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Immunology and Infection

建立高通量筛选平台评估乳腺癌 HER2 基因扩增的异质性

doi: 10.3791/56686 Published: December 5, 2017

Summary

HER2-positive 细胞的异质分布可以在乳腺癌的一个子集中观察到, 并产生临床难题。在这里, 我们介绍了一个可靠的和成本-有效的协议, 以定义, 量化, 并比较 HER2 内肿瘤遗传异质性的大系列异处理乳腺癌。

Abstract

针对人类表皮生长因子受体 2 (HER2) 的靶向治疗已经从根本上改变了 HER2-positive 乳腺癌患者的预后。然而, 少数病例显示 HER2-positive 细胞的异质分布, 从而产生重大的临床挑战。到目前为止, 没有可靠和标准化的协议, 以表征和量化的HER2异构基因扩增在大的队列中提出。在这里, 我们提出了一个高通量的方法, 以同时评估 HER2 的地位, 跨不同地形地区的多个乳腺癌。特别是, 我们说明了实验室的程序, 以构建增强的组织芯片 (TMAs) 纳入了肿瘤的目标定位。对福尔马林固定石蜡包埋 (FFPE) 乳腺组织中的银原位杂交 (SISH), 所有的偏置参数都进行了具体的优化。免疫组化分析的预后和预测生物标记 (, ER, PR, Ki67, 和 HER2) 应使用自动程序执行。一个定制的 SISH 协议已被实施, 以允许在多个组织的高品质的分子分析, 接受不同的固定, 处理, 和存储程序。在这项研究中, 我们提供了一个证据的原则, 即特定的 DNA 序列可以同时在不同的地形地区的多个和异加工乳腺癌使用一个有效的和成本效益的方法。

Introduction

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HER2是一种原癌基因, 在所有浸润性乳腺癌的 15-30% 中被表达和放大,1,2。HER2 过度表达是由 > 10% 细胞的存在, 强膜免疫组织化学 (IHC) 染色 (3 +), 而基因放大可以评估时, 无论是 HER2/centromere 比率是≥2或基因复制数是≥6, 在计数至少20细胞由原位杂交 (一)3

在乳腺癌中, 肿瘤的遗传异质性已经被广泛的描述, 这对生物标志物评估和治疗反应的潜在不利因素4。根据美国病理学家学院 (CAP), HER2 的异质性存在, 如果HER2放大 > 5% 和 < 50% 浸润肿瘤细胞5。令人遗憾的是, 乳腺癌 HER2 空间异质性的实际发病率在病理学家中仍然是一个争议的话题, 一些作者认为这是一个极其罕见的事件, 而另一些人则认为, 多达40% 的病例是HER2-heterogeneous1,5,6,7,8,9,10。尽管支持这一条件的生物学机制尚未完全阐明, 但肿瘤 HER2 异质性的预后和临床影响对于乳腺癌患者是至关重要的11

最近, 亮场分子技术, 如显像 (CISH) 和银 (SISH), 已成为可靠的方法, 以检测 HER2 异质性 FFPE 组织, 有一些优势相比, 荧光 (鱼)12。遗憾的是, 对单个病例的大量分析在大规模研究中仍然不切实际。一些团体认为, 组织化学、IHC 和与偏价技术相结合可以在癌症生物学研究中代表一个有价值的策略13,14,15,16。通过这种广泛采用的方法, 可以同时分析不同患者的组织样本, 最大限度地减少所使用的组织和试剂, 从而促进对一大系列病例的统一分析14。但是, 在试剂、固定时间和使用的保存方法等不同处理的多组织样品的同时高通量分子表征方面, 没有任何协议可供使用, 如存档块.

鉴于乳腺癌 HER2 空间异质性的预后和临床意义, 我们开发了一个综合的分子平台, 以评估它在大系列的异处理的案件。在这里, 我们描绘了实验室的策略, 产生和分析的肿瘤内的非均质性的HER2扩增在乳腺癌的高产 TMAs 的手段, SISH。下面的协议已经开发的肿瘤测量 > 5 毫米 (> pT1b 根据 TNM 2017)17。对于较小的病变, 我们建议对全脸串行切片进行分析。我们的程序允许同时 IHC 和 SISH 分析多达30乳腺癌, 包括平均6个不同的领域 (范围 4-8) 为每个案件。一共, 180 组织核心的直径1毫米, 与500µm 之间的核心, 和2毫米之间的网格和边缘将生成每一个偏的区块。

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Protocol

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这项研究是由 IRCCS Ca 的格基金会, Policlinico 医院, 意大利米兰的机构审查委员会批准的。

