Summary
La matrice extracellulare tessuto-specifico (ECM) è un mediatore chiave della funzione delle cellule. Questo articolo descrive metodi per sintetizzare schiume e microcarriers che sono stabili in coltura senza la necessità di reticolazione chimica per applicazioni in 3D avanzata in colture di cellule in vitro o come bioscaffolds pro-rigenerativi ECM-derivato puri.
Abstract
funzione delle cellule è mediata da interazioni con la matrice extracellulare (ECM), che ha complessa composizione ed architettura tessuto-specifica. Il focus di questo articolo è sui metodi per fabbricare schiume e microcarriers porosi ECM-derivato per l'uso come substrati biologicamente rilevanti nei 3D avanzata in modelli di colture cellulari in vitro o come impalcature pro-rigenerativo e sistemi di consegna delle cellule per l'ingegneria tissutale e la medicina rigenerativa. Utilizzando tessuti decellularizzati o collagene insolubili purificato come materiale di partenza, le tecniche possono essere applicate per sintetizzare una vasta gamma di bioscaffolds tessuto-specifiche con geometrie personalizzabili. L'approccio comporta lavorazioni meccaniche e mite digestione enzimatica per fornire una sospensione ECM che viene utilizzato per fabbricare le schiume tridimensionali o microcarriers attraverso procedure di congelamento e liofilizzazione controllati. Questi puri impalcature ECM-derivati sono altamente porosa, ma stabile senza la necessità di chemicAl agenti o altri additivi che possono influenzare negativamente la funzione delle cellule reticolazione. Le proprietà impalcatura possono essere sintonizzati in parte da fattori variabili quali la concentrazione ECM sospensione, metodi di lavorazione meccanica, o condizioni di sintesi. In generale, i ponteggi sono robusti e facili da maneggiare, e possono essere trattati come tessuti per la maggior parte saggi biologici standard, fornendo una piattaforma coltura cellulare 3D versatile e di facile utilizzo che riproduce la composizione ECM nativa. Nel complesso, questi metodi semplici per fabbricare schiume e microcarriers ECM-derivato personalizzate possono essere di interesse per entrambe biologi ed ingegneri biomedici come piattaforme cellule istruttivo tessuto-specifici per in vitro e in vivo applicazioni.
Introduction
La matrice extracellulare (ECM) è composto da una complessa rete 3D di proteine, glicoproteine e polisaccaridi 1. Una volta considerato come un quadro prevalentemente strutturale, è ormai ampiamente riconosciuto che l'ECM incorpora una gamma diversificata di molecole bioattive con importanti ruoli funzionali 2. Interazioni cellula-ECM possono dirigere la sopravvivenza cellulare, adesione, la migrazione, la proliferazione e la differenziazione 3. Mentre le principali classi di macromolecole ECM sono generalmente ben conservate di tutti i tessuti e specie, ogni tessuto ha una composizione di matrice unica e l'architettura 4. Nel complesso, l'ECM tessuto-specifica fornisce un microambiente istruttivo che media funzione dal subcellulare alla scala tessuti / organi 5.
A causa del ruolo critico della ECM nel mediare la funzione cellulare, c'è stato un crescente interesse per la deluppo di bioscaffolds ECM di derivazione per applicazioni in ingegneria dei tessuti e della medicina rigenerativa. In particolare, il metodo di decellularization è stata ampiamente studiata come un mezzo per ottenere ECM da una vasta gamma di tessuti da utilizzare come materiale per ponteggi rigenerazione dei tessuti e la consegna cellule 5, 6, 7. Decellularization genere comporta una serie di, chimiche, meccaniche e modulazione / o biologici trattamento mirato a rimuovere cellule e componenti cellulari, pur determinando ideale alterazioni minime alla struttura 3D e la composizione della ECM 8. Attraverso rilevamento letteratura, vari protocolli decellularizzazione possono essere identificati per virtualmente ogni tessuto del corpo 7.
Mentre i tessuti decellularizzati possono essere usate direttamente come supporti impiantabili o substrati di coltura cellulare 3D, infiltrazione cellulare puòessere limitato nei tessuti con una struttura densa ECM 9. Inoltre, l'eterogeneità naturale nella ECM può causare variabilità nella adesione cellulare e la distribuzione all'interno delle matrici decellularizzati, che potrebbero influire sul risposta cellulare 10. Nel complesso, mentre promettente per alcune applicazioni, applicando tessuti decellularizzati nella loro forma intatta offre scarsa versatilità in termini di proprietà di sintonizzazione ponteggio compresa la forma, porosità e rigidità, nonché le modalità di consegna per applicazioni in vivo.
Per aggirare queste limitazioni, numerosi gruppi di ricerca stanno applicando ulteriori metodi di elaborazione per generare formati ponteggio personalizzati utilizzando tessuti decellularizzati come materiale di base. Nella forma più semplice, ciò può comportare cryomilling tessuti decellularizzati per generare particelle ECM tessuto-specifici iniettabili 11. Queste particelle ECM possono essere incorporati come una cellula-instrucomponente ctive in scaffold compositi con altri biomateriali, come in situ reticolazione idrogel 12, 13, 14. Oltre alle lavorazioni meccaniche, tessuti decellularizzato possono anche essere sottoposti a digestione enzimatica con proteolitica e / o enzimi glicolitici per fabbricare idrogel ECM-derivati, schiume, microcarriers e rivestimenti 15, 16, 17, nonché per sintetizzare bioinks per stampa 3D 18.
Oltre alle applicazioni di ingegneria tissutale, bioscaffolds ECM-derivati tengono un grande potenziale per la generazione di una maggiore fedeltà modelli in vitro per la ricerca biologica. C'è un forte bisogno di sviluppare sistemi di coltura cellulare 3D che meglio ricapitolano il microambiente cellulare nativo 19. La maggior parte in vitro cell cultura studi fino ad oggi sono condotti in coltura tissutale polistirene (TCPS), che ha scarsa correlazione con l'ambiente cellulare biologicamente complesso e dinamico trovati nei tessuti viventi 20. Mentre conveniente per studiare le interazioni cellulari all'interno di un ambiente controllato, coltivando cellule su questi substrati rigidi 2D semplificate altera l'adesione cellulare e la morfologia, così come sia cellula-cellula e cellula-ECM INTERAZIONI 21, 22. Gli adattamenti cellulari osservati in 2D TCPS possono influire segnali intracellulari che regolano le funzioni cellulari diversi, tra cui la sopravvivenza, proliferazione, migrazione e differenziazione, sollevano questioni di pertinenza di studi 2D nella modellazione sistemi in vivo 23. C'è stato un crescente riconoscimento che il comportamento cellulare può variare notevolmente in 2D rispetto ai sistemi 3D 24, e che la biochimica e bisegnalazione omechanical con l'ECM sono mediatori chiave di funzione delle cellule 25. Molti gruppi hanno tentato di superare i limiti dei sistemi 2D stabiliti mediante rivestimento TCPS con componenti ECM come il collagene, laminina, fibronectina e. Mentre queste strategie in grado di migliorare l'adesione delle cellule e possono alterare le risposte cellulari, questi modelli rimangono limitati dalla loro configurazione 2D che non imitano la complessa organizzazione spaziale o la biochimica del ECM nativa 26, 27.
