Summary
이 연구의 주요 목적은 바늘에 맞게 vitrification (NIV) 절차 전체 zebrafish testes cryopreserve에 몰입 했다. 또한, 5 개의 다른 zebrafish 긴장에서 방법의 반복성 시험 되었다.
Abstract
생명 공학 및 과학의 현재 동향 breeding 식민지 유지의 일반적인 관행을 넘어 유전 자원의 안전한 저장을 위한 새로운 방법에 대 한 필요성에 따라서 선도 모델 생물에서 새로운 라인의 수천의 창조 될. 이 연구의 주요 목적은 바늘에 맞게 vitrification (NIV) 절차 전체 zebrafish testes cryopreserve에 몰입 했다. 전체 testes에 의해 초기 단계 세균 세포의 cryopreservation 이니라 제공 합니다 zebrafish의 스토리지에 대 한 가능성 유전 자원, 특히 이후 이식 후 그들은 둘 다 남성과 여성 gametes로 성숙 수 있습니다. 침술 바늘, 두 cryoprotective 미디어 (평형 솔루션 1.5 M 메탄올 및 1.5 M 프로필 렌 글리콜; 및 vitrification 솔루션 3 M 디 메 틸 sulfoxide 및 3 M 프로필 렌 글리콜을 포함)에 equilibrated에 testes excised 했다 그리고 액체 질소에 뛰어들었다. 샘플 3 결과 지구 온난화 솔루션의 시리즈에는 예 열 했다. 이 기술의 주요 장점은 다운스트림 조작; 촉진 따뜻하게 testes의 소화 후 (1) 정 충의 부족은 (2) 매우 빠른 따라서 냉각 및 cryoprotectants; 그들의 독성을 줄일 필요 농도 감소를 극대화 하는 액체 질소에 조직의 최적의 노출 사용 냉각 (3) 동기 여러 testes의, 노출에 cryoprotectants 액체 질소; 그리고 (4) 반복성의 5 개의 다른 zebrafish 긴장에서 50% 이상의 생존 여 시연.
Introduction
생명 공학 및 과학 소설 동향은 쥐, 초파리, zebrafish의 모형 유기 체 생물 의학에 및 다른 과학1로 사용 하는 다른 종의 새로운 돌연변이 라인의 수천의 창조에 이르렀다. 또한, 새로운 기술을 개발 하 고 사용할 수 있게 되는, 돌연변이 라인의 숫자는 꾸준히2증가. 식민지를 번 식 유지의 일반적인 관행을 넘어 유전 자원의 안전한 저장에 대 한 필요성을이 끈다. 시간이 무기한 기간에 대 한 유전 자원의 안전한 저장을 수 있는 방법으로 cryopreservation 장점이 많은 생식 시즌의 확장 circumvents broodstock, 지속적인 유지 관리를 위해 필요 하 고 그것은 더 많은 비용-와 같은 고 효율적인 노동2.
정자 cryopreservation는 지난 몇 년 동안2,3,4 중 개발에 대 한 프로토콜 zebrafish 남성 유전 물질의 성공적인 저장소에 대 한 기회를 제공 합니다. 그러나, 계란이 나 생선에는 태아의 cryopreservation 불가능 아직 그들의 복잡 한 구조와 노 른 자 물자의 다량. 최근, 원시 생식 세포 (PGCs) 또는 spermatogonial 줄기 세포 (SSCs) 이식의 연습 이식5후 정자와 난 기능으로 개발 하 여이 방 벽을 우회를 제공 합니다. 따라서, SSCs의 cryopreservation 희귀 하 고 귀중 한 유전자 자원의 보존에 새로운 프론티어를 제공합니다.
Cryopreservation 많은 장점을 제공, 비록 느린 속도 동결 과정 세포 손상2로 이어질 수 있는 몇 가지 조건을 생성 합니다. 이러한 세포와 extracellular 얼음 대형, 탈수, cryoprotectant 독성 등이 포함 됩니다. 세포내 얼음 손상 세포, extracellular 얼음 셀의 기계적 분쇄 동안 느린 속도 동결 세포에서 물 보급 탈수6으로 이어질 수 있습니다 하는 동안 발생할 수 있습니다. 최근, 얼음 대형의 부정적인 효과 방지 하는 기술로 vitrification 물고기 gametes7,,89의 cryopreservation에 적용 되었습니다. 통해 내부 및 외부 미디어 얼음7,10에 crystalizing 없이 비정 질/유리 상태로 설정 하는 매우 빠른 냉각 기법을 제공 합니다. 고환 및 난소 조직의 성공적인 vitrification 조류 및 포유류 종10,,1112, 따라서 물고기, 뿐만에서 자사의 응용 프로그램에 대 한 가능성을 열어 입증 되었습니다.