1. 病人和组织标本的选择

  1. 检索所有要分析的案例的存档幻灯片, 包括所有可用的苏木精和曙红 (H & E) 和 IHC 幻灯片的原始诊断, 如果目前, 一个 H & E 的匹配非肿瘤性乳腺组织 (例如, 手术保证金).
  2. 执行案例评审。
    注意: 对于这项任务, 至少有两位有乳腺病理学经验的病理学家应该讨论诊断幻灯片并解决 collegially 的分歧。使用传统显微镜或远程工具 (有利于后者在多研究)。如果有, 排除所有不和谐的情况。
    1. 根据世界卫生组织 (WHO) 乳腺肿瘤分类的最新版本, 对所有病例进行组织学重新分类18
    2. 确保每个病例的正常组织, 如果存在于存档临床标本中, 包括至少一个非肿瘤晚期导管-小叶单位。
    3. 使用明亮场显微镜 (由病理学家和将建造 TMAs 的技术员共同执行), 确定所有显示异质性细胞学、建筑或 IHC 特征的肿瘤区。
  3. 使用玻璃幻灯片上的标记或在数字幻灯片软件上使用适当的工具 (图 1A) 突出显示离散的地形区域。
  4. 根据所选的幻灯片, 从存档中检索相应的 FFPE 块。
    注: 为优化偏微结构, 避免组织损耗, 并保持凸模的结构完整性, 应排除 < 1 毫米厚残余组织的病例。

2. 基于 Kononen 技术的设计与施工 TMAs

  1. 创建并打开一个新的电子表格文件, 其中包含每个案例的不同区域的记录。在单独的列中包括以下数据, 如表1所示: 案例 id、块 id、区域 id、组织类型 (例如、正常组织、侵入性成分 histotype、原位组件 histotype)、地形 (、肿瘤核心、侵入前), 形态学 (例如, 核级, 建筑, 分裂, 细胞学特征), 生物标志物状态 (, 雌激素受体 (ER), 孕激素受体(PR), Ki67, 和 HER2), 以及所有其他 IHC 功能。
    1. 保存文档。
  2. 创建一个项目。
    1. 安装和打开设计软件。
    2. 定义 "可通过" 菜单文件 > "新建 > 块" 或使用 CTRL + B 访问。
    3. 在第一个字段中单击以填充或按 Tab 键, 并键入石蜡块的尺寸: 宽度 35 (mm), 高度 20 (mm)。键入 "2" 作为 "边距" 值 (, 从石蜡边缘到 mm 的距离) (图 1B)。通过单击正确的按钮保存数据。新的收件人块模板现已保存, 可用于新的组织阵列模板。
    4. 创建组织阵列项目: 访问菜单文件 > 新建 > 组织阵列或使用 CTRL + T。
    5. 填入组织数组、注释和作者的名称, 然后单击 "下一步"。单击 "导入" 图标, 选择以前创建的收件人块的模板文件, 然后单击 "下一步"。
    6. 单击圆形按钮可选择 1 mm 作为光斑大小。选择500µm 作为点间距, 这是相邻点的两个中心之间的空间。单击计算器图标以计算所创建的斑点总数, 应该是231。单击 "下一步"。
    7. 通过单击它来定义点编号模式。单击 "定义" 按钮以创建网格和子网格。删除中央线 (6 行) 和列8和15。保持3点1号线的方向。最终映射应包含183点的总数, 如图 2所示。
    8. 定义组织类型列表: 通过菜单文件 > 新 > 组织类型列表或使用 CTRL + L 进行访问。
    9. 插入先前定义的组织描述。按向下键或单击 + 按钮添加一行。
    10. 定义项目: 通过菜单文件 > 新 > 助推器项目或使用 CTRL + P 访问。
    11. 填入组织数组、注释和作者的名称, 然后单击 "下一步"。导入电子表格文件、组织类型列表和先前通过单击适当图标创建的组织阵列模型。
    12. 单击 "全部选择", 并定义每个组织类型的斑点数;单击 "匹配" 按钮以应用设置。将会出现一个表, 列出将被取样并转移到此项目中的收件人块的核心总数。保存项目并关闭程序。
  3. 准备受体块 (图 1B)。
    1. 在65° c 时用弹力石蜡填充清洗过的金属模具。
    2. 将石蜡块留在室温下, 在金属模具内过夜降温。
    3. 从金属模具中提取石蜡块。如果出现裂纹, 请丢弃该块并重复步骤 2.3. 1-2. 3.3。
  4. 使用自动或半自动的机器人19构造该方法。
    1. 使用注释检索所有选定的 FFPE 块和相应的 H & E 节。
    2. 打开机器人并在机器人传送带上插入受体块。
    3. 打开机器人控制站软件, 单击 "新组织阵列", 然后加载以前创建的项目 (图 1C)。
    4. 单击 "继续", 然后从菜单中选择施主块的位置。
    5. 将起始位置定义在每个收件人块上: 使用箭头键移动激光光源, 并将其与接收器块的石蜡上的左上边缘对齐。
    6. 单击 "下一步", 并对垂直对齐重复。
    7. 单击 "下一步", 在收件人 (受体) 块的先前定义的坐标中自动创建一个孔。
    8. 把拳打空
    9. 放置供方块进行取样, 并从先前标注的感兴趣区域取出组织芯。
    10. 在接收方 (受体) 块的孔中插入供体组织芯。
    11. 从机器人中取出施主块。
    12. 重复步骤 2.4. 5-2. 4.11, 直到完成。
  5. 将新生成的偏压块的组织侧放在一个无菌的空白幻灯片上, 并将其放置在45° c 5 分钟的实验室烤箱中。
  6. 轻轻地按下在幻灯片上的方块 5 s, 以铺平组织核心。重复一次 (总共2次)。
  7. 从烤箱中取出与滑块一起, 将其翻转, 然后轻轻地从幻灯片中分离出该块。
  8. 在65° c 的情况下, 用一层薄薄的弹力石蜡覆盖该组织表面。
  9. 在室温下保持2小时。
  10. 在4° c 的24小时转移。
    注: 该区块可贮存在4° c, 直至耗尽。

