Summary
纤毛发育对正常器官的形成至关重要。该协议描述了一种优化的方法来标记和可视化纤毛细胞的斑马鱼。
Abstract
近年来, 斑马鱼胚胎已成为一个流行的模式, 研究发展生物学, 由于特点, 如前子宫胚胎发育和光学透明度。特别是斑马鱼胚胎已成为研究脊椎动物肾脏器官和 multiciliated 细胞 (MCC) 发育的重要机体。为了可视化监控器在胚胎斑马鱼肾脏, 我们已经开发了一个联合协议的全贴装荧光原位杂交 (鱼) 和全贴装免疫荧光 (如果), 使高分辨率成像。这份手稿描述了我们的技术 co-localizing RNA 转录和蛋白质作为一个工具, 以更好地理解对发展计划的调节, 通过表达各种血统因素。
Introduction
在过去的几十年中, 斑马鱼 (斑马鱼) 已经成为研究发育生物学的主要模型生物体。胚胎在母亲的外面开发并且是光学上透明的。此外, 眼部、肾脏和前脑等重要器官的形成也迅速发生, 其结构由仅 24 h 后受精 (hpf) 组成。重要的是, 斑马鱼基因组是高度保守的哺乳动物1,2,3。此外, 斑马鱼和哺乳动物的器官也有相似的解剖和生理学。斑马鱼的胚胎肾脏, 或 pronephros, 证明了模型系统的价值检测基因功能在早期 nephrogenesis 和命运确定的保存上皮细胞种群的脊椎动物肾单位4,5,6,7,8,9,10. 同样, 斑马鱼胚胎在检查监控化学品的个体发育中变得越来越重要11、12、13、14、15、16,17。
正如他们的名字所表明的, 监控化学品是上皮细胞的特点是一束运动纤毛位于顶端表面17。在斑马鱼中, 监控化学品在流体流动中的作用, 并在 pronephros 的每一个肾单位的中间分布着一个 "salt-and 胡椒", 24 hpf11,12,13,14,15,16,17. 虽然它们只在少数人类肾脏疾病病例中被注意18、19、20、21, 但在其他哺乳动物组织 (如大脑和气管22,23,24, 这给实验设计带来了许多挑战。优雅的研究, 包括斑马鱼在内的各种脊椎动物模型显示了 mcc 命运的保守通路, 以缺口信号通路作为 mcc 的抑制剂开发12,17,25 ,26,27。因此, 斑马鱼 pronephros 提供了一个易于访问的模型来研究 MCC 发展的遗传机制在体内11,12,13,14,15,16,17。
在研究控制细胞命运、组织生长和早期胚胎发育的基因和分子通路时, 斑马鱼胚胎的透明和容易的基因操作已经证明是非常宝贵的特性1,2 ,3。因此, 传统的技术来可视化蛋白质和基因转录, 如原位杂交和整个装载如果, 已被应用到和优化斑马鱼16,28,29, 30,31,32,3334353637通过结合流行的鱼的协议和如果, 它是可能的标签和分析监控化学品在体内16,28,37,38。
Protocol
下面的协议使用斑马鱼在圣母大学的研究中心的维护和照顾。所有与斑马鱼成人和胚胎工作的方法都得到了机构动物保育和使用委员会的批准。
1. 胚胎固定
- 使用先前描述的方法收集斑马鱼胚胎39,40。在 24 hpf, 添加500µL 的非特异性蛋白酶混合物溶液 (50 毫克/毫升) 到 E3 在一个胚胎盘孵化室温 (RT)。
- 一旦胚胎开始脱离绒毛膜, 从胚胎盘中取出所有液体。
- 用新鲜的 E3 2-3 倍的 E3, 在盘子里轻轻地旋转 E3, 然后将液体迁成液体废物容器。
- 在修复前安乐胚胎, 在 E3 中加入2毫升的 0.2% tricaine。
