Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Medicine

שלבי הכנה מדידה של תגובתיות ב העכבר רבים ברשתית Vivo לשעבר

Published: May 8, 2018 doi: 10.3791/56199

Summary

מחלות רבות סכנת חזון עינית משויכות לקוי microvessels ברשתית. לכן, המדידה של תגובות arteriole ברשתית הוא חשוב לחקור את המנגנונים הקשורים pathophysiological המשמש כבסיס. מאמר זה מתאר פרוטוקול מפורט עבור בידוד arteriole רשתית העכבר והכנות כדי להעריך את ההשפעות של חומרים vasoactive על קוטר כלי הדם.

Abstract

. אי ספיקת שינויים זלוף ברשתית נורמלי הם בין הגורמים העיקריים בפתוגנזה של סכנת הראייה עינית מחלות שונות, כגון רטינופתיה סוכרתית, רטינופתיה יתר לחץ דם, ואולי גלאוקומה. לכן, ההכנות microvascular ברשתית הם כלים מרכזי עבור מחקרים פיזיולוגיים תרופתי על המנגנונים הקשורים pathophysiological כבסיס לעיצוב טיפולים עבור המחלות. למרות השימוש בעכבר מודלים במחקר אופטלמולוגיות רחב, מחקרים על תגובתיות כלי הדם ברשתית נדירים של מין זה. הסיבה הראשית לסתירה הזו היא ההליכים בידוד מאתגר בשל גודלו הקטן של אלו כלי דם ברשתית, אשר ~ ≤ 30 מיקרומטר בקוטר luminal. כדי לעקוף את הבעיה של בידוד ישיר של אלה microvessels ברשתית ללימודי פונקציונלי, הקמנו שיטת בידוד והכנות המאפשרת שמחוץ מחקרים של vasoactivity רשתית העכבר בתנאים ליד-פיזיולוגיים . למרות ההכנות ניסיוני נוכח באופן ספציפי יפנה אל רבים רשתית העכבר, מתודולוגיה זו יכול בקלות להיות מועסק כדי microvessels של חולדות.

Introduction

הפרעות ברשתית זלוף היו מעורבים בפתוגנזה של מחלות עינית שונות, כגון רטינופתיה סוכרתית, יתר לחץ דם רטינופתיה גלאוקומה1,2,3. לכן, מחקרים שמטרתם מדידה תגובתיות כלי הדם ברשתית חשוב להבין הפתופיזיולוגיה של מחלות אלו, לפתח טיפול חדש מתקרב.

בשל האפשרות של מניפולציה ג'ין הגנום מאתר, העכבר הפך מודל בעלי חיים בשימוש נרחב למחקרים של מערכת הלב וכלי דם4. עם זאת, בשל גודלו הקטן של כלי הדם ברשתית (≤ 30 מיקרומטר), מדידה של תגובתיות כלי הדם ברשתית העכבר הוא מאתגר. לדוגמה, טכניקות stereomicroscopic ויוו למדידה בו רזולוציה אופטית שלהם מוגבלים, לכן אפשר רק בדיוק לזהות שינויים בזרימת קוטר או דם בדם קטן של פחות מקוטר 30 מיקרומטר ≤ כאשר היא מצוידת נוספים התקנים מתוחכמים, כגון מיקרוסקופ קונפוקלי באמצעות צבעי פלורסנט או אופטיקה אדפטיבית סריקה Ophthalmoscope אור5,6. יתר על כן, הפרשנות של ויוו מדידות שמטרתם זיהוי מקומי איתות מנגנונים בכלי הדם ברשתית יכולה להיות מבולבל על ידי הרדמה, משתנה לחץ דם סיסטמי, ההשפעה של כלי הדם retrobulbar.

לכן, פיתחנו שיטה למדידת תגובות של כלי הדם ברשתית עכבר עם רזולוציה אופטית גבוהה ex-vivo. הטכניקה שהוצגו במסמך זה מאפשר הדמיה של רבים ברשתית ויה ששודרו מיקרוסקופ אור. שיטה זו, אשר יכול לשמש גם בחולדות, מספקת גישה היתרונות של גן מיקוד הטכנולוגיה במחקר וסקולרית עינית.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