3. 组织化学和免疫组织化学分析

  1. 削减的部分。
    1. 放置在-10 ° c 的表面上的蜡侧的偏位受体块 (s) 10 分钟的寒意石蜡。
    2. 用超纯水填充浮选槽, 将热量设置为38° c。
    3. 在旋转切片上放置一个新的刀片, 并将该块插入切片卡盘, 使蜡块面向刀片, 并在垂直平面上对齐。
    4. 小心地与刀片块, 并削减一些薄薄的部分, 以确保定位是正确的;必要时进行调整。
    5. 切割3µm 厚的部分。
    6. 用镊子拿起这些部分, 并将它们漂浮在水浴表面。
    7. 在普通的和 IHC 的玻璃滑梯上挑出水浴的部分。
    8. 将幻灯片放在机架上, 在45° c 过夜将它们存放在烤箱中。
      注: 一旦准备好, 应在24小时内染色。
  2. 使用 autostainer 进行组织化学染色 (H & E)。
    1. 在 autostainer 机架上插入幻灯片, 并将其放置在60° c 为10分钟。
    2. 打开 autostainer 的装载抽屉, 并在一个带有标准 H & E 剪辑的负载站中向外插入机架。
    3. 关闭抽屉后, 系统将自动识别该剪辑, 并且以下协议将开始: 烘箱站在37° c (6 分钟), 二甲苯 (2 分钟), 二甲苯 (2 分钟), 乙醇 100% (2 min), 乙醇 100% (2 分钟), 乙醇 95% (2 分钟), 乙醇 95% (2 分钟), 蒸馏水 (4 分钟), Carazzi 的苏木精 (9 分钟), 低压自来水 (2 分钟), 曙红 1% (1 分钟), 低压自来水 (2 分钟), 乙醇 95% (二十年代), 乙醇 95% (二十年代), 乙醇 95% (二十年代), 乙醇 95% (二十年代), 乙醇 100% (十五年代), 乙醇 100% (十五年代), 二甲苯 (三十年代), 二甲苯 (三十年代)。
    4. 从抽屉中卸下机架, 然后用盖板装入幻灯片。
      1. 收集一滴装载与吸管, 并把它放在一个外边缘的封面幻灯片。
      2. 将滑块的湿侧放在滑梯上, 让安装干30分钟。
  3. 使用自动 immunostainer 进行 ER、PR、Ki67 和 HER2 的 IHC 染色。
    注: 在开始染色运行前, 启动系统, 并检查消耗品试剂瓶 (材料表) 和废容器。
    1. 放置在60° c 的偏析幻灯片分析10分钟。
    2. 启动 immunostainer 仪器和软件。
    3. 在 "主页" 视图中, 单击 "协议" 按钮, 然后单击 "创建/编辑协议"。
    4. 选择标准的民建联 (3, 3 '-diaminobenzidine) IHC 程序修改基本模板。
    5. 将 "Deparaffinization" 标记在方框列表中, 并将介质温度设置为72° c。
    6. 标记 cc1 揭露溶液, 将培养基温度设在95° c, 孵育时间在36分钟。
    7. 标记主抗体盒, 插入 ER 内嵌分配器的 ID (仪器软件将在试剂传送带上识别分配器), 并将潜伏期设置为16分钟。
    8. 标记 Counterstaining 框, 选择苏木素 I, 并设置潜伏期在12分钟。
    9. 单击 "另存为" 按钮并命名协议。
    10. 重复步骤 3.3. 3-3. 3.9 为剩余的抗体使用以下主要抗体潜伏期: PR 16 min、Ki67 16 min 和 HER2 12 min. 使用预稀释的现成使用 (RTU) 抗体。
    11. 在 "主页" 视图中, 单击 "创建标签" 按钮。
    12. 单击 "协议" 按钮, 并添加 ER、PR、Ki67 和 HER2 协议, 以便对每个要分析的。
    13. 单击 "关闭/打印" 按钮。
    14. 当标签模板出现时, 输入标签的 "对中" id。
    15. 单击 "打印" 按钮以打印标签, 然后将其应用于 "偏" 幻灯片。
    16. 单击仪器图标, 并将仪器启动模式设置为 "就绪"。
    17. 打开覆盖试剂传送带的引擎盖, 放置检测系统和主抗体, 然后关闭引擎盖。
    18. 单击幻灯片抽屉中的前按钮以打开它, 加载偏压幻灯片, 然后通过单击同一按钮关闭抽屉。
    19. 将仪表启动模式设置为 "正在运行" 并按照说明进行操作。
    20. 在运行结束时, 通过按下打开的所有抽屉, 在仪表滑块上按下 "已完成的幻灯片" 按钮, 并将其用温水肥皂水冲洗, 以除去剩余的试剂。
    21. 在低压冷水运行水中冲洗滑块, 脱水片, 并在每张幻灯片上应用玻璃。
  4. 根据美国临床肿瘤协会 (ASCO)/CAP 指南和 Ki67 国际 Ki67 在乳腺癌工作组中的建议, 对 ER、PR 和 HER2 进行 IHC 分析 (表 2)。
    注: 此分析应分别在分离的组织斑点的病理学家和经验的乳房病理。
    1. 如果≥1% 的肿瘤细胞核是免疫反应性的, 则评估 ER 表达式为阳性20,21,22,23
    2. 评估 PR 表达为阳性, 如果≥1% 的肿瘤细胞核为免疫反应性20,21,22,23
    3. 评估 HER2 表达式为: a) 评分 3 + 如果周膜染色是完整和激烈的, b) 评分 2 + 如果周膜染色不完全和/或弱/中 > 10% 的侵袭性肿瘤细胞或完整和周膜染色在浸润性肿瘤细胞的≤10% 内是剧烈的, c) 评分 1 + 如果不完整的膜染色微弱/勉强察觉, 并在 > 10% 的浸润性肿瘤细胞, d) 阴性, 如果没有染色是存在或膜染色是不完整和微弱/勉强察觉和在≤10% 浸润性肿瘤细胞3,24
    4. 在至少1000个肿瘤细胞中随机选择超过10高功率场 (放大倍数, 400X)25的 Ki67 指数作为细胞核染色的细胞百分比。