Il nostro laboratorio di bioingegneria si è interessata allo sviluppo di bioscaffolds ECM-derivati come substrati per applicazioni di coltura cellulare e ingegneria tessutale 3-D. In particolare, abbiamo sperimentato l'uso di tessuto adiposo decellularizzato (DAT) come tavola per ponteggio per la rigenerazione adiposo 28. Inoltre, abbiamo stabilito metodi per sintetizzare microcarriers 3D e schiume porose usando DAT digeriti con pepsina enzima proteolitico o enzima glicolitico α-amilasi 29, 30, 31. In particolare, abbiamo dimostrato in tutti questi formati scaffold che l'ECM adiposo derivata fornisce un microambiente induttivo per la differenziazione adipogenica di cellule umane derivate da tessuto adiposo gambo / stromali (CSA) in coltura. Più recentemente, abbiamo deciso di metodi di fabbricazione per produrre schiume 3D porosi suina α-amilasi digeriti decellularizzato ventricolo sinistro (DLV) (metodi decellularizzazione adattati da Wainwright et al. 32), e dimostrato che prevedono la piattaforma di supporto per indurre cardiomyogenic presto espressione marcatore in pericardio umani ASC grassi di derivazione 31.
Questo articolo descrive in dettaglio i metodi per la sintesi non chimicamente reticolate schiume porose 3D microcarriers derivati puramenteda ECM α-amilasi digeriti per uso come 3D biologicamente complesso in substrati di coltura cellulare in vitro e come biomateriali per la rigenerazione tissutale. In teoria, qualsiasi sorgente ECM contenente collagene alto peso molecolare può essere usato come materiale di partenza per queste tecniche. Per dimostrare la flessibilità di questo approccio, i metodi sono stati applicati per generare bioscaffolds tessuto-specifici utilizzando DAT umana, porcina decellularizzato tessuto dermico (DDT) 8, e porcina DLV come esempi rappresentativi. Figura 1 fornisce una visione d'insieme del processo di fabbricazione per le schiume e microcarriers ECM-derivato.
Figura 1. Descrizione del metodo per la produzione di schiume e microcarriers ECM-derivato tessuto-specifici. Decelerazione 1. tessuti decellularizzato, preparato seguendo stabilitaprotocolli lularization, possono essere utilizzati per tessuto-specifica ECM derivato bioscaffold fabbricazione. Immagini macroscopiche sono mostrati di idrato DAT umana (preparato come descritto Flynn 2010 28), DDT porcina (preparato come descritto Reing, JE, et al. 2010 8), e suini DLV (preparati come descritto in Wainwright et al. 2010 32 ), come esempi rappresentativi di fonti ECM che possono essere utilizzati come materiali di partenza. Barre di scala rappresentano 3 cm. 2. I tessuti decellularizzati vengono liofilizzati, e quindi macinate 3. meccanicamente. Barre di scala rappresentano 1 cm. 4. L'ECM macinate può quindi essere cryomilled, che è opzionale per la schiuma fabbricazione, ma necessaria per la sintesi microsupporto. bar scala rappresenta 3 mm. 5. L'ECM macinate o cryomilled viene poi digerito con α-amilasi e omogeneizzata per creare una sospensione omogenea ECM. bar scala rappresenta 1 cm.
Protocol
1. Elaborazione tessuto decellularizzato
- Decellularization e liofilizzazione
- tessuto Decellularize (s) di interesse a seguito di un protocollo stabilito.
NOTA: Ponteggi in questo studio sono stati preparati seguendo protocolli decellularizzazione pubblicati per DAT umano 28, DDT porcina 8, e suina DLV 32. Disponibile in commercio, collagene insolubile può anche essere usato per fabbricare schiume e microcarriers, come il collagene provenienti da tendine bovino, che è stato usato con successo su un intervallo di concentrazione di 10 - 50 mg / mL. Altre fonti di collagene insolubili possono essere utilizzati, ma possono richiedere ottimizzazione per individuare l'intervallo di concentrazione che produrrà impalcature stabili. - Trasferire il tessuto decellularizzato idrato o collagene purificato in una provetta da centrifuga 50 con una pinza e aggiungere sufficiente acqua distillata doppia (DDH 2 O) immergere il tessuto, toa volume massimo totale di 35 ml.
- Congelare il campione una notte a -80 ° C, con la provetta in posizione orizzontale durante il congelamento per massimizzare l'area di superficie per sublimazione durante la successiva liofilizzazione.
- Rimuovere il tappo dalla provetta e trasferire il campione congelato in un vaso liofilizzazione.
- Lyophilize campione utilizzando un laboratorio liofilizzatore per 48 - 72 ore o fino a quando completamente asciugato.
NOTA: Il tempo di asciugatura può variare per diversi liofilizzatori e tessuti decellularizzato. - Finemente tritare l'ECM liofilizzata in piccoli pezzi (~ 1 - 2 mm 3) usando forbici chirurgiche affilate.
- Conservare l'ECM tritata in un essiccatore fino al momento per ulteriori elaborazioni.
NOTA: Si raccomanda che l'ECM tritato essere utilizzato immediatamente per evitare l'assorbimento di umidità dall'ambiente.
- tessuto Decellularize (s) di interesse a seguito di un protocollo stabilito.
- Cryomilling (facoltativo per schiuma fabbricazione)
- Riempire un acciaio inossidabile camera di macinazione 25 mL di laboratoSistema ry ball mulino con ECM liofilizzato macinate e aggiungere due sfere in acciaio inox fresatura 10 mm.
- Chiudere e completamente immergere la camera di macinazione caricata in azoto liquido per 3 min.
- Mill il campione congelato per 3 minuti a 30 Hz (1.800 rpm).
- Ripetere i punti 1.2.2 e 1.2.3 finché l'ECM è macinato in una polvere fine.
