Summary
手洗被广泛用于预防传染病传播。然而，几乎没有证据显示洗手方法在去除传染病病原体方面是最有效的。我们开发了一种评估洗手方法去除微生物的功效的方法。
Abstract
手洗被广泛用于预防传染病传播。然而，一般来说，洗手方法的效果几乎没有可比证据。此外，很少有证据表明比较洗手方法，以确定哪些最有效地去除感染性病原体。需要进行研究，为传染病爆发期间可能使用的不同洗手方法提供证据。在这里，描述了一种用于评估洗手方法从手中除去微生物及其在漂洗水中的持续性的功效的实验室方法。志愿者的手首先加入测试生物体，然后用各种手洗方法进行洗涤。通常，替代微生物用于保护人类受试者免受疾病。使用改进的“手套汁”方法测试洗涤后志愿者手上剩余的生物体数量：将手放置在带有elu的手套中洗涤并悬浮微生物并通过膜过滤（细菌）或噬斑测定（病毒/噬菌体）使其可用于分析。直接收集从洗手水中冲洗的水分析。手洗效果通过比较洗手后取样样本之间的对数减少值进行量化，不用洗手。通过将来自各种洗手方法的冲洗水样品与仅用水洗手洗后收集的样品进行比较来定量冲洗水持久性。虽然这种方法受到需要使用替代生物来保护人类志愿者的安全性的限制，但它捕获了在体外研究中难以复制的洗手方面，并填补了洗手效力和感染生物在冲洗中持续存在的研究空白水。
Introduction
广泛推荐洗手，以防止疾病的传播，特别是那些通过粪便口服或空气传播的途径，包括腹泻和呼吸系统疾病1 。令人惊讶的是，洗手方法的功效，例如用肥皂和水（HWWS）洗手和用酒精洗手液（ABHS）进行洗手的手段上的生物体的功效几乎没有相似的证据。初步研究发现，与洗手方法相反，洗手的机械作用可能占大多数生物体的去除2,3 。此外，几乎没有哪个洗手方法最有效的比较证据。在非正式文献综述中，确定了14项比较肥皂和洗手液对生物体去除效果的研究。在这些研究中，五个发现ABHS更有效4 ， 16,17之间没有显着差异。这些发现是不一致的，不能解决洗手后冲洗水中有机体持续存在的疾病风险。总的来说，洗手方法对除感染性疾病致病菌的比较功效的证据是有限的。
这种有限的证据导致了在疫点设置中哪些方法最适合的不确定性。例如在2013年至2016年在西非的埃博拉病毒（EVD）病毒爆发期间，几个大型国际响应者对HWWS，ABHS或0.05％氯解决方案提出了矛盾的建议。无国界医生组织（MSF）建议使用0.05％氯溶液进行洗手，而世界卫生组织（WHO）建议使用HWWS或ABHS（如果手不明显污染）。世界卫生组织甚至指出氯不应该被使用，除非没有其他选择可用，因为由于皮肤18,19,20,21,22所需的氯需求，其效果不如其他方法。此外，氯溶液通常由四种不同的氯化合物生产，包括高试验次氯酸盐（HTH），局部产生的和稳定的次氯酸钠（NaOCl）和草酸二氯异氰脲酸钠（NaDCC）。世卫组织委托西非EVD疫情作出的系统评估报告最近发现，只有四项研究调查洗手氯比较的效果23 。这些研究也产生了相互矛盾的结果，这些研究中没有一个使用推荐的氯浓度为0.05％的手洗或调查的微生物，与埃博拉病毒10,24,25,26,27相似。因此，这些建议没有被证明是循证的，目前还不清楚哪些建议是最有效的。
需要进一步的研究来比较洗手方法，以防止感染性病原体的传播，因为洗手干预措施是预防流行病传播的重要工具。这些h洗礼建议必须以证据为依据。因此，开发了用替代物或非感染性病原体进行洗手功效和冲洗水持久性的方法，2，28，29。在这里给出了使用Phi6作为埃博拉病毒替代品并使用大肠杆菌作为常见指示生物的样品结果。在该方案中，提出洗手功效和冲洗水持久性测试。
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Protocol
伦理声明：这里描述的研究（Phi6和大肠杆菌为埃博拉病毒的代理人）由塔夫茨医学中心和塔夫茨大学健康科学园区（＃12018）批准。哈佛大学向塔夫茨机构审查委员会提交审查。