4. 对HER2的 SISH 分析

  1. 切口部分 (重复步骤 3.1)。
  2. 使用自动 immunostainer 对 HER2 执行 SISH。
    1. 放置在60° c 的偏析幻灯片分析10分钟。
    2. 启动 immunostainer 仪器和软件。
    3. 在 "主页" 视图中, 单击 "协议" 按钮, 然后单击 "创建/编辑协议"。
    4. 选择 "U 双电路" 程序修改基本模板。
    5. 标志 "烘干" 在箱子名单和设置温度在63° c 为20分钟。
    6. 标记 "细胞调理" 在盒子里的列表, 然后 "细胞调理 CC2", 并设定温度在86° c 和孵育时间在4分钟。
    7. 旗 CC2 温和 (周期 1), 标准 (周期 2), 并延长 (周期 3) 为8分钟, 12 分钟, 和8分钟分别。
    8. 在盒子列表中标记 "蛋白酶 3", 并将潜伏期设定在16分钟。
    9. 选择探头 HER2DNP 和 CHR17DIG, 并设置潜伏期在6小时。
    10. 设置洗涤在76° c 为8分钟。
    11. 设置 SISH multimer (32 分钟) 孵育时间。
    12. 设置银原 (CHRC) 孵育时间在4分钟。
    13. 设置红 multimer (红点挖 AP) 孵育时间在24分钟。
    14. 设置红色原 (红色的) 孵育时间在8分钟。
    15. 在方框列表中标记 "Counterstaining", 选择 "苏木素 II", 并将潜伏期设置为8分钟。
    16. 在方框列表中标记 "后 Counterstaining", 选择 "发蓝试剂", 并将潜伏期设置为4分钟。
    17. 重复步骤 3.3. 11-3. 3.15 (选择修改 U 双电路协议)。
    18. 打开覆盖试剂传送带的引擎盖, 放置洗涤和检测系统, 然后关闭引擎盖。
    19. 重复步骤从 3.3. 18-3. 3.21。
  3. HER2执行 SISH 分析: 如果HER2/CEP17 比率是≥2.0, 并且每个单元格的平均HER2复制数≥4.0 信号, 并且HER2/CEP17 比率为 < 2.0, 则将HER2基因放大率评估为正数。使用平均HER2复制号 < 4.0 信号/单元格3,24
    注: 类似于 IHC, 这种分析应分别在离散组织斑点的病理学家和经验的乳腺病理。