NOTA: Il numero di volte in cui questi passaggi devono essere ripetuti può variare tra le sorgenti ECM. Ad esempio, DAT genere richiede 3 cicli di fresatura per generare una polvere fine. - Trasferire la polvere utilizzando uno scoopula in una fiala di vetro, sigillare ermeticamente, e memorizzare in un essiccatore.
- Preparazione ECM Sospensione
- Pesare 250 mg di ciascuna macinata (per schiume) o cryomilled (per schiume o microcarriers) ECM e trasferirlo in una provetta da centrifuga 15. Fare riferimento al punto 1.1.6 e 1.2 per la preparazione di ECM macinate e ECM cryomilled, rispettivamente.
NOTA: Questo protocollo è progettato per preparare 50 mg / mL ECM suspenSion, che è raccomandato per DAT umana, DDT suina e suina DLV. A seconda della fonte ECM specifico, sospensioni uniformi possono essere generati a concentrazioni iniziali superiori o inferiori. - Aggiungere 5 ml di 0,22 M NaH 2 PO 4 (pH 5.4) tampone nella provetta da centrifuga e segnare il livello del liquido sul tubo.
- Preparare una soluzione madre α-amilasi aggiungendo 7,5 mg di α-amilasi di 1 mL 0,22 M NaH 2 PO 4 (pH 5,4) tampone. Aggiungere 100 ml di soluzione madre α-amilasi (0,75 mg di α-amilasi; 0.3% w / w di tessuto secco) al campione. Aggiungere 0,22 M NaH 2 PO 4 per ottenere un volume finale di 10 ml.
- Agitare la sospensione continuo a 300 rpm per 72 ore a temperatura ambiente.
- Centrifugare la sospensione a 1.500 xg per 10 min. Raccogliere accuratamente e scartare il surnatante senza disturbare il pellet ECM digerito. Risospendere il materiale pellettato in 10 mL di NaCl al 5% diluito in DDH 2 O.
- Ripetere passaggio 1.3.5 per un totale di due risciacqui con 5% di NaCl in DDH 2 O.
- Eliminare il supernatante e risospendere il materiale pellettato in 10 ml di DDH 2 O.
- Agitare la sospensione continuamente a 300 rpm per 10 minuti a temperatura ambiente.
- Centrifugare la sospensione a 1.500 xg per 10 min. Raccogliere accuratamente e scartare il surnatante senza disturbare il pellet ECM digerito.
- Aggiungere 0,2 M di acido acetico fino alla tacca 5 ml praticato al punto 1.3.2.
- Agitare la sospensione continuo a 120 rpm O / N a 37 ° C.
- Omogeneizzare la sospensione ECM a temperatura ambiente in intervalli di dieci secondi usando un omogeneizzatore portatile dotato di un dente di sega sonda larghezza 10 millimetri finché nessun frammenti visibili rimangono. Posizionare la sospensione in un bicchiere di acqua fredda tra gli intervalli di omogeneizzazione per evitare il surriscaldamento.
NOTA: A seconda della sorgente ECM, ulteriore diluizione in 0,2 M di acido acetico può essere richiesto per ottenere una sospensione omogenea. Eraffreddamento xcessive della sospensione ECM può comportare un aumento della viscosità che può interferire con omogeneizzazione efficiente. Se viene rilevato un aumento della viscosità, il campione può essere rewarmed a 37 ° C e sottoposto a ulteriore lavorazione. - Conservare a 4 ° C per un massimo di un mese prima della schiuma o microsupporto fabbricazione.
- Pesare 250 mg di ciascuna macinata (per schiume) o cryomilled (per schiume o microcarriers) ECM e trasferirlo in una provetta da centrifuga 15. Fare riferimento al punto 1.1.6 e 1.2 per la preparazione di ECM macinate e ECM cryomilled, rispettivamente.
2. Fabrication Schiuma ECM-derivato
- Incubare la sospensione ECM dal passaggio 1.3.13 (macinate o cryomilled) a 37 ° C con agitazione a 120 rpm continua fino a quando la sospensione è caldo.
- Diluire la sospensione ECM in 0,2 M acido acetico alla concentrazione desiderata.
NOTA: A seconda della sorgente ECM, schiume stabili può essere preparato nel range di 10 - 100 mg / ml, con il 15 - 50 mg / ml come nei limiti indicati per DAT, DDT e DLV. Tipicamente, schiume fabbricate a concentrazioni più elevate saranno leggermente meno porosa ma più stabile in coltura e maneggevole. - Usando una siringa da 3 ml won un ago da 18 G per evitare la formazione di bolle nella sospensione ECM, riempire lo stampo desiderata con la sospensione ECM. Per fabbricare il DAT, DDT, e schiume DLV, dispensare 400 ml di 35 mg / mL di sospensione ECM in una piastra di coltura trattata cellulare a 48 pozzetti.
NOTA: La forma dello stampo selezionato e il volume della sospensione ECM determineranno la geometria della schiuma risultante. - Coprire e congelare gli stampi durante la notte mettendoli in una -20 ° C o -80 ° C freezer.
NOTA: La temperatura di congelamento può influenzare la porosità delle schiume. Pori più grandi sono attesi quando i campioni vengono congelati a -20 ° C rispetto ai -80 ° C a causa della formazione di cristalli di ghiaccio più grandi 33. Per fabbricare schiume con una struttura porosa uniforme, assicurarsi che lo stampo non è in contatto con una superficie conduttiva per evitare il raffreddamento direzionale. - Posizionare gli stampi contenenti i campioni congelati in un pallone liofilizzatore. Collegare il pallone liofilizzatore alla laboratORY blocco del sistema asciugatrice e asciugare per 24 ore.
NOTA: E 'importante che il campione rimane congelato prima della liofilizzazione. - Conservare le schiume liofilizzati in un essiccatore fino al momento dell'uso.
3. Fabrication microcarrier ECM-derivata tramite Electrospraying
NOTA: Una panoramica del electrospraying set è mostrato in Figura 2.
- Incubare la sospensione ECM cryomilled dal punto 1.3.13 a 37 ° C con agitazione continua a 100 rpm O / N.
NOTA: Cryomilled ECM viene utilizzato per fabbricare i microcarriers ECM-derivati per garantire una maggiore uniformità nella sospensione e prevenire intasamento durante electrospraying. - Carico 3 mL di sospensione ECM in una serratura mL Luer della siringa 3 allegando infusione alato impostare sul foro della siringa.
NOTA: Una serie di misuratori dell'ago può essere utilizzato, riconoscendo che la selezione può influenzare la dimensione e la forma dei microcarriers risultanti. per fabricate le microcarriers DAT, DDT, e DLV, utilizzare un ago G 25. - Fissare la siringa all'interno della pompa a siringa. Fissare l'ago a un supporto storta e posizionare la punta dell'ago verticalmente ad una distanza di 4 - 6 cm dal bordo superiore di un vaso dewar basso modulo (250 - 500 Campo dimensione mL negativa).
