para garantir que a sutura é à prova de fugas. Completo com 8,0 suturas não absorvíveis em caso de vazamento.
- fechamento abdominal
- Feche a camada muscular da parede abdominal utilizando 5,0 suturas não-absorvíveis (Figura 2P). Reduzir a anestesia através da redução da concentração de isoflurano a 1%. Fechar a pele usando 5,0 suturas não absorvíveis (Figura 2q) .Administer 25 ml / kg de solução salina quente através de injecção subcutânea.
4. Geral Cuidados no pós-operatório
- pare de isofluranoe continuar com um fluxo de O2 de 0,8 L / min até que o mouse é totalmente acordado. Não deixe o mouse sem vigilância até que ele recupera o controle motor, indicado pela partida animal para mover ao redor da gaiola e ser capaz de ficar de pé e caminhar sem cair.
- Colocar o rato (apenas um rato por gaiola) em uma incubadora sob condições de temperatura de 30 ° C durante 5 dias.
- Manter o ferro (0,5 mg / kg / dia; injecção subcutânea) e vitamina (800 mg / 180 mL em água) a suplementação em ratinhos BGYR até ao final do protocolo.
- Retornar o livre acesso à dieta gel alimentar (dieta com gel alto teor de gordura: 10% de banha, açúcar líquido de 10%, 57% de água) durante 5 dias após a cirurgia. Reintroduzir uma dieta sólida 3 dias após a cirurgia.
- Subcutaneamente injectar buprenorfina (0,1 mg / kg, duas vezes por dia, desde o dia 0 até ao dia 3 após a cirurgia), meloxicam (1 mg / kg, a partir de dia 0 até ao dia 3 após a cirurgia), metoclopramida (1 mg / kg, do dia 0 ao 5 dias após a cirurgia), e marbofloxacine (10 mg / kg, a partir de dia 0 até ao dia 3 afte cirurgia R).
Avaliação pós-operatória 5. Metabolic Parâmetros
- Medição da ingestão de alimentos
- Permitir que os ratos a recuperar durante uma semana após a cirurgia. Casa a ratinhos um por gaiola. Medir a quantidade de dieta sólida colocado na gaiola. Peso os restantes 24 alimentos h mais tarde. Repita este passo enquanto for necessário.
- Teste de tolerância oral à glicose
- Jejuar ratos durante 6 h antes do bolus oral. Colher uma gota de sangue da ponta da cauda e aplicá-lo sobre uma tira de glucose inserido num glucometer para determinar o tempo de valor de glicose no sangue 0.
- Administrar um bolus por via oral de uma solução de D-glicose a 20% (2 g / kg). Medir os níveis de glicose no sangue aos 15, 30, 60 e 120 min após gavagem.
- Análise de nível de hemoglobina
- Usando um sistema de hematologia, medir 20 mL de sangue fresco para provar o nível de hemoglobina.
- Anestesiar os ratos por via intraperitoneal uma solução de injecção de xilazina / cetamina (10/80 mg / kg). Realizar uma luxação cervical. Verifique a eutanásia completa, garantindo que o coração não está batendo eo reflexo de piscar globo ocular está perdido.
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Representative Results
Condições Gerais
O tempo cirúrgico médio para o procedimento de SG foi de 49,3 ± 1,5 min. Removemos 62,8 ± 5,0 mg do estômago, o que representa cerca de 80% por cento do estômago. Sem ratos morreram durante a cirurgia ou durante os sete dias seguintes. Um rato (7,1%) morreram no dia pós-operatório de 11 devido a uma obstrução gástrica causada por um bezoar.
O tempo cirúrgico médio para o procedimento RYGB foi de 89,1 ± 2,8 min. A taxa de mortalidade foi significativamente maior após RYGB (sham: 25% versus RYGB: 66,6%; p = 0,038). As principais causas de mortes pós-operatórias foram fístula (n = 8), estenose da anastomose (n = 5), complicações anestésicas (n = 4), e sangramento pós-operatório (n = 2). Observamos também duas mortes a longo prazo devido à estenose da anastomose gastrointestinal comobstrução crônica e desnutrição. Como mostrado na Figura 3, notamos uma melhora progressiva da taxa de sobrevivência pós-operatória durante todo o protocolo, indicando que a formação intensiva cirúrgica é necessária para dominar a técnica cirúrgica RYGB.