注意：在开始此协议之前，必须完成两个步骤。首先，必须确定并选择要对人类受试者安全使用的待研究的病原体的生物安全1级（BSL-1）代用品或非传染性版本。本协议对BSL-1替代或非感染性病原体是必需的，因为该生物体将用于接种人类志愿者的裸手。其次，在招募志愿者或开始实验之前，必须获得地方机构审查委员会对人类科目进行研究的批准。该协议的许多方面可以进行调整，以满足这一点具体需要的研究问题的兴趣。
招募符合条件的人类学科
- 招募志愿者，在公告板上张贴纸张传单，并向可能有兴趣参加的会员发送电子邮件。这些公告应包括学习目的，联系信息和资格标准。
- 与志愿者会面，评估资格。确认志愿者健康，年龄在18至65岁之间，目前尚未怀孕或服用抗生素，并且没有皮肤损伤/疾病，已知的洗手剂过敏症或与卫生有关的精神卫生问题史。
- 有资格的志愿者阅读同意书。回答他们提出的任何问题，并让志愿者和调查员签署两份表格。保留一份表格，并向志愿者提供一份。
- 管理基线调查，包括有关人口信息，人物的问题皮肤病史，以及近期洗手行为的信息。检查手部皮炎，皮肤损伤或基线皮肤异常迹象31 。
- 安排志愿者为感兴趣的每个生物进行两次测试（一次用于土壤负荷测试，一次用于测试）。指导志愿者在测试前避免抗菌产品进行为期七天的清洗期，以避免个人用品的混淆。
- 为志愿者提供抗菌产品（洗发水，护发素和肥皂）以代替其常用产品。提供重型乙烯手套，并在使用诸如房屋清洁产品的产品时指导受试者佩戴。
2.准备应急响应中常用的洗手液（肥皂，ABHS，0.05％HTH，NaDCC和NaOCl溶液）
注意：氯溶液可以制备在实验前提前12小时，如果储存> 12小时会降解。
- 选择和购买与执行测试的上下文相关的肥皂。
注意：在大多数情况下，对于发展中国家的传染病紧急情况，这将是一大堆肥皂。 - 选择和购买与执行测试的上下文相关的ABHS解决方案。
注意：所选择的ABHS应具有大于或等于70％的乙醇环境，以确保疗效。 - 通过向超纯水中加入颗粒状Ca（ClO） 2粉末，制备0.05％次氯酸钙（Ca（ClO） 2 ）溶液。根据被测试对象的数量确定需要的解决方案。
- 使用以下等式，使用给定百分比的可用氯来确定在给定体积的水中制备所需量的溶液所需的粉末量：
/files/ftp_upload/55604/55604eq1.jpg“/>
注意：Ca（ClO） 2粉末通常具有60-80％的可用氯。
- 使用以下等式，使用给定百分比的可用氯来确定在给定体积的水中制备所需量的溶液所需的粉末量：
- 通过向超纯水中加入粒状NaDCC粉末，制备0.05％二氯异氰脲酸钠（NaDCC）溶液。
- 使用以下等式，使用给定百分比的可用氯来确定在给定体积的水中制备所需量的溶液所需的粉末量：
注意：NaDCC粉末通常具有约50％的可用氯。
- 使用以下等式，使用给定百分比的可用氯来确定在给定体积的水中制备所需量的溶液所需的粉末量：
- 通过向超纯水中加入次氯酸钠溶液来制备稳定的0.05％NaOCl溶液。
- 根据制造商的说明书（ 例如碘量滴定法），使用滴定测试方法确认NaOCl储备溶液的浓度（可能为5-8％）;参见“Su”的材料清单ggested试剂盒）。
- 使用测试方法的结果，使用以下公式计算添加到水中的溶液量：
- 通过将使用电氯离子，超纯水和实验室级氯化钠（NaCl）制备的次氯酸钠溶液加入到超纯水中，制备稳定的0.05％NaOCl溶液。
- 根据制造商的说明书，使用电氯离子，用超纯水和NaCl准备1％的氯溶液。
- 使用滴定测试方法（ 如碘滴定）来确认NaOCl储备溶液32的浓度。
- 使用测试结果，使用以下公式计算添加到水中的溶液量：
- 确认c使用滴定法（ 例如碘滴定法）对每种氯洗涤溶液进行浓缩，并通过加入水或氯源粉末/溶液调节溶液，直到它们在目标浓度（0.045-0.055％）的10％误差内。