- Collegare un elettrodo coccodrillo per la punta dell'ago e collegarlo al terminale positivo di alimentazione ad alta tensione.
- Piegare una striscia di lamina di alluminio (12 x 5 cm) oltre il bordo del contenitore termico.
- Collegare un secondo elettrodo coccodrillo al bordo esterno del foglio e collegarlo al terminale di sorgente massa dell'alimentatore.
- Riempire il vaso dewar con azoto liquido per circa 1 cm dalla parte superiore, in modo che ¾ della lamina è sommerso.
NOTA: E 'importante mantenere il vaso dewar riempito con azoto liquido. La superficie dell'azoto liquido deve essere inferiore a 2 cm dalla parte superiore del pallone nel procedimento di electrosprayingS. rabbocco continuo dell'azoto liquido è richiesto per mantenere un livello costante durante electrospraying. - Impostare la pompa a siringa ad una velocità di infusione di 30 ml / h.
NOTA: Variando la velocità di infusione può alterare la forma microsupporto e il diametro, ma l'intervallo consigliato è 25 - 35 ml / h. Mentre è fortemente dipendente dalla viscosità della sospensione, le portate inferiori a 25 ml / h può comportare la generazione di microcarriers grandi. A portate molto basse, la dimensione e la forma dei microcarriers possono diventare meno omogenea. Alla velocità di infusione sopra i 35 ml / h, l'uniformità delle goccioline generate tramite electrospraying può essere interrotto, con conseguente microcarriers non sferiche con una distribuzione di dimensione più ampia 34. - Applicare una tensione di 20 kV e accendere la pompa a siringa per avviare electrospraying.
NOTA: La tensione può essere variata per regolare le dimensioni delle microcarriers e tende ad avere un maggiore impatto sul diametro che l'infusioTasso n. L'intervallo di tensione raccomandato è 15 - 25 kV. Una diminuzione del diametro microsupporto è previsto con un aumento della tensione 35. - Dopo il completamento dell'infusione, accuratamente travasare azoto liquido in eccesso dal Dewar, lasciando le microcarriers sospese in ~ 25 mL di azoto liquido per garantirne la congelati.
- trasferire immediatamente i microcarriers con l'azoto liquido in un tubo da 50 ml centrifuga versando in un movimento uniforme. Raccogliere eventuali microcarriers congelati rimasti nella Dewar con uno scoopula e aggiungerli alla provetta.
NOTA: A seconda della dimensione del Dewar, le microcarriers in azoto liquido può essere inizialmente versata in un recipiente di medie dimensioni, e quindi trasferito immediatamente nel tubo da 50 ml per centrifuga. - Coprire provetta contenente le microcarriers in azoto liquido con un foglio di alluminio perforato con piccoli fori in preparazione per liofilizzazione.
- Posizionare la centrifuga copertotubi in un pallone liofilizzatore. collegare immediatamente il pallone liofilizzatore e asciugare i campioni O / N.
NOTA: E 'molto importante mantenere i microcarriers sospese in azoto liquido per garantire che non scongelare prima di questa fase, come scongelamento può provocare il collasso e / o aggregazione. DAT, DDT e DLV microcarriers fabbricate ad una concentrazione di 35 mg / ml usando le condizioni electrospraying sopra descritte hanno tipicamente un diametro idratato compresa fra i 350 - 500 um di dimensione. La distribuzione delle dimensioni possono variare a seconda della fonte ECM. - Conservare le microcarriers liofilizzati in un essiccatore fino al momento dell'uso.
Figura 2. Descrizione generale del Apparato Electrospraying utilizzato in microcarrier Fabrication. A: Immagine che mostra la disposizione delle apparecchiature electrospraying chiave tra cui la pompa a siringae alimentatore ad alta tensione, nonché il posizionamento dell'ago rispetto alla Dewar di azoto liquido. B: Electrospraying schematica, compresi gli intervalli consigliati per la tensione, velocità di infusione, e la distanza. Si prega di cliccare qui per vedere una versione più grande di questa figura.
4. Schiume Preparazione e microcarriers per colture cellulari
- reidratazione
- Trasferire le schiume liofilizzati con pinza in un tubo da 50 ml centrifuga contenente eccesso di etanolo assoluto (~ 99.9%) (~ 5: 1 rapporto di etanolo per schiume). Analogamente, risospendere le microcarriers liofilizzati in eccesso di etanolo assoluto all'interno della provetta originale utilizzato per la raccolta. Usando una pipetta sierologica, filtrare le microcarriers attraverso un acciaio setaccio a maglie di dimensione definita in un nuovo tubo 50 ml centrifuga per eliminare eventuali aggregati e selezionare per intervalli di dimensioni desiderate.
NOTA: Se le schiume sono fabbricati all'interno piastre TCP, possono essere reidratati direttamente all'interno di questi vasi. - Incubare a 4 ° C per 4 ore o fino a quando le schiume o microcarriers hanno gravità depositata sul fondo della provetta. Eseguire tutte le fasi successive in una cappa a flusso laminare sterile utilizzano reagenti e la corretta tecnica asettica.
- Rimuovere l'etanolo assoluto con una pipetta sierologica e aggiungere eccesso (rapporto 5: 1) 95% di etanolo diluito con soluzione salina fosfato sterile tamponata (PBS) per i ponteggi. Incubare a 4 ° C per 4 ore o fino a quando le impalcature ECM-derivati hanno toccato il fondo del recipiente reidratazione.
- Gradualmente reidratare i ponteggi attraverso una serie di etanolo (90, 85, 80, 75, 70, 50, 25 e 0%, diluita con PBS sterile). Ad ogni passo, incubare a 4 ° C fino a quando i ponteggi hanno toccato il fondo del recipiente prima di cambiare la soluzione. Degassare i ponteggi sotto vuoto luce se la formazione di bolle all'interno dei ponteggi è observed.
- Sostituire la PBS sterile per ulteriori due risciacqui per eliminare l'etanolo residuo.
- Conservare in 100% sterile PBS a 4 ° C fino al momento coltura cellulare. Utilizzare i ponteggi all'interno di 1 - 2 settimane dopo la reidratazione.