- 将胚胎移植到一个5毫升的玻璃瓶中, 使用塑料的巴斯德吸管。在胚胎已经沉淀到瓶子底部后, 用吸管去除大部分的 tricaine/E3 溶液。
- 修复 24 hpf 胚胎与5毫升4% 甲醛 (粉煤灰) 的 2-4 h 在 RT, 没有躁动。
注意: 粉煤灰是有毒的, 粉煤灰解决方案应该在化学罩下处理, 而研究员戴着眼睛保护, 手套, 和实验室大衣。颗粒粉煤灰中的粉煤灰固定剂的制备应格外小心, 因为颗粒状的粉煤灰往往通过静态电荷来分散。
注: 胚胎可以在4° c 的晚上在4% 的粉煤灰中修复。将1x 磷酸盐缓冲盐水 (PBS) 加热至沸腾, 并不断搅拌溶液以完全溶解颗粒状粉煤灰, 制备4% 的粉煤灰。一旦溶液冷却回 RT, 4% 的粉煤灰是过滤消毒通过它通过一个0.45 µm 一次性系统的真空过滤, 然后和 aliquoted 到15毫升或50毫升部分存储在-20 ° c。 - 在 rt 中用1X 磷酸缓冲盐和 0.1% Tween-20 (PBST) 去除4% 的粉煤灰和洗涤胚胎两次. 用5毫升的100% 甲醇 (甲醇) 在 rt 冲洗胚胎一次. 在胚胎中加入5毫升新鲜100% 甲醇, 在-20 ° c 下孵育至少20分钟。
注: 胚胎可以储存在100% 甲醇在-20 ° c, 直到准备好胚胎准备。
2. 胚制备与杂交
- 水化5毫升的50% 甲醇, 在 1x PBST, 在 rt 的5分钟内洗净胚胎. 继续补液, 洗净的胚胎在5毫升30% 甲醇在 1x PBST 5 分钟, 在 rt. 在5毫升的 1x PBST 洗涤的胚胎每两次5分钟rt.
- Permeabilize 在5毫升的 1:1, 000 蛋白酶 K (pK) (10 毫克/毫升) 的溶液中孵化他们的胚胎在 1x PBST 为2分钟 RT。
注: 在上述 pK 浓度中, 较早的胚胎可以孵育超过2分钟, 但5毫克/毫升的浓度和潜伏期少于2分钟的胚胎建议为小于 24 hpf 的胚。 - 删除 pK 解决方案, 并立即在5毫升的 1x PBST 冲洗两次在 rt. 在 rt 中修复5毫升4% 粉煤灰中的胚胎至少20分钟。
注: 胚胎可以在4° c 的晚上在4% 的粉煤灰中修复。 - 在 RT 的5毫升的 1x PBST 中去除煤灰和洗涤两次。
- 将5毫升 1x PBST 的胚胎移植到平底离心管中, 放置在 RT 离心机架上, 以促进每个胚胎与随后的杂交溶液之间的相互作用。
- 在 RT 中, 在1.5 毫升杂交溶液 (Hyb +) 中两次洗净胚胎. 加入1.5 毫升的新鲜 Hyb + 和孵化胚胎在70° c 的杂交烤箱4-6 小时。
- 用一卷探针溶液 (10 µL RNA probe/500 µL Hyb +) 取代1.5 毫升的 Hyb + 充分覆盖胚胎。
注: 使用先前描述的方法合成反义 RNA 探针39。 - 杂交在杂交烤箱过夜, 在70° c 与单独的管定位直立在离心架, 没有晃动。
3. 热洗和堵塞
注: 通过将适当的溶液放在胚胎上, 然后在70° c 的杂交烤箱中孵化, 进行热洗。为了保持70° c 的洗涤解决方案, 当探针/Hyb + 混合物加入时, 将每个溶液的50毫升管放在杂交烤箱中。
- 卸下探头。在70° c 的1.5 毫升的 50% formamide/2x 生理盐水 (SSC) 的缓冲液中清洗两次胚胎, 每次20-30 分钟。