3.准备生物和土壤负荷并结合生产接种
注意：在以下小节中， 大肠杆菌和Phi6用作方法描述的样品细菌和病毒生物。
- 准备用于细菌浓度大于10×10 8 CFU / mL的试验用的生物体，病毒大于10×10 7 PFU / mL。
- 为了制备大肠杆菌 ，将非致病性大肠杆菌菌株连接到Luria-Bertani（LB）琼脂平板上，并在37℃下孵育24小时以获得单个菌落。储存于4°C。
注意：这可以完成在实验前几天。- 在实验开始前一天，从板上挑一个菌落，用无菌环接种10 mL LB肉汤。在37℃下振荡孵育过夜。
- 在实验的早晨，通过将1mL的过夜培养物加入到20mL新鲜的LB肉汤中来开始新鲜的培养。孵育约2.5小时以达到细胞密度大于10 8 CFU / mL。
- 使用分光光度计来估计培养物的浓度。
注意：使用来自所用大肠杆菌菌株的标准曲线的先前确定的转化因子，确保浓度大于10 8 CFU / mL 33 。如果细胞密度不够高，请将培养基返回培养箱，然后再次测试直至准备好。
- 使用膜过滤确认浓度34 。
注意：执行连续稀释of在磷酸盐缓冲盐水（PBS）中的培养物，使得过滤的溶液将在板上产生可数数量的菌落（精确数目将取决于所用培养基）。- 用无菌过滤漏斗和真空接头安装火焰和过滤歧管。用乙醇燃烧镊子来灭菌镊子。使用它们在过滤歧管上放置一个0.45μm的过滤器，同时网格朝上。用少量无菌PBS湿过滤器。
- 将漏斗放在基座上，并通过移液或直接倒在过滤器上添加要处理的样品溶液。吸入真空直到整个样品通过膜。用无菌PBS冲洗漏斗的两侧，再次吸入真空。
注意：样品应至少100μL，最多可达100 mL。如果样品少于10 mL，在过滤之前，将大约20 mL的PBS加入过滤漏斗，以确保均质过滤乐。 - 取出漏斗，对镊子进行火焰灭菌，并从基座提起过滤器。将过滤器轻轻放在培养皿中的LB琼脂上，网格朝上，确保过滤器与表面齐平。倒置板并在37℃下孵育24小时。
- 24小时后，从培养箱中取出板并计数大肠杆菌菌落。使用此数据和已知的稀释因子和溶液体积计算过滤溶液的浓度，单位为CFU / mL。
- 使用双重琼脂覆盖法在Pseudomonas syringae宿主中传播Phi6。
- 将100μLPhi6储备悬浮液和100μL 丁香球菌过夜培养直接加入6mL营养肉汤酵母（NBY）软琼脂（0.3％）中。将其倒入含有NBY硬琼脂（1.5％）的板上，并在26℃下孵育过夜。准备足够的板材以产生足够的接种物以供实验估计每板约4mL病毒悬浮液的产量。
- 第二天，在软琼脂层的顶部加入5mL PBS。在室温下放置4 h，用移液管取回，并用0.45μm过滤器过滤。储存于4°C。
注意：该溶液将作为病毒接种。
- 使用斑块测定法确认浓度大于10 7 PFU / mL 35 。在PBS中进行病毒悬浮液的连续稀释，使得100μL在板上产生可数量的斑块。
- 将100μL适当的稀释样品和100μL过夜宿主培养物直接吸入含有6mL NBY软琼脂的管中。将软琼脂倒入NBY硬琼脂上，并在26℃孵育24小时。
- 第二天，从培养箱中取出板块，并计算每块板块的数量。使用此数据和已知稀释度ctor和溶液体积，以计算PFU / mL中过滤溶液的浓度。
- 为了制备大肠杆菌 ，将非致病性大肠杆菌菌株连接到Luria-Bertani（LB）琼脂平板上，并在37℃下孵育24小时以获得单个菌落。储存于4°C。
- 准备三份土壤负荷，旨在模拟人体血清。
- 结合7.80mg / mL牛血清白蛋白，10.92mg / mL胰蛋白胨和2.52mg / mL牛粘蛋白以产生所需体积的土壤负荷。混合土壤负荷后，将其过滤通过0.22μm过滤器进行灭菌。储存于4°C直至使用。不要加热灭菌，因为蛋白质会变性。
- 准备一个0.9％的NaCl溶液，用于混合接种条件，无土壤负荷。