- Trasferire le schiume liofilizzati con pinza in un tubo da 50 ml centrifuga contenente eccesso di etanolo assoluto (~ 99.9%) (~ 5: 1 rapporto di etanolo per schiume). Analogamente, risospendere le microcarriers liofilizzati in eccesso di etanolo assoluto all'interno della provetta originale utilizzato per la raccolta. Usando una pipetta sierologica, filtrare le microcarriers attraverso un acciaio setaccio a maglie di dimensione definita in un nuovo tubo 50 ml centrifuga per eliminare eventuali aggregati e selezionare per intervalli di dimensioni desiderate.
- Preparazione per Cell semina
- Il giorno prima della semina, trasferire le schiume con pinze in coltura cellulare trattato bene piastre o inserti transwell e aggiungere terreno di coltura cellulare sufficiente (selezionato in base al tipo di cellula di interesse) per immergere completamente le impalcature (ad esempio, 2,5 mL / scaffold in una piastra 12 pozzetti). Analogamente, consentono ai microcarriers alla gravità depositano all'interno della provetta da centrifuga, attentamente rimuovere il PBS usando una pipetta sierologica senza disturbare i microcarriers, e aggiungere terreno di coltura per ottenere un rapporto 5: 1 di mezzo ai microcarriers.
NOTA: per la semina ASC umani, utilizzare mezzo di Eagle modificato da Dulbecco (DMEM): miscela di nutrienti F12 di Ham integrato consiero 10% bovino fetale (FBS) e 1% di penicillina-streptomicina. - Sostituire il terreno di coltura cellulare per un totale di un risciacquo.
- Equilibrare la notte ponteggi nel terreno di coltura a 37 ° C. I ponteggi saranno pronti per la semina delle cellule il giorno successivo.
NOTA: Le schiume possono essere seminati in staticamente inserti colture cellulari o coltura tissutale piastre a pozzetti 29, o seminate dinamicamente utilizzando un agitatore da laboratorio 36. A seconda della fonte ECM, metodi di lavorazione e la concentrazione della sospensione, semina dinamica può migliorare l'adesione cellulare iniziale, la proliferazione e l'infiltrazione. I microcarriers possono essere seminati dinamicamente utilizzando un sistema di coltura filatore 11.
- Il giorno prima della semina, trasferire le schiume con pinze in coltura cellulare trattato bene piastre o inserti transwell e aggiungere terreno di coltura cellulare sufficiente (selezionato in base al tipo di cellula di interesse) per immergere completamente le impalcature (ad esempio, 2,5 mL / scaffold in una piastra 12 pozzetti). Analogamente, consentono ai microcarriers alla gravità depositano all'interno della provetta da centrifuga, attentamente rimuovere il PBS usando una pipetta sierologica senza disturbare i microcarriers, e aggiungere terreno di coltura per ottenere un rapporto 5: 1 di mezzo ai microcarriers.
Representative Results
In questo studio, abbiamo fabbricato schiume e microcarriers ECM derivato utilizzando DAT umano, DDT porcina e porcina DLV come esempi rappresentativi dimostrano che le tecniche possono essere applicate per generare bioscaffolds tessuto-specifici utilizzando una varietà di tessuti decellularizzati come fonti ECM ( figura 1). Sia per schiuma e microcarrier fabbricazione, la tecnica Nishihara di collagene solubilizzazione con l'enzima glicolitico α-amilasi 37 è atto a generare una sospensione ECM viscoso dal tessuto materiali di partenza decellularizzati, che viene utilizzato per sintetizzare le bioscaffolds attraverso procedure di congelamento e liofilizzazione controllati.
Per fabbricare le schiume, tessuti decellularizzati possono essere elaborati attraverso sia macinazione meccanica o cryomilling per aumentare la superficie prima della digestione enzimatica. A seguire45; amilasi trattamento e omogeneizzazione, la sospensione risultante viene erogato ECM in uno stampo definito dall'utente, che viene poi congelato e liofilizzato. I ponteggi possono essere memorizzati stabilmente allo stato secco per un periodo prolungato di tempo. Prima dell'uso in studi su colture cellulari, i ponteggi liofilizzati devono essere sottoposti ad un processo di reidratazione controllato che produce schiume omogenei porosi e altamente idratati derivate da ECM puro (Figura 3A). Se gli espansi sono reidratati troppo rapidamente, rapido gonfiore può danneggiare delicate caratteristiche strutturali, con conseguente perdita di integrità e collasso strutturale. In generale, gli espansi manterranno la forma definita dallo stampo seguente reidratazione originale e sono stabili senza necessità di reticolazione chimica. Figura 3B mostra rappresentante microscopio elettronico a scansione (SEM) immagini del DAT, DDT, e DLV schiume fabbricato con ECM cryomilled ad una concentrazione di 35 mg / mL e una temperatura di congelamento di -80 & #176; C.
Figura 3. rappresentativi Immagini della DAT, DDT, e DLV Schiume fabbricato con Cryomilled ECM Sospensioni ad una concentrazione di 35 mg / mL e congelato a -80 ° C. A: vista macroscopico del DAT, DDT, e DLV schiume sintetizzati in 48 pozzetti stampo piastra di coltura tissutale conseguente reidratazione fresato. Barre di scala rappresentano 1 cm. B: immagini SEM delle schiume DAT, DDT, e DLV mostrando un ultrastruttura porosa omogenea. Barre di scala rappresentano 100 um. Si prega di cliccare qui per vedere una versione più grande di questa figura.
Le sospensioni ECM cryomilled possono anche essere utilizzati per generare microcarriers ECM-derivato puri attraverso tecniche electrospraying (Figura 2 (Figura 4A). Mentre le microcarriers possono essere memorizzati in uno stato liofilizzato, è raccomandato per facilità di trattamento che sono erogate o setacciati per un intervallo di dimensioni desiderato seguendo risospensione in etanolo. Immagini SEM suggerisce che l'ultrastruttura microsupporto può variare a seconda della fonte di tessuto decellularizzato (Figura 4B).
Figura 4. rappresentativi Immagini della DAT, DDT, e DLV microcarriers fabbricato con Cryomilled ECM Sospensioni ad una concentrazione di 35 mg / mL, una velocità di infusione di 0,5 mL / min, ed una tensione applicata di 20 kV. A: macroscopica vista of gli idrati microcarriers DAT, DDT, e DLV. Barre di scala rappresentano 4 mm. B: immagini SEM delle microcarriers DAT, DDT, e DLV mostrano che l'ultrastruttura e le dimensioni possono variare a seconda della fonte ECM. Barre di scala rappresentano 100 um. Si prega di cliccare qui per vedere una versione più grande di questa figura.