注: 探头可储存在 Hyb +-20 ° c, 并在以后再用。 - 在70° c 的1.5 毫升的 2x ssc 中清洗一次胚胎15分钟, 在70° c 的1.5 毫升 0.2X ssc 中洗涤胚胎两次, 每20-30 分钟。用1.5 毫升的阻断试剂取代 0.2x SSC, 在4° c 夜间孵育。
注: 在 RT 中孵育阻塞试剂的可能性为4小时, 而不是隔夜。
4. 抗体孵化和马来酸缓冲洗涤
注意: 保持胚胎免受环境光线的保护。
- 用0.2 毫升的防挖荚剂, 以1:1、000的比例, 用铝箔或另一遮光盖在 RT 下孵育 3 h, 以取代堵塞试剂。
注: 或者, 抗体可以在4° c 的夜间孵育。 - 3小时后, 在1.5 毫升的顺丁烯二酸缓冲液中清洗2-4 次, 每次在 RT 时为10-15 分钟. 在4° c 的新鲜马来酸缓冲液中, 将胚胎一夜孵化。
注: 不需要在一夜之间在马来酸缓冲液中孵育, 但这样做会降低探头的背景。
5. 过氧化物酶的探针检测与去除
注意: 保持胚胎免受环境光线的保护。
- 去除马来酸缓冲液, 更换1.5 毫升 1x PBS。在1.5 毫升的 1x PBS 中冲洗两次胚胎, 每次5分钟在 rt. 0.2 毫升的 Cy3 荧光染色溶液中孵育胚胎60分钟。
注意: 不同探头的孵化时间可能有所不同。 - 用1.5 毫升的甲醇在 1X PBS 10 分钟的 RT: 30% 甲醇, 50% 甲醇, 75% 甲醇和100% 甲醇。
- 在甲醇中孵育1.5 毫升的 1% H2O2的胚胎, 在 rt 中为 30 min. 在 1x PBS 中, 用1.5 毫升的下列甲醇溶液冲洗胚胎一次:10 分钟甲醇、75% 甲醇和50% 甲醇。在1.5 毫升的 1x PBS 中, 在 RT 中每两次清洗一次胚胎5分钟。
注: 胚胎可储存在 PBS 夜间在4° c。
6. 免疫荧光
注意: 保持胚胎免受环境光线的保护。
- 在 RT 中, 用1.5 毫升的 ddH2O 清洗胚胎5分钟. 将1.5 毫升的 pre-chilled 丙酮 (保持在-20 ° c) 中的胚胎洗净, 7 分钟. 在 rt 中用1.5 毫升的 ddH2O 清洗胚胎一次, 5 分钟. 在1.5 中清洗胚胎一次毫升的 1x PBST 与1% 的亚砜 (PBDT) 为5分钟的 RT。
- 孵育1.5 毫升的 PBDT + 10% 胎牛血清 (FBS) 在 RT 的一个摇杆2小时的胚胎。
- 去除 PBDT + FBS 和替换与1.5 毫升的主要抗体, anti-acetylated 蛋白 (生产的老鼠) 和反γ蛋白 (生产的兔), 稀释一起在1:400 在 PBDT + 1% FBS。在4° c 的夜间孵育胚胎。
注意: 潜伏期可能会因主抗体而异。测试不同的时间间隔可能是必要的优化标签。
7. 二级抗体
注意: 保持胚胎免受环境光线的保护。
- 为了去除胚胎中多余的未绑定抗体, 在1.5 毫升的 PBDT + 1% FBS + 0.1 米的氯化钠中, 在摇杆上进行1分钟的冲洗。
- 在1.5 毫升的 PBDT + 1% FBS + 0.1 M 氯化钠清洗胚胎5次, 每在一个摇杆上的30分钟. 用1.5 毫升的 PBDT + 1% FBS 在摇杆上的30分钟清洗胚胎。
- 在4° c 夜间孵育200µL 的二次抗体, alexa 488 山羊 anti-mouse igg 和 alexa 647 山羊兔 igg, 稀释在 PBDT 在1:500。