- 在测试之前，准备由68％细菌或病毒悬浮液和32％土壤负荷组成的接种物。例如，使用1.02mL来自步骤3.1.1.2或3.1.3.2的细菌或病毒悬浮液和0.48mL的土壤负荷（步骤3.2.1）或0.9％NaCl溶液（步骤3.3）。旋转或旋转轻轻混合。
注意：1.5 mL在每个条件下，每个志愿者将使用接种物，因此确保所制备的接种物的总体积足以达到预期的测试次数。
4.准备志愿者进行实验
注意：确定当天要测试的有机体和土壤负荷状况。同样的志愿者可以用于测试多个条件，但每个志愿者只能在48小时内进行一轮测试。
- 在开始测试之前，确认志愿者通过口头验证他们是否遵守7天抗菌清洗期，并通过目视确认他们的皮肤没有发生任何休息或异常，仍然有资格。
- 使用随机数字生成器，分配每个志愿者使用他们的右手或左手进行抽样测试。分配执行洗手条件的顺序。
注意：例如，ABHS可以被分配为＃3并将被执行第三。 - 在测试开始时进行一次“清洁洗涤”，以剥离皮肤的污垢和油，以便每个后续测试在相同的条件下进行。
- 要进行清洁洗涤，通过实验的每个步骤（下面的第5部分），使用空白接种（LB肉汤或PBS），并在不进行洗手的情况下取样。
5.实验程序
- 为了测试每名志愿者的皮肤pH值（以控制变异），将平头皮肤pH探针置于手掌表面皮肤和指针和中指之间的腹板空间。确保电极与皮肤平齐。记录pH读数。
- 踩着手。
- 让志愿者双手合身。通过小心地将750μL移液到每个手掌中缓慢滴入1.5mL的接种物。
- 使志愿者轻轻地将手握在一起，直到手的所有表面涂上接种物，同时尽可能少地摩擦手。
- 志愿者将手静止，远离身体30秒，以使接种干燥。接种可能不会完全干燥。
- 洗手
- 对于所有以下洗涤步骤，在大型样品收集袋中从手中捕获漂洗水。向袋中加入4.5 mL 12％硫代硫酸钠溶液，以在2小时内中和接触和过程中的氯。
注意：硫代硫酸钠应加入所有样品（即使没有氯的样品），以控制其对生物的任何影响。 - 接种后（5.2节），用指定的顺序用下一个方法洗手。
- 对于控制A，不要执行洗手步骤并直接移动到步骤5.5。
- 对于对照B，通过具有已知流速的漏斗在室温（约21℃）下用纯超纯水清洗手。
注意：这里使用1.5L / m的流量和500mL的水。 - 用肥皂洗手，用10毫升超纯水湿手。让志愿者用肥皂泡上双手，然后再将手揉在另外20秒钟。通过漏斗以1.5 L / m的流速在室温下倒入500 mL超纯水冲洗手。
- 对于所有氯溶液（ 例如 ABHS，HTH，NaDCC和NaOCl），以1.5L / m的流速通过漏斗倒入200mL氯溶液，并让志愿者彻底擦拭手。
- 对于所有以下洗涤步骤，在大型样品收集袋中从手中捕获漂洗水。向袋中加入4.5 mL 12％硫代硫酸钠溶液，以在2小时内中和接触和过程中的氯。
- 用手工清洗手套进行手工清洗。
- 洗手后，立即放置每个志愿者的手（ 即手（右或左）为睾丸选择在步骤4.2）中将其装入含有75mL洗脱液（ 例如 PBS）的样品袋中，直到手腕。把手的顶部紧紧握在手腕上。
注意：使用含有足够的硫代硫酸钠的洗脱液进行取样以中和用于洗手的任何氯。 PBS是常用的适用于许多生物体的洗脱液。 - 志愿者在解决方案中轻轻擦手30秒，注意手指和指甲之间的距离。轻轻按摩手袋30秒，以确保整个手在洗脱液中彻底冲洗，一直到手腕。
- 密封袋子，并按照第6节所述的适当测定法，在2小时内处理。
- 洗手后，立即放置每个志愿者的手（ 即手（右或左）为睾丸选择在步骤4.2）中将其装入含有75mL洗脱液（ 例如 PBS）的样品袋中，直到手腕。把手的顶部紧紧握在手腕上。
- 去污。
- 在每次洗手方法重复过程之前，志愿者用肥皂和温水彻底洗手。喷雾志愿者用70％乙醇洗手，直到两面涂上。让他们干燥
- 对于每个洗手条件，重复第5节中的所有步骤，仅使用在步骤4.2（ 图1 ）中随机选择的手。
