제시 프로토콜 인플루엔자 백신 받는 사람 혈 청 샘플에서 인플루엔자-특정 항 체 titers 척도를 hemagglutination 억제 시험을 수행 하는 방법을 설명 합니다. 첫 번째 분석 결과 hemagglutination에 의해 최적의 바이러스 성 항 원 농도를 결정합니다. 두 번째 분석 결과 hemagglutination 저해 하 여 인플루엔자-특정 항 체 titers 단정.
항 체 titers 인플루엔자와 다른 병원 체에 대 한 혈 청 학적인 보호에 대 한 대리 표식으로 일반적으로 사용 됩니다. 사전 및 사후 예방 접종 항 체 생산의 상세한 지식은 백신 유도 면역을 이해 해야 합니다. 이 문서에서는 인플루엔자-특정 항 체 titers를 확인 하는 신뢰할 수 있는 포인트 프로토콜을 설명 합니다. 첫 번째 프로토콜 hemagglutination, 두 번째 프로토콜 (hemagglutination 분석 결과, 분석 결과 HA)에 후속 사용 농도 표준화에 필요한 항 원 금액을 지정 하는 방법을 설명 합니다. 두 번째 프로토콜 인간의 혈 청 또는 셀 문화 supernatants (hemagglutination 저해 분석 결과,이 분석 결과)의 직렬 희석을 사용 하 여 다른 바이러스 성 긴장에 대 한 인플루엔자-특정 항 체 titers의 정량화를 설명 합니다.
적용 예를 들어, 우리는 trivalent inactivated 인플루엔자 백신을 접종 하는 건강 한 코 호트의 항 체 응답을 보여줍니다. 또한, 다른 인플루엔자 바이러스 사이의 분 표시 되 고 동물 적혈구 (Rbc)의 다른 종류를 사용 하 여 분을 최소화 하는 방법을 설명 했다. 토론 하이라이트 장점과 제시 분석의 단점 및 어떻게 인플루엔자-특정 항 체 titers 결정 백신 관련 면역의 이해를 향상 시킬 수 있습니다.
인플루엔자 바이러스 감염 상당한 질병 률, 사망률, 및 높은 의료 비용1,2,,34와 연결 됩니다. 특히, 신생아, 임산부, 노인과 만성 질병을 가진 환자는 더 심한 임상 결과 대 한 위험이 있습니다. 따라서, 순환 하는 인플루엔자 바이러스 변종에 대 한 예방 접종이 고 위험도 인구에 있는 질병의 부담을 줄이기 위하여 기본 척도 이다. 예방 접종, 예를 들면, 보호 임계값 이상 인플루엔자-특정 항 체 후 개별 면역 반응의 증가 감염의 개별 위험과 일반 인구 내에서 바이러스 성 전송의 가능성을 감소 5. 백신 유도 체액 면역 반응의 다른 인구에 다양 한 연령층에 걸쳐 자세한 이해는 중요 한 임상 질문6,,78 대답 하는 핵심 요소 , 9와 같은: 왜 일부 노인 환자 이전 예방 접종에도 불구 하 고 감염을 해야 합니까? “좋은”와 “충분 한” 백신 유도 보호는 무엇입니까? 얼마나 자주 백신 보호 titers 도달 immunosuppressed 환자에 게 적용 한다? 가장 효과적인 복용량 무엇입니까? 예방 접종 후 항 체 titers에 소설 보조의 영향 이란 무엇입니까? 백신 관련 항 체 생산의 측정 이러한 중요 한 질문에 대답 하 고 예방 접종 결과 개선 하는 데 도움이 있습니다.
바이러스 특정 항 체 titers의 정량화는 다양 한 면역 방법으로 수행할 수 있습니다. 이 고체 상10 또는 비드 기반 ELISA11 분석 실험,이 분석 결과12및 중화 분석 실험13포함 됩니다. ELISA 기반 메서드는 상대적으로 많은 양의 다양 한 항 원에 대 한 혈 청 샘플의 검사를 수 있습니다. 또한, 병원 체 관련 면역 글로불린 (Ig) M와 IgG 수 수 별도로 탐험. 항 원, 예를 들면, 선형 아미노산 시퀀스 또는 바이러스와 같은 입자의 특성 항 체의 바인딩을 영향을 미칠 수 있습니다, 비록 잠재적인 epitopes의 스펙트럼은 매우 광범위 하 고 여부 항 체에 정보를 제공 하지 않습니다. 응답 기능 관련이 있다.
반면, 중화 시험 기능 세포의 감염을 억제 하는 항 체의 잠재력을 결정 하 고 따라서 잠재적인 중립화를 반영 한다. 그러나,이 방법은 매우 노동 집약 이다, 라인 세포 및 바이러스, 라이브 특정의 경작 그리고 그러므로, 그것은 소모, 비싼, 특별 한 장비가 필요 합니다 필요 합니다.
이 문서에서는 인플루엔자-특정 항 체 titers 척도를 세계 보건 기구 WHO 기반이 프로토콜12 는 단계별 설명. Hemagglutination은 적혈구의 교착을 선도 하는 일부 바이러스의 특성 효과 이다. 환자 혈 청이이 효과의 저해 중화 효과 반영 하는 억제 항 체 농도의 측정을 허용 한다.
우리는 동시에 여러 샘플의 효율적 처리 및 필요한 시간을 줄일 수 있도록 WHO 프로토콜의 워크플로 수정 했습니다. 첫 번째 프로토콜 특정 인플루엔자 항 원의 교착 잠재력의 결정을 설명합니다. 이 과정에서 두 번째 프로토콜에 대 한 올바른 인플루엔자 항 원 농도 결정 됩니다. 이 부분은 혈액의 각 배치 뿐 아니라 모든 새로운 바이러스 성 항 원, 반복 한다.