8. DAPI 染色
注意: 保持胚胎免受环境光线的保护。
- 在1.5 毫升的 PBDT 中快速冲洗胚胎两次。用1.5 毫升的 DAPI 取代 PBDT, 稀释1:15000 在 1X PBST, 在 RT 上孵育15分钟的摇杆。
- 在 RT 中洗涤1.5 毫升的 PDBT + 1% FBS + 0.1 米氯化钠三次, 每次15-20 分钟。将胚胎储存在1.5 毫升的 PBDT 在4° c, 直到准备好安装和图像。
9. 斑马鱼 Pronephros 的安装和成像
- 将胚侧放在玻璃上, 小体积, 大约10µL, PBDT。
- 用一副精致的镊子把眼睛后面的胚胎挤压, 去掉头部和一些蛋黄球。
- 用细钳将剩余的蛋黄球从胚体中轻轻刮去。用薄的纸巾从滑梯上取下游离的蛋黄和多余的液体。
- 在胚胎和位置的剩余尾部添加一滴安装介质, 这样尾巴就会横向放置。将片放在尾部的顶部, 以使样品扁平化, 然后放置在覆盖的滑动框中。
- 图像肾脏纤毛在60X 放大的共聚焦显微镜下使用以下渠道: DAPI 在蓝色 (laser 设置在408.0 毫微米), FITC 在绿色 (laser 设置在488.0 毫微米), Cy3 染料标记在红色 (laser 设置在561.0 毫微米) 和 Alexa 680 在白色 (laser 设置在637.0 毫微米)。
Representative Results
野生型斑马鱼的胚胎是固定在 24 hpf, 并立即准备如上所述。图 1描述了一个实验工作流以及所选的插图阶段。步骤1-8 中概述的工作流程包含了样品的采购、固定和操纵的过程, 固定组织用反义 riboprobes 标记内源性转录, 其次是免疫荧光标记感兴趣的蛋白质。工作流中的步骤9是指为优化斑马鱼胚胎躯干的可视化而专门设计的安装和成像技术。在伴随步骤9的绘图中, 我们演示了将组织放置在玻璃幻灯片上的操作方法。在这一步, 胚胎头和蛋黄球被删除, 留下的尾巴是横向定位之间的玻璃幻灯片和片。蛋黄球和头部的去除建议的最佳成像的居民 MCC 人口在 pronephros, 作为蛋黄球 auto-fluoresces 和阻碍安装过程。
使用共聚焦显微镜获得的代表性图像在图 2中提供, 它在60X 放大倍数和同一放大倍数下显示相同的野生类型胚。顶部的面板提供每个单独通道的图像, 而底部的两个面板是这些成像数据的复合叠加。白色框 (在左列图像中) 概述了数字缩放 (右列图像) 的焦点所在的区域。在数字变焦的最后一个面板中突出显示, 细胞核被标记在 DAPI 中, 并且根据反义 riboprobe 检测了监控化学品, 其目的是识别odf3b, γ-蛋白的抗体表示基底体, α-蛋白指纤毛。在复合叠加的数字变焦中, 黄色虚线圆圈表示 MCC 的周长, 这是由于拥有odf3b抄本、多个基底体和纤毛而被识别的。相邻的单纤毛细胞, 标有一个黄色的圆点, 是基于表型的拥有一个单一的基础体和单一的纤毛。
图 1: 实验流程图示意图这个流程图显示了一个实验工作流程, 伴随着雪花表示冷孵化的关键阶段的插图, 三条曲线代表热量, 而时钟代表长时间的潜伏期。工作流可以至少执行6天 (请参见过程中每个阶段的右上角的日数), 尽管有些步骤可以在较长的时间段内执行, 如协议中所述。对安装过程进行了详细的描述, 展示了最终安装在玻璃滑梯和片之间的胚胎尾部。黑色虚线框概述了在60X 放大倍数下成像的区域。请单击此处查看此图的较大版本.