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Representative Results

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总的来说, 444 浸润性乳腺癌被纳入 15 TMAs 专门针对分析的优化。在抽样的2664点中, 2651 (99.5%) 代表了先前选定的区域, 因此被认为适于随后的分析。肿瘤的异质性是通过 IHC 和 SIH 的方法来确定的, 特别着重于肿瘤不同地形区 HER2-positive 无性系的异质分布。表 3描述了所分析案例的生物学特性, 重点介绍了不同 histotypes 中的 ER、PR、Ki67 和 HER2 状态。特别是, 18% 的病例被发现显示 HER2-positive 细胞在 > 10% 的肿瘤细胞, 因此匹配的特点 HER2 阳性评估。有趣的是, 这个值更接近于报告的 HER2-positive 乳腺癌发病率范围的低端。另一方面, HER2 状态在 HER2-positive 和 HER2-negative 乳腺癌的离散区域中是可变的 (图 3,表 4), 这进一步证明了乳腺癌是一种极端异质性疾病的概念。基因组水平。SISH 分析的失败率为 0.8%, 总数量为 2629/2651 点, 其中酚标记探针绑定到目标序列。

Figure 1
图 1: 在实现高吞吐量平台的基础阶段的表示, 用于分析大群乳腺癌患者的 HER2 异质性.(A) 选择要取样的区域应包括具有细胞学、结构或 IHC 异质性的所有区域的识别和突出显示。(B) 此过程中最关键的步骤之一是创建高质量的受体块, 因为即使是微小的裂纹也可以推断出随后的原位杂交分析的一致性。(C) 使用带有 1 mm 直径的数字引导机器人, 以构建基于 Kononen 技术的高收益率系统是很重要的。(D) 该项目的创建应从对该公司的规模和边界的定义开始。(E) 所有 IHC 和常规的分析都应该使用数字病理工具进行, 以便快速浏览。请单击此处查看此图的较大版本.

Figure 2
图 2: 平面为该协议实现的偏的表示。总数量的180斑点1毫米直径, 500 µm 分开, 允许最佳的原位杂交。高密度的 TMAs 在所有点的整体质量和反应均匀性方面提供非生产性的结果, 在单点基础上的故障率更高。注意网格顶部和中间左侧的 "方向" 点。请单击此处查看此图的较大版本.

Figure 3
图 3: 代表显微显示银色原位HER2-heterogeneous 乳腺癌的杂交分析.在这个例子中, 一个高级别浸润性乳腺癌的两个不同的斑点没有特殊类型 (BR_121) 显示不同的结果, 在HER2基因 (黑) 放大相比, 丝枚举探针 17 (红色)。特别是, 一个区域属于肿瘤核心和显示角7不规则染色模式是HER2放大 (A), 而从侵入前的一个斑点 (, 肿瘤边缘) 显示一个野生类型的HER2模式 (B)。缩放栏 = 50 µm (20 µm 在插入)。请单击此处查看此图的较大版本.

案例 ID 块 ID 区域 ID 组织 地形 形态 公关 Ki67 HER2 其他 IHC 功能
BR_121 A5 一个 正常 手术保证金
BR_121 A1 一个 nst 肿瘤核心 G2 CK7+
BR_121 A1 b nst 肿瘤核心 G3 CK7+/-
BR_121 A3 一个 nst 肿瘤核心 粘液基质 90 100 12 2 +
BR_121 A3 b nst 侵入前沿 100 100 35 2 +
BR_121 A4 一个 nst 侵入前沿 G3
BR_121 A3 c DCIS (EIC +) 毗邻侵入前线 高档 100 100 45 2 +

表 1: 研究中包含的一个案例的代表记录.本病例 (BR_121) 是一种无特殊类型与局灶性黏液间质的高级别浸润癌, 在病灶周围显示小管状成分, CK7 immunoexpression 的局部不规则丢失。免疫组织化学特征, 包括生物标志物报告, 是指在诊断时进行的分析。无特殊类型的侵袭性癌;DCIS, 导管癌原位;EIC +, 广泛的导管内成分;CK7, 角7。