O peso corporal, a ingestão de alimentos e homeostase da glicose
Os ratos apresentaram pesos corporais semelhantes antes da cirurgia. SG demonstraram a perda de peso significativa 14 dias após a cirurgia, em comparação com ratinhos de controlo (sham sham: -6,6% contra SG: -16,0%; p <0,01; Figura 4A). RYGB foi associado com significativa perda de peso dos dias pós-operatórios 14 (sham: -7,9% no dia 14 pós-cirurgia e -5,1% no dia 28 pós-operatório em relação RYGB: -22,9% no dia 14 pós-cirurgia e -25,5% em dia 28 pós-operatório; Figura 4B). A ingestão diária de alimentos foi reduzido em 35% durante os peri 14 dias OD seguinte SG (Figura 4C). Em contraste, não observamos esse efeito anorexígeno entre a farsa e camundongos RYGB (Figura 4D). Nós também relataram uma melhora da tolerância à glicose seguinte SG e RYGB cirurgias (Figura 4E, 4F).
Efeito benéfico da suplementação de ferro sobre anemia induzida por RYGB
Nós não observamos diminuição significativa de hemoglobinemia 14 dias após a cirurgia SG (dados não mostrados). Em contraste, anemia grave foi medida em ratinhos operados por RYGB, mas fez benefício de suplementação de ferro específicas (Figura 5A). A suplementação diária de ferro foi crucial e impediu anemia significativa 28 dias após a cirurgia RYGB (Figura 5B).
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Figura 1: gastrectomia vertical interno. (A) a preparação pré-operatória. (B) laparotomia mediana. (C) a exposição de estômago. Sutura do vaso (D) Piloro. Sutura do vaso (E) esôfago. (F) gastrotomia inicial. (G) A ressecção da região cardíaca do estômago. (H) O encerramento da abertura estomacal a partir da junção gastro para o fim da incisão. (I) A ressecção da região pilórica do estômago. (J) Encerramento da abertura da região pilórica. (K) O encerramento da camada muscular da parede abdominal. (L) Encerramento da pele. Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 2: Roux-en-Y de bypass interno. (A) a preparação pré-operatória. (B) laparotomia mediana. (C) A externalização do intestino delgado. (D) biliopancreatic e membros alimentares ligaduras. (E) a secção de intestino delgado entre a ligadura. Posicionamento do membro (F) Intestinal para o jejuno-jejunostomia. (G - H) incisões antimesentéricas do membro proximal eo loop intestino. (I) dorsal da anastomose lado-a-lado. (J) ventral anastomose lado-a-lado. (K - G) Piloro ligadura. (H) A incisão do lado ventral do estômago. (N) A incisão de o membro e dorsal anastomose distai lado-a-lado. (O) ventral anastomose lado-a-lado. (P (Q) Encerramento da pele. Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 3: Taxa de sobrevivência de ratos 7 dias após a cirurgia RYGB. Os dados mostram o benefício de treinamento cirúrgico na taxa de sobrevivência de ratos RYGB-operados. Os valores estão apresentados como o valor médio ± SEM. Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 4: Efeito de SG (A, C, D) e BGYR (B, D, F) em Bodyweight, Daily ingestão de alimentos, e tolerância à glicose. Os dados são apresentados como o valor médio ± SEM. NS: não significativo; * P <0,05; ** P <0,01 (teste de Mann-Whitney, ANOVA de teste). Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 5: Plasma níveis de hemoglobina após RYGB em ratos sem (A) ou com (B) Suplementação de Ferro. Os dados são apresentados como o valor médio ± SEM. NS: não significativo; * P <0,05 (teste de Mann-Whitney). Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
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Discussion
Para superar a crescente epidemia de obesidade, os primeiros procedimentos de cirurgia bariátrica surgiu na década de 1960 nos Estados Unidos. Desde então, o número de procedimentos realizados anualmente no mundo ainda aumentar, e hoje, estas técnicas representam a melhor opção terapêutica para o tratamento da obesidade mórbida 6. Entre os procedimentos desenvolvidos, SG e RYGB são os dois métodos mais populares usados na prática clínica 4. modelos animais, nomeadamente roedores, têm sido usadas para decifrar os mecanismos por trás da melhoria geral da saúde observados após a cirurgia bariátrica.
Para decifrar os mecanismos moleculares que sustentam os efeitos metabólicos benéficos de cirurgias juntá-los, foram desenvolvidos dois modelos de rato de cirurgia bariátrica: SG, que é geralmente definida como uma técnica restritiva, e o BGYR, que é descrito como uma cirurgia restritiva e de má absorção. A realização destes bariátrica ratoprocedimentos requer experiência em microcirurgia. Estes modelos foram desenvolvidos usando um técnico especializado em cirurgia de animais e um cirurgião visceral humana. A partir da experiência, treinamento cirúrgico foi necessário chegar a mais de 75% de sobrevivência após RYGB. Dominando SG não requer tanto tempo, e a curva de aprendizagem é mais curto, com a mortalidade em cerca de 95%. Em contraste, BGYR é uma técnica mais complexa e requer 6 a 8 semanas de formação para atingir uma taxa de sobrevivência pós-operatória aceitável.