图 2: 对斑马鱼 pronephros 的可视化监控化学品的代表性结果24 hpf 野生型斑马鱼胚胎在60X 倍放大时的最大图像投影以及在同一胚的60X 放大倍率上的数字变焦。白色方框表示聚焦的区域为变焦。DAPI (细胞核)、 odf3b (监控化学品)、γ-蛋白 (基底体) 和α-蛋白 (纤毛) 的单个污点被标记, 然后在底部两个面板中合并在一起。在数字变焦中, 我们提供了以下单元格位置的近似: 一个 MCC 由虚线黄色圆圈勾勒, 虚线黄色圆圈勾勒出一个单纤毛细胞。请单击此处查看此图的较大版本.
Discussion
上面详细的协议是优化的标签在 pronephros 与odf3b转录和α-蛋白在 24 hpf 斑马鱼胚胎。为了取得最佳效果, 建议使用新鲜固定和准备好的胚胎。胚胎被固定和储存在甲醇或 Hyb + 在-20 ° c 超过一周可以使用, 但不必要的背景染色的概率增加的时间, 胚胎保存在储存。
这项技术的修改和故障排除是必要的, 以便为其他特定标记 (例如其他反义 riboprobes 和其他抗体) 量身定做这种方法。在整个装入原位杂交过程中, 许多调整步骤参数的方法已经被我们的组和其他人记录下来了.31,3436,38, 39。同样, 每种蛋白质抗体都需要在染色时间方面进行一些故障诊断, 而每个主要抗体的稀释和潜伏期的近似范围最好通过对记录结果的评估28,35. 对于小于 24 hpf 的胚胎, pk 治疗应短于2分钟, 其中超过 24 hpf 的胚胎应以 pk 治疗超过2分钟。此外, 早于 24 hpf 的胚胎应在 pK 治疗前漂白色素。
染色后的荧光染色溶液, 这是至关重要的, 以消除任何残留的污渍, 抗体和过氧化物, 执行一系列的甲醇和过氧化氢洗涤。紧接着的 PBS 冲洗是从胚胎中去除过量甲醇的关键。重要的是, 在进行 IF 抗体, 我们发现, 丙酮和去离子水冲洗使胚胎不太可能坚持彼此和/或离心管。在我们的经验中, 特定转录因子和其他基因的抗体, 虽然它们可能有效地在西方的印迹, 如果在斑马鱼的效果不好。然而, 高度保守和丰富的蛋白质, 如α-蛋白和β-蛋白, 在斑马鱼的工作很好, 如果16,37。
有了鱼, 就有可能想象出在斑马鱼身上还没有特定抗体的 RNA 转录基因。通过结合鱼类与 IF, 如本议定书所示, 共存的 RNA 转录和蛋白质可以看到在体内(图 2)。该协议灵活的性质, 使快速故障排除的各种 RNA 转录和蛋白质在许多组织和时间点的可视化。当与已有的斑马鱼胚胎的特征相结合时, 本议定书的鱼类 + 如果提供了另一种工具来探索基因和蛋白质的表达对发育途径的重要调节。
Disclosures
作者没有什么可透露的。
Acknowledgments
这项工作得到部分支持的赠款 R01DK100237 R.A.W. 和国家科学基金会研究生研究金 No。DGE-1313583 至 A.N.M。我们还感谢科学学院暑期本科生研究奖学金计划, 支持 M.U。我们要感谢在圣母大学的斑马鱼研究中心对我们的斑马鱼的专门护理。我们还要感谢生物科学系以及我们实验室的成员们所提供的所有支持和宝贵的见解。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| non-specific protease mixture solution | Roche | 11459643001, pronase from Streptomyces griseus | Dilute in E3 without methylene blue to make 50mg/mL stock solution; store at -20°C |
| E3 solution | Dilute 50X E3 (250 mM NaCl, 8.5 mM KCl, 16.5 mM CaCl2, 16.5 mM MgSO4 in distilled water) in distilled water; add 1 x 10-5 M methylene blue (sigma M9140) to inhibit contamination | ||
| tricaine (ethyl 3-aminobenzoate methanesulfonate) | Fluka | A5040-250G | To make a 0.2% stock solution, dissolve 1 g of tricaine powder in 10 mL Tris, pH 9.5 and distilled water up to 500 mL |
| embryo dishes | VWR | 351029 | |
| 5 mL glass vials | Wheaton | 225012 | |
| disposable plastic Pasteur pippettes | VWR | 414004-004 | |
| 4% paraformaldehyde (PFA) solution | Electron Microscopy Services | 19210 | Dissolve 4% PFA in 1X PBS and bring to a boil under a fume hood. Cool and aliquot, then store at -20°C. Do not refreeze once thawed for use. |
| 10X PBS | American Bioanalytical | AB11072 | Dilute in distilled water to make a 1X stock |
| Tween-20 stock | American Bioanalytical | AB02038 | Make a 0.1% Tween-20 stock by diluting in distilled water. |
| 1X phosphate buffered saline with 0.1% Tween 20 (PBST) | Sigma | P9416 | 0.1% Tween-20 in 1X PBS |
| methanol (MeOH) | Sigma | 34860-4L | |