标记 克隆 公司 稀释 抗原检索 抗体孵化 评分系统
SP1 rtu EZ 准备在72° c cc1 在95° c 为36分钟 16分钟 ASCO/CAP 准则23
公关 1E2 rtu EZ 准备在72° c cc1 在95° c 为36分钟 17分钟 ASCO/CAP 准则23
HER2 4B5 rtu EZ 准备在72° c cc1 在95° c 为36分钟 18分钟 ASCO/CAP 准则3
Ki67 30-9 rtu EZ 准备在72° c cc1 在95° c 为36分钟 12分钟 国际 Ki67 乳癌工作组建议25

表 2: 免疫组化分析所采用的抗体、克隆、稀释、抗原检索方法和评分系统的列表.雌激素受体;PR, 孕激素受体;RTU, 准备使用。

Histotype n (%) ER + (%) 公关 + (%) Ki67-low (%) Ki-67-high (%) HER2+ (%)
无特殊类型浸润性癌 344 (77.5) 301 (87.5) 257 (74.7) 85 (24.7) 259 (75.3) 71 (20.6)
浸润性小叶癌 53 (11.9) 53 (100.0) 44 (83.0) 36 (67.9) 17 (32.0) 4 (7.5)
浸润性癌, 混合型 9 (2.0) 8 (88.9) 6 (66.7) 0 (0.0) 9 (100.0) 1 (11.1)
管状癌 8 (1.8) 8 (100.0) 8 (100.0) 8 (100.0) 0 (0.0) 0 (0.0)
粘液癌 11 (2.4) 11 (100.0) 9 (81.8) 7 (63.6) 4 (36.4) 0 (0.0)
Micropapullary 癌 7 (1.6) 7 (100.0) 7 (100.0) 5 (71.4) 2 (28.6) 2 (28.6)
大汗 featueres 浸润癌 5 (1.1) 3 (60.0) 1 (20.0) 1 (20.0) 4 (80.0) 3 (60.0)
甲状腺癌 1 (0.2) 0 (0.0) 0 (0.0) 0 (0.0) 1 (100.0) 0 (0.0)
髓质癌 4 (0.9) 0 (0.0) 1 (25.0) 0 (0.0) 4 (100.0) 0 (0.0)
化生癌 2 (0.5) 0 (0.0) 0 (0.0) 0 (0.0) 2 (100.0) 0 (0.0)
444 391 (88.0) 333 (75.0) 142 (32.0) 302 (68.0) 81 (18.2)

表 3: 乳腺癌 histotypes、受体状态和 HER2 异质性状态.雌激素受体;PR, 孕激素受体;Ki67-low, Ki67 指数 < 18%;Ki67-high, Ki67 > 18%。

解释肿瘤斑点 HER2-positive 斑点 (%) 激素受体状态 HER2-heterogeneous 案例
6 5 (83) 积极 10
6 5 (83) 负面 1
6 4 (67) 积极 7
6 4 (67) 负面 1
6 2 (33) 负面 1
6 1 (17) 积极 1
5 3 (60) 积极 10
5 1 (20) 积极 2
4 3 (75) 积极 9
4 2 (50) 积极 8
4 1 (25) 负面 1
3 2 (67) 积极 5
3 1 (33) 积极 2
46 25 (54) 53 (93) 57

表 4: HER2 表达、激素受体状态和 HER2-heterogeneous 病例.在57例 HER2-heterogeneous 病例中, 4 例 (7%) 为 ER 阴性和 PR 阴性, 证实了评估 HER2 异质性的临床重要性。

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Discussion

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在这里, 我们详细的实验室策略, 以执行 SISH 分析的HER2基因及其相应的丝在高产 TMAs 异处理乳腺癌。这一方法具有成本效益, 可以在大多数实验室进行, 以研究HER2基因放大异质性的大群乳腺癌检索形式的病理档案。

由于 HER2 检测在乳腺癌中的临床重要性以及它的异质表达所带来的挑战, 我们开发了一个高通量测试协议来评估肿瘤的内部和间的HER2遗传异质性。分析的领域包括前侵入性和侵入性的组成部分, 根据具体的细胞学, 建筑, 和 IHC 的特点。

在本协议中, 有几个关键阶段需要谨慎管理。一个重要的步骤是选择感兴趣的区域。我们已经确定, 通过多学科方法对不同地形区域的诠释是确保最终分子分析质量的关键。特别是, 由病理学家和技术员进行的诊断性幻灯片的联合修订, 极大地增加了适当斑点的数量 (, 反映幻灯片上确定的区域的斑点), 并随后降低了故障率单点分析。然而, 几个肿瘤斑点可以失去后, 多个 IHC 和分析的序列切片。为了克服这一不便, 我们建议, 如果在所有可行的基础上组织的可用性, 构建 TMAs 一式两份或一式三份。此外, 我们强调了定义严格的实验室程序的重要性, 创造受体 FFPE 块的 TMAs。事实上, 我们已经观察到, 在偏微区的最小裂纹可能会从质量、重现性和反应的清晰度等方面推断出整个分析的结果。如果出现裂缝, 则应忽略供方区块的施工。然而, 应该承认, 即使在次优 TMAs 中, IHC 也可以进行, 而且在我们的经验中没有发现在这种分析过程中出现技术问题的证据。