Le proprietà meccaniche dei ponteggi dipendono dalla sorgente ECM, il metodo di lavorazione applicato (cioè macinazione contro cryomilling), la concentrazione della sospensione ECM, e la temperatura di congelamento. In generale, i ponteggi sono morbidi e conformi con moduli di Young nell'intervallo di 1 - 5 kPa riportata per la DAT (50 e 100 mg / mL) 29 e schiume DLV (20 - 50 mg / mL) 31, e <1 kPa per i microcarriers. Le schiume cryomilled sono tipicamente più morbidi thuno schiume tritate a causa della loro natura più interrotto. sistemi di prova meccanici specializzati muniti di celle di carico altamente sensibili sono necessari per un'accurata caratterizzazione delle proprietà a compressione. Tipicamente, le schiume e microcarriers avrebbero moduli inferiore ai tessuti nativi decellularizzati dovute alle ulteriori fasi di lavorazione coinvolte nella fabbricazione compresi digestione enzimatica e omogeneizzazione, nonché la natura non covalente reticolato dei ponteggi. Tuttavia, questo può variare a seconda del tessuto di interesse. Ad esempio, nel lavoro precedente, abbiamo scoperto che macinate DAT schiume fabbricata a concentrazioni alte ECM (100 mg / ml) dovuto moduli simile al tessuto adiposo nativo 29.
Le schiume e microcarriers ECM derivato reidratati possono essere seminati con cellule in condizioni di coltura statiche o dinamiche di fornire una piattaforma di supporto per cellule in studi su colture cellulari in vitro e / or in consegna cellule vivo. Mentre i ponteggi generalmente supportano attacco delle cellule, l'efficienza di semina dipenderà dalla sorgente ECM, la geometria scaffold e porosità, e il tipo cellulare di interesse. Come tali, i metodi di semina e densità richiederanno ottimizzazione seconda delle condizioni definite dall'utente. Per le schiume descritte sopra, si consiglia una concentrazione cellulare iniziale nell'intervallo di 0,25 - 1 x 10 6 cellule / scaffold, con semina dinamica su un agitatore orbitale per migliorare infiltrazione di cellule. Per i microcarriers, suggeriamo una densità di semina iniziale nell'intervallo 25.000 - 50.000 cellule / mg di microcarriers, con semina effettuata in condizioni dinamiche in una cultura beuta filatore 11. Le immagini mostrate nella parte inferiore della figura 1 rappresentano ASC umani seminate su una schiuma DAT (sinistra) o DAT microcarrier (destra, prelabeled con un colorante ammina reattiva e apparire blu 13), come visualizzato da micro confocalescopia fluorescente utilizzando un colorante vitalità cellulare (cellule vive = verdi, cellule morte = rosso; scala barre rappresentano 100 um). microscopia confocale può essere utilizzato per visualizzare le cellule seminate sulla superficie di schiume fino a 2 mm di spessore, ma visualizzazione nelle regioni centrali degli scaffold è limitata dalla loro natura opaca. Tuttavia, le schiume e microcarriers possono essere trattati come tessuti e inclusi in paraffina o crio-sezionati per istologica e immunoistochimica analisi di visualizzare distribuzione delle celle e l'espressione marcatore.
Discussion
In generale, bioscaffolds derivati da tessuti decellularizzati possono più strettamente approssimare la composizione 3D complessa e struttura della ECM nel microambiente cellulare nativo rispetto agli scaffold sintetici o modelli di coltura standard basati su 2D TCPS. Come discusso in precedenza, le interazioni cellula-ECM sono criticamente importanti nel mediare comportamento cellulare sia nella cultura e nel corpo 1. Riconoscendo che le proprietà biochimiche, biofisiche, e biomeccaniche del ECM sono unici per ogni tessuto, è sempre più evidente per sostenere le ragioni per l'applicazione di approcci tessuto-specifiche nella progettazione di biomateriali per l'ingegneria dei tessuti, così come nello sviluppo di più fisiologicamente modelli di coltura rilevanti per esperimenti in vitro 20. Utilizzando tessuti decellularizzati come materiale di partenza, i nostri metodi possono incorporare la complessa composizione della ECM specifico tessuto entro più custFormati ponteggi omizable. Mentre le operazioni meccaniche ed enzimatiche di elaborazione si tradurrà in una perdita della ultrastruttura ECM nativa, studi precedenti con DAT hanno dimostrato che gli effetti istruttivi della ECM derivate da tessuto adiposo sono conservati in questi formati impalcatura, suggerendo che la composizione bioscaffold è un mediatore chiave della funzione delle cellule 11, 29. Un significativo vantaggio di utilizzare schiume ECM-derivato e microcarriers come substrati di coltura cellulare rispetto ai tessuti intatti decellularizzati è che sono più omogenea, che può migliorare l'uniformità di distribuzione delle celle e le interazioni cellula-cellula / cellula-ECM.
I metodi qui descritti possono essere utilizzati per generare una vasta gamma di bioscaffolds tessuto-specifici per l'uso in applicazioni di coltura cellulare e ingegneria tessutale. Ad esempio, oltre al DAT, DDT, e DLV, il nostro laboratorio ha applicato con successo queste tecniche per generare por 3Dschiume OU utilizzando osso decellularizzato, cartilagine, nucleo polposo, e fibroso, così come disponibile in commercio, collagene insolubile derivato da tendine bovino. Da una prospettiva in vitro, questi bioscaffolds potrebbero essere utilizzati come base per modelli di coltura fedeltà superiore 3D per indagare biologia cellulare, fisiologia o malattia patologia 38, come substrati bioattivi in alto throughput piattaforme di screening farmaco 39, o matrici come istruttivi per stelo differenziazione cellulare 40, 41. DAT, DDT e DLV schiume fabbricate a concentrazioni di 25 - 50 mg / ml sono stabili a lungo termine in coltura in vitro (testato fino a 28 giorni). Inoltre, tutti i tre tipi di microcarriers possono supportare l'adesione cellulare e la proliferazione in condizioni dinamiche in un sistema di coltura filatore bassa potenza di taglio (10 - 15 rpm) per almeno 2 settimane. Per le applicazioni in vivo, il biocompatibile e biodegradable schiume e microcarriers ECM-derivato promettenti come prodotti off the shelf per stimolare rimodellamento tissutale costruttivo e rigenerazione 11, 29. Inoltre, i ponteggi cellule adesive potrebbero essere utilizzati come sistemi di somministrazione di terapia cellulare 42, 43. Come esempio, le schiume DAT hanno mostrato di promuovere l'angiogenesi e adipogenesis quando seminato con ASC allogenici e impiantato per via sottocutanea in un modello di ratto immunocompetente 29. Rispetto al DAT intatto, DAT più elaborato schiume degradata molto più rapidamente, con una riduzione del 50% in volume osservato a 3 settimane come vennero integrati con i tessuti dell'ospite, e quasi totale riassorbimento di 12 settimane. Tuttavia, gli espansi anche indotto una risposta angiogenica più potente, suggerendo che l'ECM enzima digerita avuto effetti unici pro-rigenerative. Analogamente, i microcarriers ECM-derivati possono essere usati come in vitro </ em> substrati di coltura cellulare nei sistemi di coltura dinamici e veicoli di consegna cella come iniettabili 11, 30, 44. Più specificamente, il piccolo diametro e ampia area superficiale delle microcarriers potrebbe consentire l'erogazione di una grande quantità di cellule in un piccolo volume, pur fornendo una matrice che può aiutare a sostenere la vitalità delle cellule e aumentare la ritenzione delle cellule nel sito di iniezione 30. Prima di utilizzare in qualsiasi sistema vivente, è fondamentale garantire che l'ECM sorgente è sostanzialmente privo di componenti cellulari antigenici e / o reagenti decellularizzazione potenzialmente citotossici che potrebbero innescare una risposta dell'ospite 7 negativo.