| proteinase K | Roche | 3115879001 | Dissolve in distilled water to make a 10 mg/mL stock; aliquot and store at -20°C |
| flat bottom microcentrifuge tubes | VWR | 87003-300; 87003-298 | |
| formamide | American Bioanalytical | AB00600 | store at -20°C |
| hybridization solution (HYB+) | 50% formamide, 5X SSC, 0.1% Tween-20, 5 mg/mL yeast torula RNA, 50 μg/μL heparin; store at -20°C | ||
| hybridization oven | Fisher Scientific | 13-247-10Q | |
| 20X saline-sodium citrate (SSC) buffer solution | American Bioanalytical | AB13156 | dilute in distilled water to make 2X and 0.2X stocks |
| blocking reagent solution | Roche | 11096176001 | dilute in maleic acid buffer to make a 10% stock solution; store at 4°C |
| maleic acid buffer solution | Sigma | M0375 and S7653 | 150mM maleic acid, 100mM NaCl (pH 7.5) |
| anti-Digoxigenin-POD, Fab fragments | Roche | 11207739910 | store at 4°C |
| Cy3 fluorescent staining solution | PerkinElmer, Inc. | NEL744001KT, TSA Plus Cyanin3 system | store at 4°C; prepare staining solution fresh by making a 1:50 dilution of TSA reagent (dissolved in 60 uL of DMSO) in the kit buffer |
| Hydrogen peroxide (H2O2) | Sigma | H1009-500mL | store at 4°C |
| molecular grade distilled water (ddH2O) | Mediatech | 25-055-CM | |
| acetone | American Bioanalytical | AB00636-01000 | store an aliquot at -20°C |
| DMSO | American Bioanalytical | AB00435-01000 | |
| fetal bovine serum (FBS) | Gibco | 10438-034 | aliquot and store at -20°C |
| monoclonal anti-acetylated tubulin clone 6-11B-1 | Sigma-Aldrich | T6793 | aliquot and store at -20°C |
| anti-γ-tubulin anitbody produced in rabbit | Sigma-Aldrich | T5192 | aliquot and store at -20°C |
| odf3b cDNA clone MGC:63985 | OpenBiosystems | IMAGE:6792478 | store bacterial glycerol stock at -80°C |
| NaCL | American Bioanalytical | AB01915-05000 | |
| Alexa flour 647 goat anti-rabbit IgG | Life Technologies | A21245 | store at 4°C; protect from light |
| Alexa fluor 488 goat anti-mouse IgG | Life Technologies | A11029 | store at 4°C; protect from light |
| DAPI | Life Technologies | D1306 | aliquot and store at -20°C |
| glass slide | Thermo-Fisher | 4445 | |
| glass coverslip | Thermo-Fisher | 12-540A | 18 x 18 mm |
| fine forceps | Roboz | RS-1050 | Dumont Tweezers Pattern #55 |
| mounting media | Polysciences, Inc. | 18606, Aqua-Poly/Mount | store at 4°C |
| confocal microscope and associated software | We use a Nikon C2plus Confocal Microscope with NIS-elements AR software | ||
| rocker | Bio-Rad | 1660710EDU |
References
- Lieschke, G. J., Currie, P. D. Animal models of human disease: zebrafish swim into view. Nat Rev Genet. 8, 353-367 (2007).