尽管该协议是针对高收益乳房 TMAs 的HER2 SISH 分析而专门优化的, 但值得注意的是, 其他的分析, 如鱼和 IHC, 可以可靠地在几种组织类型中进行, 如前面所描述的14, 19,26。然而, 我们在此定义了理想的斑点数量和地形特征, 以确保高品质和重现性的 SISH 分析的HER2基因在乳腺癌标本。另一个重要的点是通过重塑标准的自动化 SISH 协议, 以匹配的特殊性, 多样本进行分析。事实上, 制造商的指南一般是对常规全断面的分子分析, 因此不能达到高标准的异加工组织样品, 如 TMAs 从档案 FFPE 块。为此, 我们提供了一步一步的描述的可靠的定制协议, SISH 分析这些问题的样本。

在乳腺癌的其他临床可操作分子生物标志物的异质分布方面, 探讨 HER2 表达和基因扩增的异质性是非常有益的。为此, 需要进一步的转化研究研究, 以探讨我们的方法的有效性, 其他临床相关的分子分析, 如基质辅助激光解吸/电离质谱成像 (MALDI-MSI)27。最近, MALDI-MSI 分析的 FFPE 组织的管理已经变得可行, 尽管具有挑战性。这种原位蛋白质组学技术允许在病理组织切片 (包括乳腺癌) 中可视化蛋白质和多肽的空间分布。

此协议有几个关键步骤, 可能会影响最终的分析。首先, 应特别注意HER2放大所依据的不同机制。例如, 17 号染色体 polysomy 是一种遗传失常, 可能发生在乳腺癌的11, 代表了增加的HER2复制号的一个众所周知的替代机制。这种情况, 虽然不频繁, 可能不仅影响癌症的生物学特征和病人管理, 而且对分析。其次, 它被描述了肿瘤内基因异质性也发生在一个单细胞水平, 并且不仅在不同的肿瘤区域。与全脸剖面相比, 此协议无法提高此特定条件的检测能力。此外, 重要的是要强调, 基于偏基的空间异质性研究有一定的内在局限性, 包括对整个部分缺乏全面的分析。然而, 这项研究应被认为是一个证明原则, 即使用标准实验室设备, 可以通过高通量和成本效益高的平台来评估HER2基因放大的异质性。进一步的研究分析 HER2-heterogeneous 病例的全断面, 结合尖端分子研究和患者的临床数据将需要验证该协议。

总之, 对异质 HER2 乳腺癌标本 HER2 状态的综合定位和对 HER2-negative 成分中潜在驾驶员遗传突变的调查, 应依赖于多肿瘤区的分析。这种分析将需要使用标准诊断设施的难以承受的费用和努力。此方法代表了一种可靠的工具, 可同时表征多组和异处理的乳腺癌中的HER2遗传异质性。