Na literatura, há uma variedade de procedimentos bariátricos de roedores que foram previamente descritos 7, 8, 9. Nesta técnica SG, removeu-se a região cardíaca do estômago (também chamado o fundo), não está presente em seres humanos. O objectivo foi o de remover cerca de 80% do estômago. O tamanho da bolsa de modelos em ratos RYGB varia de <5% a> 20% do tamanho inicial estômago. vários studies usaram modelos do rato RYGB, apresentando quer uma preservação completa do estômago 10, uma pequena bolsa gástrica 5, ou um desvio total de estômago 5. Em um estudo muito abrangente, Deng Ping Yin e colegas avaliaram os diferentes modelos do rato do BGYR e relataram que o estômago não murino foi anatomicamente adaptados para a criação de uma bolsa gástrica 5. Para o nosso procedimento RYGB, optamos por realizar uma Roux-en-Y, sem cortar o estômago. Como limitação, o nosso modelo não induziu uma redução na ingestão de alimentos, o que contrasta o que é observado em modelos humanos de BGYR.
A taxa de sobrevida após as operações RYGB em ratos é raramente mencionado pelos autores na literatura, mas parece atingir cerca de 30 a 35%, em média, 11. Em nossas mãos, a mortalidade foi devido principalmente a deiscência de anastomose ou estenose ou pós-operatório tardio gastrojejunal anastomose stenosis, levando à obstrução crônica com perda excessiva de peso persistente, o que comprometeu o bem-estar animal. RYGB exige que a administração perioperatória específico, incluindo uma dieta gel durante os três primeiros dias de pós-operatório e um regime de gestão da dor. Para melhorar a sobrevivência a longo prazo após a cirurgia, foram adicionados vitaminas no pós-operatório, particularmente vitaminas e ferro solúveis em gordura, para prevenir a anemia. Por outro lado, os ratos não precisa de suplementação de vitamina lipossolúvel após SG, desde que foi apenas um procedimento restritivo. Nos trabalhos anteriores, os autores não descrevem o estado de saúde dos animais operados durante o curso de pós-operatório. Uma vez que é uma grande cirurgia, não podemos assumir o bem-estar dos animais sistemática nestes estudos.
Em conclusão, modelos de mouse ou não restritiva (SG) ou de acordos e de má absorção (RYGB) cirurgias bariátricas são viáveis, mas requerem treinamento microcirúrgico com uma curva de aprendizagem, especialmente para o procedimento RYGB. para keep os animais de boa saúde, gestão perioperatório é muito importante no processo de RYGB, particularmente em termos de dor, mas também em termos de suplementação de vitamina. Ao atingir uma cirurgia mais rápido, estéril e usando formação de microcirurgia, podemos melhorar significativamente a taxa de sobrevivência pós-operatória. Estes modelos são ferramentas úteis e essenciais para compreender os efeitos metabólicos da cirurgia bariátrica.
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Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Drugs | |||
| High Fat diet | DIO diet | Safe | |
| Isoflurane | Forane | Baxter | |
| Buprenorphin | Buprecare | Animalcare | |
| Marbofloxacine | Marbocyl | Vetoquinol | |
| Ammonium iron citrate, vitamins PP-B12 | Fercobsang | Vetoquinol | |
| Vitamins A-D3-E-K-B | Vita Rongeur | Virbac | |
| NaCl 0.9% | NaCl 0,9% | ||
| Povidone solution | Betadine Scrub | Betadine | |
| Povidone solution | Betadine Solution | Betadine | |
| Carboptol 980 NF | Ocrygel | TVM | |
| Name | References | Company | Comments |
| Sutures | |||
| Prolene® | 8.0, 6,5 mm | Ethicon | |
| Prolene® | 5.0, 13 mm | Ethicon | |
| Name | References | Company | Comments |
| Surgical equipments | |||
| Scissors | FST | ||
| Needle holder | Olsen-Hegar | FST | |
| Micro scissors | Vannas | FST | |
| Micro forceps | Graefe | FST | |
| Micro forceps curved | Graefe | FST | |
| Curved micro needle holder | Castroviejo | FST | |
| Hemostatic collagen compress | Pangen | Urgo | |
| Absorbent underpads | VWR | ||
| Name | References | Company | Comments |
| Specific equipments | |||
| Hematology system | Hemavet 950FS | Hemavet | |
| Glucose strips and glucometer | One touch Verio | Life scan | |
| Stereo microscope | MZ6 | Leica |
References
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