- Goldsmith, J. R., Jobin, C. Think small: zebrafish as a model system of human pathology. J Biomed Biotechnol. 2012, 817341 (2012).
- Howe, K., et al. The zebrafish reference genome sequence and its relationship to the human genome. Nature. 496, 498-503 (2013).
- Drummond, I. A. Kidney development and disease in the zebrafish. J Am Soc Nephrol. 16, 299-304 (2005).
- Wingert, R. A., et al. The cdx genes and retinoic acid control the positioning and segmentation of the zebrafish pronephros. PLoS Genet. 3, 1922-1938 (2007).
- Wingert, R. A., Davidson, A. J. The zebrafish pronephros: a model to study segmentation. Kindey Int. 73 (10), 1120-1127 (2008).
- Wingert, R. A., Davidson, A. J. Zebrafish nephrogenesis involves dynamic spatiotemporal expression changes in renal progenitors and essential signals from retinoic acid and irx3b. Dev Dyn. 240, 2011-2027 (2011).
- Chambers, B. E., Wingert, R. A. Renal progenitors: roles in kidney disease and regeneration. World J Stem Cells. 8 (11), 367-375 (2016).
- Drummond, B. E., Wingert, R. A. Insights into kidney stem cell development and regeneration using zebrafish. World J Stem Cells. 8 (2), 22-31 (2016).
- Poureetezadi, S. J., Wingert, R. A. Little fish, big catch: zebrafish as a model for kidney disease. Kidney Int. 89 (6), 1204-1210 (2016).
- Kramer-Zucker, A. G., Olale, F., Haycraft, C. J., Yoder, B. K., Schier, A. F., Drummond, I. A. Cilia-driven fluid flow in the zebrafish pronephros, brain and Kupffer's vesicle is required for normal organogenesis. Development. 132, 1907-1921 (2005).
- Liu, Y., Narendra, P., Kramer-Zucker, A., Drummond, I. A. Notch signaling controls the differentiation of transporting epithlelia and multiciliated cells in the zebrafish pronephros. Development. 134, 1111-1122 (2007).
- Ma, M., Jiang, Y. J. Jagged2a-Notch signaling mediates cell fate choice in the zebrafish pronephric duct. PLoS Genetics. 3, e18 (2007).
- Li, Y., Cheng, C. N., Verdun, V. A., Wingert, R. A. Zebrafish nephrogenesis is regulated by interactions between retinoic acid, mecom, and Notch signaling. Dev Biol. 386 (1), 111-122 (2014).
- Wang, L., et al. miR-34b regulates multiciliogenesis during organ formation in zebrafish. Development. 140, 2755-2764 (2013).
- Marra, A. N., Wingert, R. A. Epithelial cell fate in the nephron tubule is mediated by the ETS transcription factors etv5a and etv4 during zebrafish development. Dev Biol. 411 (2), 231-245 (2016).
- Marra, A. N., Li, Y., Wingert, R. A. Antennas of organ morphogenesis: the roles of cilia in vertebrate kidney development. Genesis. 54 (9), 457-469 (2016).
- Duffy, J. L., Suzuki, Y. Ciliated human renal proximal tubular cells. Observations in three cases of hypercalcemia. Am J Pathol. 53, 609-616 (1968).
- Katz, S. M., Morgan, J. J.