두 번째 프로토콜 인플루엔자-특정 항 체 titers 결정을 설명합니다. 그러나 제시 프로토콜 인플루엔자 바이러스와 인간 혈 청 샘플의 수사를 위해 최적화 된, 그것은 또한 적용할 수 마우스 혈 청 샘플 또는 셀 문화 supernatants 자극된 면역 세포, 예를 들어, 바이러스 특정 B 세포에서. 절대 측정된 titers로 결과 확인할 수 있습니다. 많은 백신 연구,은 titers 및 95% 신뢰 구간에는 각 특정 인구 표시 됩니다. 해석, seroprotection 또는 혈에 대 한 특정 바이러스 인구의 민감성을 설명 하기 위해 자주 사용 됩니다. Seroprotection 이상 4-fold titer 두 시간 점 (가장 일반적으로 사전 예방 접종과 30 일 사후 예방 접종에 사용 되는) 사이 seroprotective titers 달성과 증가의 ≥1:40, 그리고 혈 titer로 정의 됩니다.
두 프로토콜은 사용 하기 쉽게 하 고 그들은 연구 질문의 광범위 한 범위에 적용할 수 있습니다. 특히, 안정적이 고 신속 하 게 결정 하기 위해 사용할 수 있습니다 hemagglutination, 홍 역, polyomaviruses, 유행 성 이하선염, 또는 풍 진14,15,16 등에 대 한 용량을 가진 다른 다양 한 바이러스에 대 한 항 체 titers .
사전 및 사후 예방 접종 독감 바이러스 titers 특정 항 체의 정량화 백신 연구에 필요한 중요 한 도구입니다. Seroprotection 같은 바이러스 감염에 대 한 보호의 대리 측정에 따라 (> 1시 40분) 또는 혈 (4-fold titer 증가), 예방 접종 전략 수9에 최적화 된. 제공 된 프로토콜을 사용 하 여 확인할 수 있습니다: (i) 특정 바이러스, 및 (ii) 항 체 titers 관심의 바이러스에 대 한 hemagglutination 잠재력….
The authors have nothing to disclose.
없음입니다.
25 ml Disposable Multichannel Pipette Reservoirs | Integra | 4312 | |
8-well PCR tubes | Brand GMBH | 781332 | For serum aliquots |
96-well microtiter plate, U-shaped | TPP | 92097 | For HI assay when using mammalian RBCs |
96-well microtiter plate, V-shaped | Corning Costar | 3897 | For HI assay when using avian RBCs |
Aqua ad iniect. Steril | Bichsel AG | 1000004 | For preparing influenza antigen and cholera filtrate solutions |
Chicken RBC (10%) | Cedarlane | CLC8800 | 10% suspension of chicken red blood cells in Alsever's solution |
Cholera filtrate | Sigma-Aldrich | C8772 | Used as receptor destroying enzyme (RDE) |
Dulbecco's PBS | Sigma-Aldrich | D8537 | For diluting the serum samples, RBCs and antigens |
Eppendorf Multichannel pipette, 12-channel, 10-100 µl | Sigma-Aldrich | Z683949 | |
Eppendorf Multichannel pipette, 8-channel, 10-100 µl | Sigma-Aldrich | Z683930 | |
Guinea Pig RBC (10%) | Cedarlane | CLC1800 | 10% suspension of guinea pig red blood cells in Alsever's solution |
Influenza Anti-A/California/7/09 HA serum | NIBSC | 14/134 | Used as positive control at the HI assay |
Influenza Anti-A/Switzerland/9715293/2013-like HA serum | NIBSC | 14/272 | Used as positive control at the HI assay |
Influenza Anti-A/Texas/50/2012-Like HA Serum | NIBSC | 13/178 | Used as positive control at the HI assay |
Influenza Anti-B/Brisbane/60/2008-HA serum | NIBSC | 13/254 | Used as positive control at the HI assay |
Influenza Anti-B/Massachusetts/02/2012 HA serum | NIBSC | 13/182 | Used as positive control at the HI assay |
Influenza antigen A/California/7/09 (H1N1)(NYMC-X181) | NIBSC | 12/168 | Inactivated, partially purified A/California/7/09 (H1N1)(NYMC-X181) virus (ca. 46µgHA/ml) |
Influenza antigen A/Switzerland/9715293/2013 (NIB88) | NIBSC | 14/254 | Inactivated, partially purified A/Switzerland/9715293/2013 (NIB88) virus (ca. 55µgHA/ml) |
Influenza antigen A/Texas/50/2012 (H3N2)(NYMCX-223) | NIBSC | 13/112 | Inactivated, partially purified A/Texas/50/2012 (H3N2)(NYMCX-223) virus (ca. 74µgHA/ml) |
Influenza antigen B/Brisbane/60/2008 | NIBSC | 13/234 | Inactivated, partially purified B/Brisbane/60/2008 virus (ca. 42µgHA/ml) |
Influenza antigen B/Massachusetts/02/2012 | NIBSC | 13/134 | Inactivated, partially purified B/Massachusetts/02/2012 virus (ca. 35µgHA/ml) |
Serum-Tubes | S-Monovette, Sardstedt | 01.1601.100 | For serum extraction with clotting activator |
Single Donor Human RBC, Type 0 | Innovative Research | IPLA-WB3 | Suspension of single donor human red blood cells in Alsever's solution (ca. 26%) |
Turkey RBC (10%) | Cedarlane | CLC1180 | 10% suspension of turkey red blood cells in Alsever's solution |
Phosphate Buffered Saline (PBS) | Gibco |