量化
- 执行适合所选生物体的测定（ 例如，细菌的膜过滤或病毒的斑块测定，分别如3.1.2节和3.1.4节）。
- 计数板后，记录每次测试的CFU / mL或PFU / mL（分别为3.1.2和3.1.4）。
7.分析
- 使用步骤6.2的结果，计算生物在手上，每种生物和土壤负荷状态以及每种受试者和洗手方法的对数减少值。
- 对于洗手功效，比较每种细菌/病毒的浓度手洗样品控制A（无洗手）。对于冲洗水持久性，比较每个冲洗水样品以控制B（仅用水洗涤）。使用以下标准公式：
减少记录（洗手 ）=
减量（冲洗水 ）=
注意：减少日志也可以表示为log 10 （无手洗） - log 10 （带洗手）
- 对于洗手功效，比较每种细菌/病毒的浓度手洗样品控制A（无洗手）。对于冲洗水持久性，比较每个冲洗水样品以控制B（仅用水洗涤）。使用以下标准公式：
- 使用单向重复测量方差分析（ANOVA）来评估洗手方法和事后Tukey HSD检验中计算的对数减少值之间的显着差异，以显着模型进行成对评估显着性差异（p <0.05）ef“> 36。
- 在运行方差分析之前，先评估每个数据集的球形度（ 例如使用Bartlett测试）。当测试表明球形度被侵犯时，应用校正（ 例如，温室 - Geisser校正）。
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Representative Results
在这里，协议（ 图1 ）完成了18名志愿者，他们分别使用大肠杆菌和Phi6进行测试。在具有和不具有土壤负荷的大肠杆菌和具有土壤负荷的Phi6之间的洗手结果之间发现显着的差异（ 图2和图3 ）。对于没有土壤负荷的大肠杆菌 ，使用HTH，NaDCC和稳定的NaOCl进行洗手都比仅用水洗手更大（F（6,102）= 2.72，p = 0.034））。土壤负荷下，HTH导致大肠杆菌的 log减少明显大于水，HWWS和ABHS（F（6,102）= 3.94，p <0.001）。没有土壤负荷的Phi6方法差异无统计学意义（F（6,66）= 2.04，p = 0.073）。然而，对于具有土壤负荷（F（6,102）= 7.01，p <0.001）的Phi6，单独的水导致灰比ABHS或稳定的NaOCl减少loglog，并且HWWS比ABHS，稳定的NaOCl和产生的NaOCl具有更大的对数减少。 HTH还具有比ABHS更稳定的NaOCl的log对数降低，并且NaDCC导致比稳定的NaOCl和ABHS更大的对数减少。虽然HTH在条件下表现最为一致，但我们会警惕对重大结果的过度解释，因为许多置信区间很大，从少于0.5log到多于1.5 log的减少。
在漂洗水中，氯导致漂洗水中大肠杆菌比HWWS显着升高（无土壤负荷，F（4,68）= 331.7，p <0.001;土壤负荷F（4,68 ）= 162.44，p <0.001）（ 图4 ）。在没有土壤负荷的Phi6中发现了相同的模式（（F（4,43）= 8.95，P <0.001）），所有氯溶液导致漂洗水中Phi6比HWWS显着降低。 （Ph（4,67）= 3.35，p = 0.071）（ 图5 ），漂洗水与Phi6和土壤负荷持久性差异无统计学意义（ 图5 ）。
图1：实验概述。每轮洗手的五个步骤包括：1）pH测试，2）接种手，3）洗手，4）冲洗手，5）对所测试的8种条件中的每一种进行净化手。 请点击此处查看此图的较大版本。
图2： 大肠杆菌洗手水 ULTS。与没有洗手相比，洗手方法使大肠杆菌的平均log减少量为1.94-3.01，无土壤负荷，土壤负荷为2.18-3.34。用水洗手显示两种条件（1.94和2.18 log） 中大肠杆菌的减少量最少。用NaDCC洗手导致土壤负荷下降最大（3.01），HTH导致土壤负荷下降最大（3.34）。在图表中，线代表生物体的减少百分比，误差条代表对数减少的标准误差。 Ctrl B，控制B; HWWS，用肥皂洗手; ABHS，基于酒精的洗手液; HTH，高试验次氯酸盐; NaDCC，二氯异氰脲酸钠; st NaOCl，稳定的次氯酸钠;生成NaOCl，产生次氯酸钠。 请点击此处查看此图的较大版本。