ההליכים ניסיוני של מחקר זה אושרו על ידי החיה טיפול הוועדה של ריינלנד-פאלץ, גרמניה. טיפול בבעלי חיים תאמו המוסדיים הנחיות ואת האגודה למחקר בהצהרת חזון, רפואת עיניים (ארוו) לשימוש בבעלי אופטלמולוגיות ומחקר חזון. חיות טופלו בהתאם להנחיית האיחוד האירופי 2010/63/האיחוד האירופי לניסויים בבעלי חיים. זכר C57BL/6J עכברים (מעבדה ג'קסון, בר הרבור, לי, ארה ב) בגילאי 3-4 חודשים שימשו את הניסויים. בעלי חיים שוכנו בתנאים סטנדרטיים (טמפרטורה 23 ± 2 ° C, לחות טווח 55 ± 10% ו- 12 h מחזורים/כהה), הייתה גישה העכבר הסטנדרטי צ'או ומים ad libitum.

1. בידוד של רשתית העכבר

  1. למקם את לנתיחה על השולחן הכנה ולבדוק אם כל המכשירים הם להשלים כדי לאפשר הכנה מהירה.
  2. להקריב את העכבר באמצעות אינהלציה2 CO.
  3. לערוף את העכבר עם מספריים פלדה, לחתוך את הגולגולת sagitally לשני חצאים באמצעות אותו זוג מספריים ולהסיר את העור ואת המוח באמצעות העין מספריים (איור 1).
  4. לחתוך עצם הגולגולת להשאיר רק את העצם מסלולית באמצעות מספריים העין.
  5. להעביר את מסלולו לתוך תבשיל לנתיחה המכיל מאגר קרבס-Henseleit קר כקרח.
  6. לשמור את המנה לנתיחה על קרח או לשנות את מאגר כל 10 דקות.
  7. לחתוך את העצם מסלולית באמצעות מספריים העין ולהסיר בעדינות את הגלובוס עין יחד עם הרקמה מסלולית באמצעות סוג 4 דיוק פינצטה ומספריים האביב סטודנט Vannas (איור 2).
  8. הסר בעדינות את בלוטת Harderian, רקמת השרירים extraocular באמצעות סוג 5 דיוק פינצטה ומספריים capsulotomy Vannas, דואג שלא יגרמו נזק הסניף הראשי של העורק אופטלמולוגיות.
  9. מאתרים ומפסיקים מסלולית ענפי עורק אופטלמולוגיות ובסופו של דבר הסוף הפרוקסימלית של הסניף הראשי של העורק אופטלמולוגיות בעזרת תפרים ניילון 10-0 (איור 3).
  10. העברת הגלובוס העין לתוך צלחת פטרי המכיל אתנול 70% עבור שימוש s 10 מסוג 4 דיוק פינצטה. מקום העולם העין בחזרה לתוך המנה לנתיחה והחלף את המאגר פתרון קרבס טריים. הקרנית יופיעו לבנבן לאחר חשיפה אתנול.
  11. לנקב את הקרנית היקפי עם מחט מד 30 ומנתחים את הקרנית באמצעות מספריים capsulotomy Vannas. בעדינות לחתוך את רקמת הקשתית, מקום אחד בחוד של המספריים capsulotomy Vannas בין הרשתית דמית העין ולנתק את דמית העין ואת sclera. להשאיר קצת הרקמה scleral סביב עצב הראייה (איור 4).

2. הרכבה הרשתית בבית הבליעה זלוף

הערה: תא זלוף המשמש עבור ניסויים arteriole ברשתית הוא תוצרת בית. זה מורכב של מאגר שקוף עם צינור-בו יצוא (איור 5). קצה אחד של צינור סיליקון מודבק לתחתית התא עם דבק histoacryl ואת הקצה השני מחובר של צימוד-כיוונית. התחבר המזרק המכיל מאגר קרבס טריים צימוד-כיוונית, ממלאים את הצינור עם מאגר.