이 연구에서 우리 전체 zebrafish testes의 cryopreservation 바늘 몰입 vitrification (NIV) 절차를 제시. 오염 및 다른 세포, 특히 정 충의 낮은 존재와 상대적으로 높은 양의 초기 생식 세포 생성 cryopreservation 과정 없이 zebrafish 초기 세균 세포 절연에 대 한 신뢰할 수 있는 방법을 설명 합니다. 우리의 지식 최선을이 물고기 gonadal 조직과 zebrafish 생식 세포의 초 급속 한 냉각에 대 한 상세한 시각화 된 프로토콜을 설명 하는 첫 번째 연구 이다. 또한, 방법의 반복성 5 다른 zebrafish 긴장에서 설명 된다: AB 야생 타입, 캐스퍼 (로-/-; nacre-/-), 레오 파 드 (레오t1/t1), 바사 [Tg (vas::eGFP)]와 Wilms 종양 [Tg (wt1b::eGFP 1)] 유전자 변형 라인.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
여기에 설명 된 모든 메서드는 헝가리 동물 복지 법률에 의해 승인 되었습니다.
1. 시 약 준비
- 재고 솔루션
- 그것은 완전히 해소 될 때까지 잘 dH2오 믹스의 1 mL에 트 레 할 로스가 수화물의 0.378 g를 추가 하 여 1 M 트 레 할 로스를 준비 합니다.
- 그것은 완전히 해소 될 때까지 잘 dH2오 믹스의 1 mL에 자당의 0.342 g를 추가 하 여 1 M 자당을 준비 합니다.
- 그것은 완전히 해소 될 때까지 잘 HEPES의 0.238 g dH2오 믹스의 1 mL에 추가 하 여 1 M HEPES를 준비 합니다.
- PBS의 5 mL을 100 mg을 추가 하 여 20 mg/mL 콜라 (290 U/mg)를 준비 합니다. 그것은 디졸브 때까지 철저 하 게 혼합. 0.2 µ m 필터를 통해 살 균 필터입니다. 0.2 mL PCR에 aliquot 50 µ L 튜브와-20 ° c.에 동결
- 15 mg/mL의 트립 신 준비 (~ 10000 U/mg) 5 ml PBS의 75 밀리 그램을 추가 하 여. 그것은 디졸브 때까지 철저 하 게 혼합. 0.2 µ m 필터를 통해 살 균 필터입니다. 0.2 mL PCR에 aliquot 50 µ L 튜브와-20 ° c.에 동결
- 1 mg/mL DNase 준비 나 (~ 3000 U/mg) PBS의 5 mL에 5 mg을 추가 하 여. 그것은 디졸브 때까지 철저 하 게 혼합. 0.2 µ m 필터를 통해 살 균 필터입니다. 0.2 mL PCR에 aliquot 50 µ L 튜브와-20 ° c.에 동결
- PBS의 10 mL을 trypan 파랑의 40 mg을 추가 하 여 0.4 %trypan 블루를 준비 합니다. 0.2 µ m 필터를 통해 살 균 필터입니다. 1.5 mL 튜브에 aliquot 1 mL입니다.
- 200 mg/L MS 준비-222 (Tricaine 메탄 된) 그것은 완전히 해소 될 때까지 잘 dH2오 믹스의 1 L에 MS-222의 200 밀리 그램을 추가 하 여. 또한, MS-222 솔루션 7.0의 중립 pH에 탄산을 버퍼링 합니다.
- Vitrification 위한 솔루션
- 재래식 솔루션 (ES) 준비: 메탄올 (MeOH; 1.5 M)의 121.5 µ L를 혼합 하 여 ES의 2 개 mL를 준비 프로필 렌 글리콜 (PG; 1.5 M)의 220 µ L FBS (10%), 트 레 할 로스 재고 솔루션 (0.1 m M), HEPES 재고 솔루션 (25mm) 50 µ L 2로 L-15의 1208.5 µ L의 200 µ L의 200 µ L mL 튜브입니다.