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Disclosures

作者没有利益冲突。

Acknowledgments

没有.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Surgipath Paraplast Leica Biosystems, Wetzlar, Germany, EU 39601006 Tissue embedding medium, 56 °C melting point
Eosin Y  1% water solution Bio Optica, Milan, Italy, EU 510002 Eosin yellowish, water-soluble
Carazzi’s hematoxylin Bio Optica, Milan, Italy, EU 506012 Alum hematoxylin ripened using potassium iodate
Diamond quality Laboindustria, Arzergrande, Italy, EU 33533 26x76 mm microscope slides
Leica CV Mount Leica Biosystems, Wetzlar, Germany, EU 14046430011 Mounting medium, with no monomers, based on polymers of butylmethacrylate in xylene
FLEX IHC microscope slides Agilent Technologies (Dako),  Santa Clara, CA, USA K8020 Coated microscope slides for adhesion of FFPE for use in IHC
BenchMark ULTRA Ventana medical system, Tucson, AZ, USA N750-BMKU-FS Slide staining system
CONFIRM anti-Estrogen Receptor (ER) (SP1) Rabbit Monoclonal Primary Antibody Ventana medical system, Tucson, AZ, USA 790-4324 Primary antibody, ready-to-use
CONFIRM anti-Progesterone Receptor (PR) (1E2) Rabbit Monoclonal Primary Antibody Ventana medical system, Tucson, AZ, USA 790-2223 Primary antibody, ready-to-use
CONFIRM anti-Ki-67 (30-9) Rabbit Monoclonal Primary Antibody Ventana medical system, Tucson, AZ, USA 790-4286 Primary antibody, ready-to-use
PATHWAY HER2 (4B5) Rabbit Monoclonal Primary Antibody Ventana medical system, Tucson, AZ, USA 790-4493 Primary antibody, ready-to-use
ultraView Universal DAB Detection Kit Ventana medical system, Tucson, AZ, USA 760-500 Indirect, biotin-free system for detecting mouse IgG, mouse IgM and rabbit primary antibodies
INFORM HER2 Dual ISH DNA Probe Cocktail Ventana medical system, Tucson, AZ, USA 780-4422 INFORM HER2 Dual ISH assay - Dual color in situ hybridization FDA approved automated assay for determining HER2 gene status in breast cancer patients 
ultraView Silver ISH DNP Detection Kit Ventana medical system, Tucson, AZ, USA 800-098
ultraView Red ISH DIG Detection Kit Ventana medical system, Tucson, AZ, USA 800-505
ISH Protease 3 Ventana medical system, Tucson, AZ, USA 780-4149 Used in the ISH process to remove protein that surrounds the target DNA sequences of interest
Hematoxylin Ventana medical system, Tucson, AZ, USA 760-2021 Modified Gill's hematoxylin counterstain reagent
Hematoxylin II Counterstaining Ventana medical system, Tucson, AZ, USA 790-2208 Modified Meyer's hematoxylin counterstain reagent
Bluing reagent Ventana medical system, Tucson, AZ, USA 760-2037 Aqueous solution of buffered lithium carbonate for bluing hematoxylin stained sections on glass slides
HybReady Ventana medical system, Tucson, AZ, USA 780-4409 Formamide-based buffer for ISH assays
EZ Prep (10x) Ventana medical system, Tucson, AZ, USA 950-102 Concentrate solution for paraffin removal from tissue samples during IHC and ISH reactions, and to dilute 1:10.
SSC Buffer (10X) Ventana medical system, Tucson, AZ, USA 950-110 Sodium Chloride Sodium Citrate buffer solution is used for stringency washes and to rinse slides between staining steps and provide a stable aqueous environment for the in situ hybridization reactions. Dilute 1:5.
ULTRA LCS Ventana medical system, Tucson, AZ, USA 650-210 Prediluted (ready-to-use) coverslip solution used as a barrier between the aqueous reagents and the air to prevent evaporation in the IHC and ISH reactions
Reaction Buffer (10x) Ventana medical system, Tucson, AZ, USA 950-300 Tris based buffer solution (pH 7.6 ± 0.2) to rinse slides between staining steps during IHC and ISH. Dilute 1:10.
ULTRA Cell Conditioning (ULTRA CC2) Ventana medical system, Tucson, AZ, USA 950-223 Pretreatment steps in the processing of tissue samples during IHC and ISH. Ready to use.
ULTRA Cell Conditioning (ULTRA CC1) Ventana medical system, Tucson, AZ, USA 950-224
ultraView Silver Wash II Ventana medical system, Tucson, AZ, USA 780-003 Ready-to-use solution to rinse slides between IHC and ISH staining steps
Microtome Leica Biosystems, Wetzlar, Germany, EU RM 2255 Automated rotary microtome
Multistainer Leica Biosystems, Wetzlar, Germany, EU ST 5020 Workstation for automated staining and coverslipping
Minicore 1 Alphelys, Plaisir, France, EU 00-MICO-1 Semi-automatic arrayer for TMA contruction with TMA Designer 2 embedded software
Aperio ScanScope CS2 Leica Biosystems, Wetzlar, Germany, EU K080254 Image capture device - digital pathology scanner
Tissue-Tek III Uni-Cassette Sakura Finetek Europe B.V 4135 Cassette
Tissue-Tek Paraform Standard Base Mold Sakura Finetek Europe B.V 7055 Stainless-Steel base metal mold

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References

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建立高通量筛选平台评估乳腺癌 HER2 基因扩增的异质性
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Ercoli, G., Lopez, G., Ciapponi, C., Corti, C., Despini, L., Gambini, D., Runza, L., Blundo, C., Sciarra, A., Fusco, N. Building Up a High-throughput Screening Platform to Assess the Heterogeneity of HER2 Gene Amplification in Breast Cancers. J. Vis. Exp. (130), e56686, doi:10.3791/56686 (2017).More

Ercoli, G., Lopez, G., Ciapponi, C., Corti, C., Despini, L., Gambini, D., Runza, L., Blundo, C., Sciarra, A., Fusco, N. Building Up a High-throughput Screening Platform to Assess the Heterogeneity of HER2 Gene Amplification in Breast Cancers. J. Vis. Exp. (130), e56686, doi:10.3791/56686 (2017).

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