  1. קח micropipette זכוכית עם בעל מחט ודחף לתוך בסוף הצינור בתחתית תא זלוף. אז שבור את הקצה של micropipette במספריים type 4 כדי לקבל טיפ של 100 מיקרומטר קוטר.
  2. פוקוס על קצה micropipette, לשטוף את זה דרך המזרק מחובר הצינור. תשמרי נימי הוא לא occluded על ידי פסולת. במקרה של סגר, להסיר אותו, לשטוף את הצנרור ולהוסיף עוד micropipette.
  3. למלא את התא זלוף מאגר קרבס קר ולשים את התא תחת מיקרוסקופ סטריאו.
  4. המקום פלטפורמה פלסטיק שקוף אל החדר זלוף. פלטפורמה זו יש ההזחה של 1.8 מ"מ רוחב עצב הראייה, העורק אופטלמולוגית והיא מושם על שני חוטי פלדה של 1.6 מ"מ קוטר. אז, במקום טבעת מפלדת של 2.8 מ"מ קוטר פנימי ו- 4.0 מ"מ הקוטר החיצוני על הפלטפורמה.
  5. העברה הרשתית עם עצב הראייה, עורק אופטלמולוגיות המצורפת מן החדר ניתוח אל החדר זלוף בזהירות מרבית, באמצעות כף. השלב זה חשוב למנוע את הפוטנציאל מתיחה של הרקמות כפי שהוא יכול להיות מזיק הניסוי.
  6. לחתוך את החלק sutured של סוף הפרוקסימלית של העורק אופטלמולוגיות להציב שתי לולאות preformed של 10-0 תפר ניילון על גבי micropipette, נקרר את העורק אופטלמולוגיות עם micropipette. לקשור את העורק micropipette (איור 6) ומניחים על הרשתית על הפלטפורמה שקוף באמצעות פיין-נקודת-פינצטה.
  7. בעדינות כשהבנו את capsula עדשה קדמית עם שני הצבע בסדר פינצטה להוציא את העדשה, לחתוך את capsula העדשה כל שימוש microscissors.
  8. לאחר מכן, להכין ארבעה חתכים רדיאליים לתוך הרשתית חצי המרחק pars plana עצב הראייה ולמקם טבעת מפלדת על הרשתית כדי לתקן את זה לעומק. הרשתית עכשיו הוא מוכן לניסוי (איור 7).

3. הכנה של רבים ברשתית לניסוי.

  1. מקם את התא זלוף תחת מיקרוסקופ אור. המטרה היא עדשה המטרה 100 X טבילה במים.
  2. לחבר את שני tubings עבור - ו -out - flow משאבה pericyclic, הפיצו את התא באמצעות מאגר קרבס חמצן ב- 95% O2 ו מוגז עם 5% CO2 ב 37 º C. השתמש בקצב הזרימה בין 100 ל 120 מ לדקה.
  3. להתחבר ברכבת התחתית סיליקון, אשר מחובר של micropipette, מאגר סיליקון צינור דרך צימוד-כיוונית. לאחר מכן, מילוי המאגר עם מאגר קרבס לגובה המתאים ל-50 מ מ כספית אבל אל תפתח את צימוד-כיוונית עדיין.
  4. להסתכל דרך המטרות של מיקרוסקופ, להתמקד על פני הרשתית. לחפש כלי דם או כדוריות דם אדומות. זה אפשרי כי כלי הדם לחלוטין מכווצים, אז לפעמים רק שקצת כדוריות דם אדומות גלויים.
  5. כאשר כלי דם, להתמקד בו ופתח את צימוד-כיוונית. הקוטר של הכלי צריך להגדיל באופן מיידי, כדוריות דם אדומות לזוז גם centrifugally, אם זה arteriole, או centripetally במקרה של venule. רבים קטנים בקוטר בהשוואה venules באותו הסדר.
  6. ברגע נמצא כלי דם עם קיר גלוי. ובכן, זה יכול להיות מועסק לניסויים בעקבות תקופה equilibration של 30 דקות (איור 8). במהלך התקופה equilibration, רבים לפתח הטון מהותי החלשה היחידה וכתוצאה מכך פחות מ-10% של הפחתת קוטר luminal.

4. ביצוע הניסוי

  1. בדיקת הכדאיות של כלי עם thromboxane מימטי 9,11-dideoxy-9α, 11α-methanoepoxy פרוסטגלנדין F(U46619) על-ידי הוספת זה הפתרון אמבט. סוכן זה מכווץ רבים רשתית העכבר על ידי כ-50% מן נח קוטר בריכוזים של ≥ 10-6 מ'.
  2. פעם אחת כלי הקיבול הוא אישר קיימא, לשטוף אגוניסט מהאמבטיה מאת במחזור המשאבה והענק מאגר קרבס טריים לתוך האמבט.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

U-46619 מיוצר תגובות תלויי-ריכוז מצר את כלי הדם של הרשתית רבים עכברים פראי-סוג של רקע C57Bl/6J. ריכוז של 10-6 מ', ירידה בקוטר luminal היה ≈50% מ קוטר מנוחתו. איור 9 א מציג עקומת ריכוז נציג-תגובה של אחד arteriole ברשתית. ב רבים preconstricted עם U46619, ניהול המצטברת של אצטילכולין עורר מגביר ריכוז תלוית בקוטר luminal ל≈25% מ קוטר preconstricted ב- 10-5 מ', מעידה על (אנדותל כלי הדם ללא פגע איור 9B).