Pepsina enzima proteolitico è comunemente usato nella preparazione di idrogel ECM-derivato 15. Pepsina è una proteasi non specifico che digerire collagene ed altre proteine ECM into piccoli frammenti 45. Mentre idrogel fabbricati con ECM pepsina-digerito sono stati segnalati per avere effetti di cellule-istruttivo, una limitazione è che questi materiali tendono ad essere estremamente meccanicamente deboli 46. Nel nostro sviluppo iniziale delle microcarriers DAT, abbiamo utilizzato un approccio composito in cui pepsina-digerito DAT è stato combinato con alginato e aggiunta goccia a goccia in CaCl 2 per formare perle sferiche 30. Le perle sono state successivamente foto-reticolato e l'alginato è stato estratto usando il citrato di sodio. Oltre alla necessità di reticolazione chimica, una limitazione chiave era che le microcarriers fabbricati con questo approccio ha avuto scarsa stabilità di sotto di una gamma di dimensioni 900 - 950 um 30. Al posto di pepsina, i metodi qui presentati utilizzano una digestione più lieve della ECM con l'enzima glicolitico α-amilasi, che viene postulato di scindere gruppi carboidrati dalla teloperegioni ptide di collagene, aumentando così la solubilità in acido acetico 37. Questo approccio consente l'isolamento di collagene altamente polimerizzata che può essere utilizzato per generare schiume e microcarriers ECM-derivato puri senza la necessità di reticolazione chimica o altri additivi. Questi bioscaffolds sono stabilizzate mediante interazioni fisiche e legami idrogeno tra fibrille di collagene ben conservati, simile al collagene nel microambiente ECM nativa.
Le schiume sono una piattaforma altamente flessibile che può essere fabbricato in un'ampia gamma di geometrie seconda stampo specifico selezionato. Per gli studi di coltura cellulare, gli espansi possono essere colate direttamente TCPs piastre a pozzetti, per formare rivestimenti o ponteggi 3D di vario spessore. Per fabbricare schiume 3D con superfici molto uniformi, si raccomanda che uno stampo personalizzato è progettato che può essere sigillato su entrambi i lati con vetrini plastica o vetro. Sia ECM tritati o cryomilled può essere utilizzato per sintetizzarele schiume. In generale, abbiamo trovato che le schiume cryomilled tendono ad essere macroscopicamente più morbida ed avere un ultrastruttura più perturbato a concentrazioni inferiori 31, 36. A seconda della fonte di tessuto, le fasi di lavorazione meccaniche aggiuntive possono provocare alterazioni della composizione ECM che potrebbe influenzare la funzione delle cellule. Ad esempio, nel nostro lavoro precedente, laminina è stato rilevato in schiume DLV tritate, ma non cryomilled DLV schiume 31. Al contrario, collagene I, collagene IV, laminina, fibronectina e sono stati rilevati sia macinate e cryomilled DAT schiume 36. In aggiunta alle fasi di lavorazione meccanica, la dimensione dei pori e la porosità degli espansi può essere sintonizzata in una certa misura, variando la concentrazione della sospensione ECM e la temperatura di congelamento 47. In generale, schiume concentrazione inferiori (~ 10 - 15 mg / mL) sono qualitativamente più porosa, ma possono contrarsi rapidamente e hanno scarsastabilità a lungo termine cultura 31, 36. Analogamente, un tasso di congelamento lento, tipicamente raggiunti da una temperatura di congelazione superiore, può portare a pori più grandi nelle schiume a causa delle dimensioni dei cristalli di ghiaccio che si formano durante la fabbricazione 29. Tutti questi parametri possono influenzare le interazioni delle cellule con i materiali, tra cui l'attaccamento, l'infiltrazione, e il rimodellamento. Ad esempio, la crescita cellulare in schiume che sono fabbricati con concentrazioni ECM superiori può essere limitata alle zone superficiali, in particolare con sorgenti ECM macinate e in condizioni di coltura statiche 36.
Ai microcarriers, i parametri chiave che possono essere regolati sono la concentrazione della sospensione ECM, gauge, e la tensione applicata, con concentrazioni superiori tipicamente cedevole microcarriers che sono più stabili in coltura dinamica a lungo termine. Dopo l'apertura del electrospraying, i suspens ECMgoccioline ioni dovrebbero rientrare rapidamente nel centro del pallone, verso la direzione del collettore foglio di alluminio. Per prevenire l'aggregazione, è importante che le perline contatto con l'azoto liquido prima lamina. La distanza tra l'ago e la superficie del azoto liquido può essere regolata per soddisfare tali requisiti. È importante notare che l'ottimizzazione può essere richiesta a seconda delle caratteristiche delle sorgenti ECM specifico, in particolare nel selezionare un intervallo di concentrazione che genererà bioscaffolds stabili. Un altro fattore chiave è il protocollo decellularization che viene utilizzato per generare i materiali di partenza, come metodi di decellularizzazione che degradano l'ECM o la presenza di reagenti residui (per esempio, tensioattivi) possono avere un impatto negativo sulla stabilità delle schiume risultanti e microcarriers. Se si incontrano problemi con la stabilità bioscaffold, opzioni che possono essere studiati includono l'utilizzo di un processo di reidratazione più graduale, aumentando la sosp ECMconcentrazione ensione, ed esplorare tritata contro ECM cryomilled. Qualora tutte queste opzioni non riescono a risolvere il problema, può essere necessario per esplorare i protocolli di decellularizzazione o fonti alternative ECM.