图3：Phi6洗手结果。与没有洗手相比，洗手方法平均对数减少，Phi6为2.44-3.06，无土壤负荷，2.71-3.69为土壤负荷。用肥皂手洗显示Phi6没有土壤负荷（2.44）减少最少，用稳定的NaOCl洗手，土壤负荷减少最小（2.71）。用生成的NaOCl进行洗手，在没有土壤负荷（3.06）的情况下最大程度地减少，用肥皂洗手可以减少土壤负荷（3.69）。在图表中，线代表生物体的减少百分比，误差条代表对数减少的标准误差。 Ctrl B，控制B; HWWS，用肥皂洗手; ABHS，基于酒精的洗手液; HTH，高试验次氯酸盐; NaDCC，二氯异氰脲酸钠;st NaOCl，稳定的次氯酸钠;生成NaOCl，产生次氯酸钠。 请点击此处查看此图的较大版本。
图4： 大肠杆菌洗手结果。与仅用手洗涤相比，残留在漂洗水中的大肠杆菌的平均对数减少量为0.28-4.77，无土壤负荷，土壤负荷为0.21-4.49。无论是否有土壤负荷，在用肥皂洗手时发现最小的减少量（0.28和0.21）。观察到最大的减少，稳定和产生NaOCl没有土壤负荷（4.77）和HTH和产生的土壤负荷的NaOCl。在图表中，线表示生物体的减少百分比，误差条代表s对数减少的标准误差。 HWWS，用肥皂洗手; ABHS，基于酒精的洗手液; HTH，高试验次氯酸盐; NaDCC，二氯异氰脲酸钠; st NaOCl，稳定的次氯酸钠;生成NaOCl，产生次氯酸钠。 请点击此处查看此图的较大版本。
图5：Phi6手冲洗结果。与仅用手洗涤相比，漂洗水中剩余的Phi6平均对数减少为1.26-2.02，土壤负荷为1.26-2.02，土壤负荷为1.30-2.20。用土壤负荷，用肥皂洗手（1.26）发现最小的减少。没有土壤负荷，HTH导致最小的减少（2.02）。随着NaDCC的增加，土壤负荷的增加和土壤负荷均降低（2.02和2.20）。在图表中，线代表生物体的减少百分比，误差条代表对数减少的标准误差。 HWWS，用肥皂洗手; ABHS，基于酒精的洗手液; HTH，高试验次氯酸盐; NaDCC，二氯异氰脲酸钠; st NaOCl，稳定的次氯酸钠;生成NaOCl，产生次氯酸钠。 请点击此处查看此图的较大版本。
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Disclosures
作者宣称他们没有竞争的经济利益。
Acknowledgments
这项工作得到了美国国际开发署，外援救助办公室（AID-OF-A-15-00026）的支持。 Marlene Wolfe得到了国家科学基金会的资助（授予0966093）。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Soap bar | Dove | White Beauty Bar soap | |
| Alcohol-based hand sanitizer | Purell | Advanced Instant Hand Sanitizer with 70% Ethyl Alcohol | |
| HTH Powder | Acros Organics | 300340010 | |
| NaDCC Powder | Medentech | Klorsept granules | |
| NaOCl Solution | Acros Organics | 419550010 | |
| Electrochlorinator | AquaChlor | ||