Figure 1
איור 1: ניתוח של הגולגולת העכבר. העור על העכבר שראשו נערף ראשו מוסר כדי לחשוף את העיניים ואת חלל מסלולית. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.

Figure 2
איור 2: בידוד של רקמת העין גלוב אנד אורביטל. העצם מסלולית נחתך עם מספריים העין ואת העולם עין יחד עם הרקמות retrobulbar, עצב הראייה היו מבודדים היטב. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.

Figure 3
איור 3: עין גלוב אנד הכנה של העורק אופטלמולוגיות. ברגע מסלולית הרקמות הסובבות היו גזור עם microscissors בסדר, העורק אופטלמולוגיות נחשף בקפידה, ענפים קטנים שלהם מאתרים בתפרים monofilament ניילון 10-0. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.

Figure 4
איור 4: ניתוח של מבנים עינית. כדי להמחיש את הרשתית, sclera ואת uvea היו גזור במספריים capsulotomy Vannas. טישו scleral סביב עצב הראייה נשאר כדי למנוע נזק של העורק אופטלמולוגיות. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.

Figure 5
איור 5: איברים תא מיקרוסקופ וידאו בזמן אמת- החדר היה עשוי הביתה. היא כללה צלחת פטרי בקוטר 100 מ מ עם בו -out - flow שפופרת. הצינורות היו מודבקים עם דבק histoacryl. מאגר קרבס-Henseleit מבחוץ מחומצן תוססים הופצה על ידי משאבה סחרור דרך הצינורות האלה. קצה אחד של צינור סיליקון היה דבוק לחלק התחתון של החדר ואת הקצה השני מחובר של צימוד-כיוונית. בסוף הצינור, הוכנס micropipette זכוכית עם טיפ של 100 מיקרומטר, אשר שימשה תעלות של העורק אופטלמולוגיות. באמצעות הרכבת התחתית סיליקון, מחזור הדם אופטלמולוגיות היה מווסת על ידי מילוי צינור סיליקון עם מאגר קרבס לרמה המתאימה ל-50 מ מ כספית. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.

Figure 6
איור 6: תעלות של העורק אופטלמולוגיות. העורק אופטלמולוגיות לצינוריות עם זכוכית micropipette, sutured בתפר ניילון 10-0. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.

Figure 7
איור 7: תעלות של העורק אופטלמולוגיות. לאחר הצבת הרשתית על הפלטפורמה שקוף, העדשה עם שקית דרכים הוסר, בוצעו ארבעה חתכים רדיאליים לתוך הרשתית, נירוסטה טבעת של 2.8 מ"מ קוטר פנימי ו- 4.0 מ"מ הקוטר החיצוני הושם על הרשתית כדי לתקן את זה ל- b ottom. הרשתית היה מוכן לקבל הניסוי. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.

Figure 8
איור 8: ויזואליזציה של כלי הדם ברשתית. Arteriole ברשתית למופת עם כדוריות דם אדומות בפנים.

Figure 9
איור 9: מחקרים פונקציונלי באמצעות מיקרוסקופ וידאו- ריכוז נציג עקומות תגובת מתוך יחיד arteriole ברשתית. (א) בריכוז-תגובת עקומת עבור מצר את כלי הדם, U46619 (10-9 עד 10-6 מ'), ו (ב) על אנדותל תלוית מרחיב כלי דם, אצטילכולין (10-8 עד 10-5 מ'). אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

המדד של תגובות כלי הדם ברשתית העכבר הוא מאתגר בשל גודלו הקטן של כלי הדם ברשתית. עם הטכניקה שהוצגו, רבים ברשתית הם דמיינו ידי מיקרוסקופ אור המשודרת. זה אפשרי, כי הרשתית מבודד הוא שקוף למחצה. היתרון של השיטה הוא אופטי ברזולוציה גבוהה. הרזולוציה המרחבית מחושב הוא px 11/מיקרומטר. אולם, הפתרון האמיתי למערכת אופטית זו, העושה שימוש באור לבן הוא בין 200 עד 300 ננומטר, כפי שמוסבר על ידי הגבול עקיפה אבה. מאז הסניף הראשון של רבים רשתית העכבר יש של קוטר פנימי של 20-30 מיקרומטר, השינויים בקוטר של כ-1% הם לזיהוי במערכת זו. יש צורך של מכשירים טכניים נוספים או צבעי פלורסנט כפי שדווח במחקרים אחרים כדי להמחיש קטנים רבים ברשתית5,6,7. חיסרון של הטכניקה הוא הזמן הכנה ארוכה, אשר בין 90 עד 120 דקות על ידי חוקרים מיומנים. אם הזמן עולה 180 דקות, הפונקציה אנדותל מתחיל להיות הקלוש.