Per garantire la riproducibilità durante la produzione scaffold, particolare attenzione deve essere presa in determinate fasi del protocollo. Quando cryomilling i tessuti decellularizzati, si raccomanda di fresatura essere effettuata immediatamente dopo liofilizzazione in un ambiente secco per ridurre la probabilità di aggregazione delle particelle dovuta all'assorbimento di umidità dall'ambiente. Durante la fabbricazione microcarrier, si suggerisce che la sospensione è electrosprayed in piccoli lotti, con un volume massimo di 3 mL, per evitare problemi con raffreddamento di esempio che possono provocare l'ostruzione dell'ago. Inoltre, è essenziale che i microcarriers non sono autorizzati a scongelare dopo il processo di electrospraying. Per mantenere la loro geometria sferica e stabilità meccanica, il microcarritori devono essere raccolti e azoto liquido, trasportato in un contenitore di liquido riempito di azoto, e subito liofilizzate. Infine, sia per le schiume e microcarriers, è fondamentale che le fasi di reidratazione vengono eseguiti lentamente in un periodo di diversi giorni. reidratazione rapida può provocare collasso strutturale sulla macro e / o micro-scala. Inoltre, reidratazione deve avvenire lentamente per evitare la formazione di piccole bolle d'aria all'interno del ponteggio, che possono richiedere una notevole quantità di tempo degassare sotto vuoto luce.
In conclusione, i metodi presentati in questo documento possono essere usati per fabbricare una gamma diversificata di schiume tessuto-specifici e microcarriers compresi pura, ECM non chimicamente reticolato. Un vantaggio per i ricercatori biologici è che i bioscaffolds sono facili da maneggiare e possono essere elaborati in modo simile ai tessuti durante l'esecuzione di analisi con tecniche quali saggi istologia, immunoistochimica, o genica e proteica.Inoltre, i ponteggi ECM derivate possono essere enzimaticamente degradata estrarre popolazioni di cellule seminate o possono essere usati direttamente come veicoli di consegna cellule biodegradabili e biocompatibili. Nel complesso, questa tecnologia piattaforma flessibile detiene grande utilità per numerose applicazioni, tra cui per studi su colture cellulari in 3D che indagano la funzione delle cellule, come substrati di espansione delle cellule, e bioscaffolds come pro-rigenerative.
Disclosures
Gli autori non hanno nulla da rivelare.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Acetic acid, glacial | BioShop | ACE222.500 | |
| Alligator clip leads | VWR | 470149-728 | |
| Aluminium foil | Fisher Scientific | 01-213-101 | |
| α-amylase | Sigma | 101074694 | from Aspergillus aryzae |
| Analytical balance | Sartorius | CPA225D | |
| Centrifuge | Thermo Scientific | 75004251 | With swinging bucket rotor for 15 & 50 mL centrifuge tubes |
| Centrifuge tubes (15 mL) | Sarstedt | 62.554.205 | |
| Centrifuge tubes (50 mL) | Sarstedt | 62.547.205 | |
| Collagen from bovine achilles tendon (insoluble) | Sigma | C9879 | Or similar insoluble collagen source; Can be used as an alternative to decellularized tissues to fabricate the foams and microcarriers |
| Cryomilling system | Retsch | 20.745.0001 | MM 400 |
| Dessicator | Fisher Scientific | 8624426 | For lyophilized ECM and bioscaffold storage |
| DMEM: F12 Hams | Sigma | D6421 | Used for proliferation media |
| Dewar flask | Fisher Scientific | 10-196-6 | Low form; volume range of 250 - 500 mL |
| Double distilled water (ddH2O) | From Barnstead GenPure xCAD Water Purification System | ||
| D-PBS (Phosphate-buffered Saline) | Wisent | 311425125 | |
| ECM (Extracellular Matrix) | Isolated from human adipose tissue, porcine dermis or porcine myocardium, as described in Flynn et al. 2010, Reing et al. 2010, and Wainwright et al. 2010 (ref # 28, 8, 32) | ||
| Ethanol | Greenfield Specialty Alcohols Inc. | P016EAAN | Absolute |
| Fetal bovine serum (FBS) | Wisent | 80150 | Used for proliferation media |
| Forceps | VWR | 37-501-32 | For transferring the foams |
| Freezer (-20 °C) | VWR | 97043-346 | |
| Freezer ( -80 °C) | Thermo Scientific | EXF40086A | |
| Glass vials | Fisher Scientific | 03-339-26D | To store lyophilized cryomilled ECM |
| Hand held homogenizer | Fisher Scientific | 14-359-251 | Speed: 8,000 - 30,000 rpm |
| Homogenizer accessories: saw tooth bottom generator probes | Fisher Scientific | 14-261-17 | 10 x 95 mm |
| Liquid nitrogen | For electrospraying | ||
| Lyophilizer | Labconco | 7750021 | FreeZone4.5 |
| Milling chamber | Retsch | 02.462.0213 | 25 mL volume recommended |
| Milling balls | VWR | 16003-606 | 10 mm diameter, stainless steel recommended |
| 18 G needle | VWR | C ABD305185 | For dispensing ECM suspension into moulds |
| Orbital incubator shaker | SciLogex | 832010089999 | Temperature controlled (37 °C) |
| Penicillin-streptomycin | Life Technologies | 15140-122 | Used for proliferation media |
| Pipet-Aid XP | Mandel Scientific | DRU-4-000-101 | |
| Retort stand | VWR | 470019-526 | |
| Retort stand clamp | VWR | 21573-606 | |
| Safety-Lok Syringe | BD | 309606 | 3 mL Luer lock syringe for microcarrier fabrication and dispensing ECM suspension |
| Serological pipettes (10 mL) | Sarstedt | 86.1254.001 | |
| Serological pipettes (25 mL) | Sarstedt | 86.1685.001 | |
| Sodium chloride | BioShop | 7647-14-5 | |
| Sodium phosphate monobasic | BioShop | 10049-21-5 | |
| Scoopula | VWR | 89259-968 | For collecting microcarriers |
| Surgical scissors | VWR | 82027-590 | |
| Syringe pump | VWR | 10117-490 | Microprocessor controlled |
| High voltage power supply | Gamma High Voltage Research | ES30P-5W/DDPM | Capable of recommended 15 - 25 kV voltage range |
| 12-well plates | Fisher Scientific | 12565321 | For use as molds during foam fabrication; Other sizes or user-defined molds can also be selected |
| Winged infusion set | Terumo | 22258092 | 30 cm tubing length, 25 G 3/4" recommended; Other needle gauges can be used and may influence microcarrier diameter |
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