| Iodometric titrator | Hach | 1690001 | |
| Bovine serum albumin | MP Biomedicals | NC0117242 | |
| Tryptone | Fisher | BP1421-100 | |
| Bovine Mucin | EMD Milipore | 49-964-3500MG | |
| 0.22 µm Filter | EMD Milipore | GVWP04700 | |
| NaCl | Fisher | BP358-1 | |
| Skin pH probe | Hanna Instruments | H199181 | |
| Large Whirlpak Sample Bag | Nasco | B01447WA | |
| Small Whirlpak Sample Bag | Nasco | B01323WA | |
| Funnel bottle | Thermo Scientific | 3120850001 | You may drill an appropriately sized hole in the lid of a bottle to form a funnel that will dispense water at the appropriate flow rate |
| Ethanol | ThermoScientific | 615090010 | Mix with water to produce 70% ethanol |
| Spray bottle | Qorpak | PLC06934 | |
| E. coli | ATCC | 25922 | |
| LB Broth | Fisher BioReagents | BP1426-2 | |
| LB Agar | Fisher BioReagents | BP1425-500 | |
| Sterile loop | Globe Scientific | 22-170-204 | |
| Phi6 | HER | 102 | |
| Nutrient broth | BD Difco | BD 247110 | |
| GeneQuant 100 Spectrophotometer | General Electric | 28-9182-04 | |
| Sodium thiosulfate | Fisher Chemical | S445-3 | |
| Membrane filter (47 mm, 0.45 µm) | EMD Millipore | HAWP04700 | |
| m-ColiBlue24 broth media | EMD Millipore | M00PMCB24 | |
| Petri dish with pad (47 mm) | Fisherbrand | 09-720-500 | |
| Vacuum Manifold | Thermo Scientific/Nalgene | 09-752-5 | |
| Filter funnels | Thermo Scientific/Nalgene | 09-747 | |
| Pseudomonas syringae | HER | 1102 | |
| Phosphate Buffered Saline | Thermo Scientific | 10010031 | Solution may also be mixed from source compounds according to any basic recipe |
References
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