ישנם מספר שלבים קריטיים עיקריים בטכניקה זו. ראשית, חשוב ביסודיות מאתרים ומפסיקים את כל הענפים עורקים retrobulbar. אם מצדו אינו שלם, רבים ברשתית לא להיות מווסתת עקב דליפה. שנית, טבילת אתנול 10 s לפני פתיחת העולם עין חשוב לנטרל את תגובתיות שריר חלק של העורק אופטלמולוגיות. אנחנו הפגינו בעבר את הטבעית 10 s ב- 70% אתנול מבטל לחלוטין את העורק אופטלמולוגיות שריר חלק8. לעומת זאת, רבים ברשתית סביר להניח להיות מושפעים ישירות אתנול, מאז הם מוגנים ע י הקיר bulbar. אם שלב זה מושמט, קוטר שינויים בעורק אופטלמולוגיות עשויים להשפיע על זלוף של הרשתית. ראוי לציין, תגובתיות של העורק אופטלמולוגיות עשויות להשתנות במידה ניכרת מזו של רבים ברשתית בתגובה באותו אגוניסט9,10. שלישית, להימנע פיתול של העורק אופטלמולוגיות. במיוחד בזמן הרכבה ההכנה רשתית על הפלטפורמה, העורק אופטלמולוגיות ייתכן מתעוותים, וכתוצאה מכך סגר של לומן. בנוסף, בדקו בקפידה קצה נימי זכוכית הוא occluded לא להפעיל לחץ רבים ברשתית. אנו ממליצים שלא לבצע עיקולים ריכוז ברציפות-תגובה יותר משלוש בהכנת ברשתית אותו, כי ראינו כי התגובות אצטילכולין הפך חלשים כאשר חוזרים. את עקומות הריכוז-תגובה במשך יותר משלוש פעמים. עם זאת, ייתכנו הבדלים לגבי הדיר של עקומות הריכוז-תגובה בהתאם הסוכן חלה ו, לכן, צריך להיבדק באופן אינדיבידואלי.

והגשנו בקשה סוכנים תרופתי extraluminally במחקרים שלנו, למרות intraluminal זלוף באמצעות משאבה servo בקרה אפשרי גם. מאז הטכניקה מאפשר למדוד מנגנונים המקומי של תגובתיות כלי הדם ברשתית של חיות מעבדה קטנה כולל עכברים וחולדות, ניתן לגשת היתרונות של טכנולוגיית פילוח הגן באמצעות בעלי חיים מהונדסים בשיטה זו .

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

המחברים יש אין אינטרסים כלכליים מתחרים.