- Hassan, M. O., Subramanyan, S. Ciliated renal tubular cells in crescentic glomerulonephritis. Ultrastruct Pathol. 19, 201-203 (1995).
- Ong, A. C., Wagner, B. Detection of proximal tubular motile cilia in a patient with renal sarcoidosis associated with hypercalcemia. Am J Kidney Dis. 45, 1096-1099 (2005).
- Worthington, W. C., Cathcart, R. S. III Ependymal cilia: distribution and activity in the adult human brain. Science. 139, 221-222 (1963).
- Cowan, M. J., Galdwin, M. T., Shelhamer, J. H.
- Jain, R., et al. Temporal relationship between primary and motile ciliogenesis in airway epithelial cells. Am J Respir Cell Mol Biol. 43, 731-739 (2010).
- Stubbs, J. L., Vladar, E. K., Axlerod, J. D., Kitner, C. Multicilin promotes centriole assembly and ciliogenesis during multiciliate cell differentiation. Nat Cell Biol. 14, 140-147 (2012).
- Tan, F. E., et al. Myb promotes centriole amplification and later steps of the multiciliogenesis program. Development. 140, 4277-4286 (2013).
- Zhou, F., Narasimhan, V., Shboul, M., Chong, Y. L., Reversade, B., Roy, S. Gmnc is a master regulator of the multiciliated cell differentiation program. Curr Biol. 25, 3267-3273 (2015).
- Jowett, T. Analysis of Protein and gene expression. Methods Cell Biol. 59, 63-85 (1999).
- Schulte-Merker, S. Chapter 2: Looking at Embryos. Zebrafish: A practical approach. 261, 39-58 (2002).
- Brend, T., Holley, S. A. Zebrafish whole mount high-resolution double fluorescent in situ hybridization. J Vis Exp. (25), (2009).
- Lauter, G., Soll, I., Hauptmann, G. Two-color fluorescent in situ hybridization in the embryonic zebrafish brain using differential detection systems. BMC Dev Biol. 11, (2011).
- Drummond, B. E., Li, Y., Marra, A. N., Cheng, C. N., Wingert, R. A. The tbx2a/b transcription factors direct pronephros segmentation and corpuscle of Stannius formation in zebrafish. Dev Biol. 421 (1), 52-66 (2017).
- Jaffe, K. M., Thiberge, S. Y., Bisher, M. E., Burdine, R. D.
- Lauter, G., Soll, I., Hauptmann, G. Multicolor fluorescent in situ hybridization to define abutting and overlapping gene expression in the embryonic zebrafish brain. Neural Dev. 6, (2011).
- Sorrells, S., Toruno, C., Stewart, R. A., Jette, C. Analysis of apoptosis in zebrafish embryos by whole-mount immunofluorescence to detect activated caspase 3. J Vis Exp. (82), e51060 (2013).
- Schumacher, J. A., Zhao, E. J., Kofron, M. J., Sumanas, S. Two-color fluorescent in situ hybridization using chromogenic substrates in zebrafish. Bio Techniques. 57, 254-256 (2014).
- Julich, D., et al. beamter/deltaC and the role of Notch ligands in the zebrafish somite segmentation, hindbrain neurogenesis and hypochord differentiation. Dev Biol. 286, 391-404 (2005).
- Gross-Thebing, T., Paksa, A., Raz, E. Simultaneous high-resolution detection of multiple transcripts combined with localization of proteins in whole-mount embryos. BMC Biology. 12, (2014).
- Cheng, C. N., Li, Y., Marra, A. N., Verdun, V., Wingert, R. A. Flat Mount Preparation for Observation and Analysis of Zebrafish Embryo Specimens Stained by Whole Mount In situ Hybridization. J Vis Exp. (89), e51604 (2014).
- Poureetezadi, S. J., Donahue, E. K., Wingert, R. A. A Manual Small Molecule Screen Approaching High-throughput Using Zebrafish Embryos. J Vis Exp. (93), e52063 (2014).