- Vitrification 솔루션 (VS)를 준비: PG (M 3), 디 메 틸 sulfoxide의 426 µ L의 439 µ L를 혼합 하 여 대의 2 개 mL를 준비 (나2그래서; 3 M), 200 µ L FBS (10%), 트 레 할 로스 재고 솔루션 (0.1 m M), HEPES의 50 µ L의 200 µ L의 재고 솔루션 (25 밀리미터) 및에 L-15의 685 µ L를 2 mL 튜브입니다.
- 온난화에 대 한 솔루션
- 지구 온난화 솔루션 1 (WS1) 준비: FBS (10%), 자당 재고 솔루션 (3 M)의 450 µ L의 150 µ L를 혼합 하 여 2 mL 튜브에 WS1의 1.5 mL를 준비 및 L-15의 900 µ L.
- 지구 온난화 솔루션 2 (WS2) 준비: FBS (10%), 자당 재고 솔루션 (1 M)의 150 µ L의 150 µ L를 혼합 하 여 2 mL 튜브에서 1.5 mL WS2의 준비 및 L-15의 1200 µ L.
- 지구 온난화 솔루션 3 (WS3) 준비: WS2 2 mL 튜브에서 1.5 mL 혼합 150 µ L FBS (10%)에 의해 준비 및 L-15의 1350 µ L.
- 소화 솔루션 준비: 각 샘플 콜라 재고 솔루션 (2 mg/mL)의 50 µ L, trypsin 재고 솔루션 (1.5 mg/mL)의 50 µ L를 혼합 하 여 소화 솔루션의 500 µ L를 준비, 대 한 DNase의 10 µ L I (20 µ g/mL) 및 2 ml에서 L-15의 390 µ L 튜브.
- 해 부 도구 얻기:가 위, microscissors, 핀셋, 곡선된 핀셋, 그리고 침술 바늘.
2. 고환 컬렉션
- 200 mg/L와 MS를 포함 하는 접시에 그것을 배치 하 여 물고기를 안락사-222 (pH = 7). 해 부와 함께 계속 하기 전에 아가미 이동 중지 하 고 저 산소 증에 의해 죽음을 보장 하기 위해 그 순간부터 그 이상 10 분 통과 있는지 확인 합니다.
- 종이 타월에 아 티 하 여 물고기를 말리 고 해 매트에 등 쪽의 측면에 배치.
- 첫째로 쉽게 해 부에 대 한 골반과 가슴 지 느 러 미를 잘라.
- 수평으로 가슴 지 느 러 미 사이의 물고기의 뱃속에는 피부를 싹 둑 하 고 항문 지 느 러 미까지 피부와 뱃속을 따라 기본 근육을 잘라.
- 물고기의 몸에 구멍을 열고 바늘으로 해 부 매트에 왼쪽 및 오른쪽 몸 벽을 고정 합니다.
참고: Testes 수영 방광 (그림 1)의 양쪽에 위장 기관 위에 있습니다.
- 오염을 방지 하기 위해, 할 하지 꺼내 위장 기관, 하지만 부드럽게 한쪽에 밀어와 반대 측에서는 고환 제거. Testes 체 벽에 연결 된 그래서 신중 하 게 그들을 제거 하 고 microscissors에 의해 연결 복을 잘라.
- 또한, 오염 방지 하기 위하여 첫째로 소독 testes 2 s, 그리고 다음 장소에 대 한 70% 에탄올에 넣어 얼음에 96 잘 접시에 L-15에 그들.
참고: 필요한 경우 지방 조직에서 크고 깨끗 한 testes 혈액 혈관을 정확 하 게는 stereomicroscope에서
3. 고환 조직 울트라-빠른 냉각
- 마크 바늘 샘플에 따라 적절 한 레이블 입력 하 고 평형 (ES)와 vitrification 솔루션 (VS) 준비.
- 살 균 침술 바늘에 잘 더 큰 접시 또는 접시와 핀 2 ~ 3 testes (이상의 바늘의 크기에 따라) testes를 전송.
- 첫째 곡선된 핀셋 위에 고환 위치. 고환 가운데 바늘의 포인트를 놓고 조심 스럽게는 핀셋으로는 고환 위쪽으로 당겨.
- 고환, puncturing 후 부드럽게 당겨 위쪽으로 바늘의 위쪽. Testes 서로에서 분리 되어 그리고 그들은 하지 떨어지고는 또는 아래로 슬라이딩 다는 것을 확인 하십시오.
- 장소 2 mL 튜브에 고정 된 고환과 바늘 가득 L-15 vitrification까지 (25 ˚C;에서 저장 시간 초과 하지 않아야 합니다 1 시간).
주: 바늘에 고환을 고정 빨리 밖으로 건조에서 testes을 방지 하기 위해 수행 한다.
- 재래식 솔루션으로 고환과 바늘을 전송 하 고 25˚C에서 5 분 동안 품 어.
- Vitrification 솔루션으로 바늘을 전송 하 고 30 품 어 25˚C에서 s.
- Vitrification 솔루션에서 바늘을 제거, 신속 하 고 부드럽게 살 균 종이 타월에 의해 조직에서 나머지 솔루션을 흡수. 주의 사용 하 여 종이 타월에 집착 하거나 떨어지 testes를 피하기 위해.
- 신속 하 게 스티로폼 상자에 배치 하는 액체 질소에 바늘을 놓습니다.
참고: 조직의 액체 질소 증기에 노출에 신속 하 게이 단계를 수행 액체 질소의 낮은 볼륨을 사용 하 여 샘플의 교차 오염을 방지 하기 위해. - 5-10 분에 대 한 닫힌된 스티로폼 상자에 액체 질소에 바늘을 두십시오.
- 쿨 열된 4.5 mL cryotube와 같은 상자에서 그것의 모자.
- 5-10 분 후 액체 질소의 표면 아래에 별도 cryotube에 각 바늘을 전송 하 고는 cryotube를 닫습니다.
주의: 항상 때 보호복 (절연된 장갑) 등을 사용 노출 심한 동상으로 이어질 수 있습니다 액체 질소와 협력. - Cryotube 금속 지팡이에 놓고 최대한 빨리 cryobank 용기에 배치. 샘플 용기 저장에서 저장 dewar 추가 사용까지.
4. 지구 온난화 절차
- 별도로 각 바늘을 따뜻한. 25 ° c.에 모든 지구 온난화 솔루션 이어야 한다
- 금속 지팡이에서 cryotube를 분리 하 고 스티로폼 상자에 저장 된 액체 질소로 급락.
- 액체 질소 증기 (집게를 사용 하 여)에 cryotube을 열고 액체 질소에 바늘을 해제 합니다.
- 첫 번째 지구 온난화 솔루션으로 매우 빠르게 바늘을 전송 하 고 (25 ° C)에서 1 분 동안 품 어. 신속 하 게 전송 하는 동안 공기에 그것의 온난화 방지 하기 위해 바늘을 전송 해야 합니다.
- 두 번째 지구 온난화 솔루션으로 바늘을 전송 하 고 (25 ° C)에서 3 분 동안 품 어.
- 3 지구 온난화 솔루션으로 바늘을 전송 하 고 (25 ° C)에서 5 분 동안 품 어.
- 곡선된 핀셋으로 그들을 아래쪽으로 밀어 바늘에서 testes를 놓습니다. 별도 우물 (96 잘 접시)에 개별적으로 각 따뜻하게 고환 L-15 10% 보충의 250 µ L로 가득 장소 FBS. 우물 샘플에 따르면 개는 다는 것을 확인 하십시오. 모든 샘플은 따뜻하게 될 때까지 얼음에 잘 접시까지 추가 작업을 계속.
5. 조직 소화
- 각 샘플에 별도 2 mL 튜브 분리 솔루션의 500 µ L를 준비 합니다. 이 샘플의 코드에 따라 튜브 라벨. 실 온에서 5 분 동안 준비 된 분리 솔루션을 품 어.
- 따뜻하게 조직 소화 솔루션에 추가 하 고 작은 위 적어도 30 움직임에 의해 그것을 작은 조각으로 잘라.
- 25 ˚C에서 90 분 떨고 접시에 잘라 조직 품 어.
- FBS의 L-15 및 100 µ L의 400 µ L을 추가 하 여 소화 프로세스를 중지 (10% FBS v/v). 짧게 솔루션을 동요 하 고 실 온에서 1 분 동안 품 어.
- 1.5 mL 튜브에 50 µ m 필터를 통해 얻은 솔루션을 필터링 합니다. 튜브를 따라 레이블을 지정 합니다.
- 25 ˚C에서 10 분 동안 200 × g에서 필터링된 솔루션 원심
- 조심 스럽게 제거는 상쾌한 고 L15 10% 보충의 20 µ L에서 펠 릿 resuspend FBS. 펠 릿은 완전히 용 해 될 때까지 수동으로 튜브를 흔들. 추가 사용까지 얼음에 또는 4 ˚C에서 셀 정지를 유지.
6. 생존 능력 평가 셀 계산
- 세포 현 탁 액 및 레이블이 표시 된 0.2 mL PCR 튜브에 0.4 %trypan 블루 솔루션의 5 µ L의 혼합 5 µ L. 다른 볼륨을 사용 하는 경우 1:1 남아의 희석 비율.
- 실 온 (25 ° C)에서 1 ~ 3 분이 서 스 펜이 션을 품 어.
- 현미경 hemocytometer에 각 샘플의 생존 능력을 확인 합니다.
- 라이브 셀 (trypan 블루 흠 없는) 15 필드 수를 계산 합니다. 세포 현 탁 액의 20 µ m에 있는 셀의 총 수를 계산 합니다. 현 탁 액은 지금 모든 다운스트림 응용 프로그램에 대 한 준비.
참고: 큰 신체 크기와 다른 종족에 대 한 절차를 최적화 하는 때 동등한 무게의 고환 조각을 사용 합니다. 모든 실험적인 그룹에 대 한 한 개인에서 testes를 사용 하 여 결과에 개별 가변성을 피하기 위하여. Zebrafish, 경우 우리 이용 했다는 사실에 왼쪽 및 오른쪽 고환 생식 세포13 의 동일한 (또는 매우 유사한) 번호를 포함 해야 합니다 (대표 결과 참조). 왼쪽된 고환은 오른쪽 고환 vitrified/예 열 동안 제어로 유지 되었다. 생존 비율 계산 했다 신선한 고환에서 격리 하는 셀의 수에 비해 vitrified 따뜻하게 고환에서 격리 하는 셀의 수.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
평균적으로, 초기 단계 세균 세포는 하나의 신선한 zebrafish 고환에서 격리 수 물고기의 크기에 따라 40, 000와 200000 셀 사이의 다양 합니다. 모든 5 종자에 신선한 zebrafish testes 소화 때 초기 생식 세포만 셀 셀 정지 (그림 2)에 아니었다. 초기 단계 세균 세포 옆에 수많은 정 충도 발견 됐다. 다른 한편으로, cryopreserved testes의 소화 후 훨씬 적은 정 충 했다. 정 충이 매우 빠른 냉각 프로토콜 생존 하지 않습니다 그리고 초기 단계 세균 세포의 많은 청소기 정지 이며 소화 과정 제거 그들은 가장 가능성이 있다는 표시.
3 AB zebrafish 남성 (일방통행 ANOVA의 신선한 testes를 소화 하 여 한 개인의 왼쪽 및 오른쪽 고환 (1 ± 0.5 × 105 vs 1.1 ± 0.7 × 105) 사이 초기 단계 세균 세포의 수에 큰 차이가 있었다 ; F (1, 4) = 0.04, p = 0.85). 이 연구에 사용 된 모든 제 브라 라인에서 현재 울트라-빠른 냉각 프로토콜 나왔고 평균 생존 율 보다 높은 50% (표 1).
| AB 야생 타입 | 캐스퍼 | 레오 파 드 | 바사 유전자 변형 | Wilms 종양 유전자 변형 | ||
| 라이브 셀 (× 104)의 수 | 신선한 고환 | 14.5 ± 3.9 | 9.5 ± 2.3 | 12.7 ± 2.4 | 14.5 ± 5.6 | 4.8 ± 1.8 |
| Vitrified 고환 | 8.7 ± 2.8 | 7.2 ± 3.0 | 8.8 ± 1.7 | 7.6 ± 3.7 | 2.4 ± 0.7 | |
| 생존 (%) | 58 ± 9 | 72 ± 13 | 69 ± 1 | 50 ± 6 | 53 ± 13 |
표 1. 라이브 셀 및 신선한 또는 vitrified 따뜻하게 zebrafish 고환에서 얻은 생존 비율 (평균 ± SD)의 수입니다. 5 테스트 zebrafish 라인에 대 한 결과 제공: AB 야생 타입, 캐스퍼 (로-/-; nacre-/-), 레오 파 드 (레오t1/t1), 바사 [Tg (vas::eGFP)]와 Wilms 종양 [Tg (wt1b::eGFP 1)] 유전자 변형 라인.
그림 1. 다양 한 해 부 구조의 위치를 보여주는 해 부 성인 제 브라. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
그림 2. 5 테스트 zebrafish 라인 (AB 야생 타입, 캐스퍼 (로-/-;에서 신선 하 고 vitrified 따뜻하게 zebrafish 고환 조직에서 준비 하는 정지 세포 nacre-/-), 레오 파 드 (레오t1/t1), 바사 [Tg (vas::eGFP)]와 Wilms 종양 [Tg (wt1b::eGFP 1)] 유전자 변형 라인) 단계 대조 현미경 검사 법으로 몇 군데. 눈금 막대: 40 µ m. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
이 연구의 주요 목적은 바늘에 맞게 몰입 울트라-빠른 냉각 절차 조류 및 포유류 종10,11,12 물고기 고환 (zebrafish 모델의 cryopreservation를 개발 했다 유기 체)입니다. Zebrafish 유전 자원의 cryopreservation에 관한 이전 연구의 대부분 zebrafish 정자2,,34의 cryopreservation에 주로 집중 되었다. 그러나, 성숙한 oocytes에서 배아의 cryopreservation 프로토콜 개발 하지 않은, 아직 일부 최근 연구 초기 단계 oocytes의 그 cryopreservation 입증 하더라도 그럴듯한14,15. 이 연구에서 우리는 이식 후 그들은 둘 다 남성과 여성 gametes5로 성숙 할 수 있기 때문에 특히 귀중 한 유전 자원의 스토리지에 대 한 새로운 가능성을 제공 하는 제 브라 spermatogonia의 성공적인 cryopreservation 증명 .
우리의 지식 최선을,이 첫 번째 연구 다루는 이니라 메서드에서 zebrafish 조직의 매우 빠른 냉각 이다. 비슷한 연구 0.25 mL 플라스틱 빨 대16 에 폐쇄 금속 컨테이너14zebrafish 난소의 vitrification zebrafish testes의 vitrification를 포함. 두 개의 언급 한 컨테이너에 비해 NIV의 주요 이점은 cryoprotectants 따라서 냉각 속도10을 극대화, 그들에 게 연결 되 고 최소 볼륨으로 액체 질소에 testes의 직접 노출 이다. 냉각 속도 증가 cryoprotectants, 그로 인하여 그들의 독성을 감소 시키기의 필요한 농도 감소 시킨다. 또한, 모든 조직 조각 노출 수 cryoprotectants 및 액체 질소에 동기적으로. 그러나, 액체 질소에 직접 노출 교차 오염에 관해서는 한 단점이 있을 수 있습니다. 그것은 액체 질소에 존재 하는 세균 이나 바이러스를 직접 조직 노출 오염으로 이어질 수 있습니다. 따라서, 우리가 이니라 할 때 액체 질소를 다시 사용 자제 및 사용된 액체 질소 냉각 후 삭제 하도록 제안. 그러나이 점에서 이점을 제공 금속 컨테이너를 제안14, 그들은 사용자 정의 만든 그리고 모든 실험실에 쉽게 액세스할 수 있습니다.
동결 느린 속도로 매우 빠른 냉각을 비교할 때 매우 빠른 냉각의 중요 한 장점 중 하나는 소화 후 정 충의 부재를 이다. 유사한 프로토콜 초기 생식 세포와 정 충17 는 cryopreserved의 소화 후 높은 정 충 숫자 결과의 비교 가능성을 얻을 일부 잉어 물고기 종에 느린 속도 동결 방법 시연 조직입니다. Zebrafish (현재 연구), 일반적인 잉어와 금붕어 (게시 되지 않은 결과)에 우리의 결과 나타냅니다 따뜻하게 조직의 소화 후 거의 정 충에 있다 그리고 그들은 할 하지이 절차 생존을 얻을 소화는 하류 간소화 응용 프로그램 없음 추가 농축 절차는 필요 하기 때문입니다.
이 프로토콜 내에서 몇 가지 중요 한 단계가 있습니다. 첫째는 오염을 방지 하기 위해 어떤 격리 과정 이후 취득 하는 셀의 수에 있는 감소 발생할 수 있습니다 다운스트림 응용 프로그램을 방해할 수 있습니다. 중요 한 단계 중 하나는 내장 손상 하에서 세균 오염 수 있습니다 발생 하는 고환의 절단 (따라서 그것이 가장 하지 손상 또는 완전히 제거 하는 창 자) 또는 피부 같은 해 부 도구를 사용 하 여 피부를 절단 하 고 제거 하는 경우는 고환입니다. 둘째, testes가 또는 아래로 슬라이드 수 있으므로 testes 침술 바늘을 고정 하는 때는 주의. 현재, 우리는 testes vitrification 절차 (액체 질소 온도) 동안 미끄러지기에서 방지 하기 위해 다른 방법을 테스트 합니다. 셋째,는 cryoprotectants에 노출의 기간에 주의. 너무 오래 노출의 testes (셀)에 대 한 (특히 vitrification 솔루션)에 높은 cryoprotectant 농도 cryoprotectant 독성 때문에 세포 죽음 발생할 수 있습니다. 또한, 액체 질소;으로 바늘을 급락 때 돌 냉각 과정에 영향을 미칠 수 있으며 액체 질소 증기에 노출 피하기 위하여 바늘을 신속 하 게 급락 이후 대의 과잉을 닦아내십시오. 마지막으로, testes에서에서 전송 액체 질소 온난화 미디어로 신속 하 게 전송 하는 동안 공중에서 조기 온난화 방지 하기 위해.
현재 신문에서 우리는 사용 하 여 MeOH, PG와 나2그래서 cryoprotectants permeating 5 zebrafish 긴장에서 testes의 cryopreservation에 대 한 절차를 제시. 메서드는 50%의 세포 생존 능력으로 모든 테스트 zebrafish 긴장에 대 한 신뢰할 수 있는 결과 생성합니다. 그것은 또한 다른 종족에 대 한 수정이 메서드를 사용 하 여 수 있습니다. 첫째, 각 cryopreservation 프로토콜은 특정, 종 및 다른 cryoprotectants 항복 다른 종에 다른 효율성 (예: 에틸렌 글리콜 나왔고 acipenserids18 날 동안에 높은 생존2그래서 나왔고 salmonids19 와 cyprinids17에서 높은 생존). 또한 주의 뿐만 아니라 사용 하는 농도에 주어져야 한다. 그러나 현재 연구와 브라운 송어 Salmo trutta 난소15 에 대 한 연구는 최상의 결과 얻을 수 있습니다 두 개의 cryoprotectants의 동일한 농도 사용 하 여이 다른 종에서 다를 수 있습니다 보여 줍니다. 마지막으로, zebrafish 고환은 매우 작고, 그리고 그것은 심지어 한 바늘에 여러 testes를 핀 수 있습니다. 더 큰 고환 가진 종으로 작업할 때 사용 되는 고환의 크기는 매우 중요 한 요소입니다. 계정 cryoprotectant 독성 및 효율성에 더 큰 조직 조각에 대 한 노출 시간을 증가 하 고 좋습니다.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
저자는 공개 없다.
Acknowledgments
이 연구는 국가 연구, 개발 및 혁신 사무실의 헝가리 (그랜트는 ÁH를 116912), 비용 사무실에 의해 지원 되었다 (음식과 농업 비용 액션 FA1205: AQUAGAMETE), Stipendium Hungaricum 장학금 프로그램 (ZM 부여)와 새 헝가리 국가 우수 Predoctoral 친교 (EK 부여).
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Leibovitz media (L-15) | Sigma-Aldrich | L1518 | Supplemented with L-glutamine |
| Fetal bovine serum (FBS) | Sigma-Aldrich | F9665 | |
| Tricaine methanesulfonate (MS-222) | Sigma-Aldrich | E10521 | |
| HEPES | Sigma-Aldrich | H3375 | |
| Sucrose | Acros Organics | 57-50-1 | |
| Trehalose | Acros Organics | 99-20-7 | Dihydrate |
| Methanol | Reanal | 20740-0-08-65 | |
| Propylene glycol | Reanal | 08860-1-08-65 | |
| Dimethyl sulfoxide | Reanal | 00190-1-01-65 | |
| Collagenase | Gibco | 9001-12-1 | |
| Trypsin | Sigma-Aldrich | T8003 | |
| DNase I | Panreac AppliChem | A3778 | |
| Trypan blue | Sigma-Aldrich | T6146 | |
| Phospate buffered saline (PBS) | Sigma-Aldrich | P4417 | Tablets for preparation of 200 ml PBS solution |
References
- Mazur, P., Leibo, S. P., Seidel, G. R. J. Cryopreservation of the germplasm of animals used in biological and medical research: Importance, impact, status, and future directions. Biol. Reprod. 78 (1), 2-12 (2008).
- Carmichael, C., Westerfield, M., Varga, Z. M. Cryopreservation and In Vitro Fertilization at the Zebrafish International Resource Center. Methods Mol. Biol. 546, 45-65 (2009).
- Yang, H., Carmichael, C., Varga, Z. M., Tiersch, T. R. Development of a simplified and standardized protocol with potential for high-throughput for sperm cryopreservation in zebrafish Danio rerio. Theriogenology. 68 (2), 128-136 (2007).
- Morris, J. P. IV, Berghmans, S., Zahrieh, D., Neuberg, D. S., Kanki, J. P., Look, A. T. Zebrafish sperm cryopreservation with N,N-dimethylacetamide. Biotechniques. 35 (5), 956-968 (2003).
- Yoshizaki, G., et al. Spermatogonial transplantation in fish: A novel method for the preservation of genetic resources. Comp. Biochem. Physiol. Part D: Genomics Proteomics. 6 (1), 55-61 (2011).
- Gao, D., Critser, J. K.
- Asturiano, J. F., Cabrita, E., Horváth, Á Progress, challenges and perspectives on fish gamete cryopreservation: A mini-review. Gen. Comp. Endocrinol. 245, 69-76 (2017).
- Kása, E., et al. Development of sperm vitrification protocols for freshwater fish (Eurasian perch, Perca fluviatilis) and marine fish (European eel, Anguilla anguilla). Gen. Comp. Endocrinol. 245, 102-107 (2017).
- Cuevas-Uribe, R., Leibo, S. P., Daly, J., Tiersch, T. R. Production of channel catfish with sperm cryopreserved by rapid non-equilibrium cooling. Cryobiology. 63 (3), 186-197 (2011).
- Wang, Y., Xiao, Z., Li, L., Fan, W., Li, S. W. Novel needle immersed vitrification: A practical and convenient method with potential advantages in mouse and human ovarian tissue cryopreservation. Hum. Reprod. 23 (10), 2256-2265 (2008).
- Liu, J., Cheng, K. M., Silversides, F. G. Production of Live Offspring from Testicular Tissue Cryopreserved by Vitrification Procedures in Japanese Quail (Coturnix japonica). Biol. Reprod. 88 (5), 124 (2013).
- Liu, J., Cheng, K. M., Silversides, F. G. Novel needle-in-straw vitrification can effectively preserve the follicle morphology, viability, and vascularization of ovarian tissue in Japanese quail (Coturnix japonica). Anim. Reprod. Sci. 134 (3-4), 197-202 (2012).
- Lee, S., Yoshizaki, G. Successful cryopreservation of spermatogonia in critically endangered Manchurian trout (Brachymystax lenok). Cryobiology. 72 (2), 165-168 (2016).
- Marques, L. S., et al. Viability of zebrafish (Danio rerio) ovarian follicles after vitrification in a metal container. Cryobiology. 71 (3), 367-373 (2015).
- Lujić, J., et al. First successful vitrification of salmonid ovarian tissue. Cryobiology. 76, 154-157 (2017).
- Bono-Mestre, C., Cardona-Costa, J., García-Ximénez, F. Effects on cell viability of three zebrafish testicular cell or tissue cryopreservation methods. CryoLetters. 30 (2), 148-152 (2009).
- Marinović, Z., et al. Cryosurvival of isolated testicular cells and testicular tissue of tench Tinca tinca and goldfish Carassius auratus following slow-rate freezing. Gen. Comp. Endocrinol. 245, 77-83 (2017).
- Pšenička, M., Saito, T., Rodina, M., Dzyuba, B. Cryopreservation of early stage Siberian sturgeon Acipenser baerii germ cells, comparison of whole tissue and dissociated cells. Cryobiology. 72, 119-122 (2016).
- Lee, S., Iwasaki, Y., Shikina, S., Yoshizaki, G. Generation of functional eggs and sperm from cryopreserved whole testes. Proc. Nati. Acad. Sci. USA. 110 (5), 1640-1645 (2013).