Acknowledgments

עבודה זו נתמכה על ידי מענקים של ארנסט und ברטה Grimmke Stiftung ואת בווריה Ophthalmologische דויטשה (הכלב).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Steel Scissors Carl Roth GmbH 3576.1 1x 140 mm
Eye Scissors Geuder G-19390 1x straight, 10.5 cm
Precision tweezers, straight with fine tips Carl Roth GmbH LH68.1 2x type 4
Precision tweezers, straight with extra fine tips Carl Roth GmbH LH53.1 2x type 5
Vannas capsulotomy scissors Geuder 19760 1x straight, 77 mm
Student Vannas Spring Scissors Fine Science Tools 91501-09 1x curved,
Barraquer Needle Holder Geuder G-17500 1x curved, 120 mm
Needle Becton, Dickinson and Company 305128 1x 30 G
Glass Capillaries (for producing micropipettes) Drummond Scientific Company 9-000-1211 1x (1.2 x 0.8 mm; outer/inner diameter)
Nylon Suture Alcon 198001 1x 10-0
Nunclon cell culture dish Thermo Fisher Scientific 153066 1x 35 mm diameter
Nunclon cell culture dish Thermo Fisher Scientific 172931 1x 100 mm diameter
Discofix C Braun 16500C 10 cm
Histoacryl adhesive B. Braun Surgical, S.A. 1050052
Name Company Catalog Number Comments
Equipment
Pericyclic pump  (CYCLO II) Carl Roth GmbH EP76.1 1x
Vertical Pipette Puller Model 700C David Kopf Instruments 1x
Microscope (Vanox-T AH-2) Olympus 1x
Water immersion objective LUMPlanFL, 1.0 NA Olympus 1x
Digital camera (TK-C1381) JVC 1x
Perfusion chamber self-made 1x
Name Company Catalog Number Comments
Drugs and Solutions
Ethanol Carl Roth GmbH K928.4
Calcium chloride dihydrate (CaCl2) Carl Roth GmbH 5239.1
Kalium chloride (KCl) Carl Roth GmbH 6781.1
Kalium dihydrogen phosphate (KH2PO4) Carl Roth GmbH 3904.2
Magnesium sulphate (MgSO4) Carl Roth GmbH 261.2
Sodium chloride (NaCl) Carl Roth GmbH 9265.2
Sodium hydrogen carbonate (NaHCO3) Carl Roth GmbH 0965.3
α-(D)-(+)- Glucose monohydrate Carl Roth GmbH 6780.1
9,11-dideoxy-9α,11α-methanoepoxy prostaglandin F2α (U-46619) Cayman Chemical 16450
Acetylcholine chloride Sigma-Aldrich A6625-25G

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Toda, N., Nakanishi-Toda, M. Nitric oxide: ocular blood flow, glaucoma, and diabetic retinopathy. Prog Retin Eye Res. 26 (3), 205-238 (2007).
  2. Schuster, A. K., Fischer, J. E., Vossmerbaeumer, C., Vossmerbaeumer, U. Optical coherence tomography-based retinal vessel analysis for the evaluation of hypertensive vasculopathy. Acta Ophthalmol. 93 (2), e148-e153 (2015).
  3. Cherecheanu, A. P., Garhofer, G., Schmidl, D., Werkmeister, R., Schmetterer, L. Ocular perfusion pressure and ocular blood flow in glaucoma. Curr Opin Pharmacol. 13 (1), 36-42 (2013).
  4. Faraci, F. M., Sigmund, C. D. Vascular biology in genetically altered mice : smaller vessels, bigger insight. Circ Res. 85 (12), 1214-1225 (1999).
  5. Kornfield, T. E., Newman, E. A. Measurement of Retinal Blood Flow Using Fluorescently Labeled Red Blood Cells. eNeuro. 2 (2), (2015).
  6. Guevara-Torres, A., Joseph, A., Schallek, J. B. Label free measurement of retinal blood cell flux, velocity, hematocrit and capillary width in the living mouse eye. Biomed Opt Express. 7 (10), 4229-4249 (2016).
  7. Schallek, J., Geng, Y., Nguyen, H., Williams, D. R. Morphology and topography of retinal pericytes in the living mouse retina using in vivo adaptive optics imaging and ex vivo characterization. Invest Ophthalmol Vis Sci. 54 (13), 8237-8250 (2013).
  8. Gericke, A., et al. Identification of the muscarinic acetylcholine receptor subtype mediating cholinergic vasodilation in murine retinal arterioles. Invest Ophthalmol Vis Sci. 52 (10), 7479-7484 (2011).
  9. Gericke, A., et al. Functional role of alpha1-adrenoceptor subtypes in murine ophthalmic arteries. Invest Ophthalmol Vis Sci. 52 (7), 4795-4799 (2011).
  10. Bohmer, T., et al. The alpha(1)B -adrenoceptor subtype mediates adrenergic vasoconstriction in mouse retinal arterioles with damaged endothelium. Br J Pharmacol. 171 (16), 3858-3867 (2014).

Tags

רפואה גיליון 135 רשתית עכבר כלי דם הכנה Microvessel לשעבר Vivo Vasoreactivity Videomicroscopy
שלבי הכנה מדידה של תגובתיות ב העכבר רבים ברשתית <em>Vivo לשעבר</em>
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Gericke, A., Goloborodko, E.,More

Gericke, A., Goloborodko, E., Pfeiffer, N., Manicam, C. Preparation Steps for Measurement of Reactivity in Mouse Retinal Arterioles Ex Vivo. J. Vis. Exp. (135), e56199, doi:10.3791/56199 (2018).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter