Summary
Intracavernosal 압력 기록 (ICP)는 실험 동물의 발기 기능을 평가 하는 중요 한 방법입니다. 여기, 상세한 프로토콜 crura 음 경 catheterizing 하 고 다음 전기 쥐 동굴 신경을 자극 하 여 ICP의 기록 절차에 대 한 설명 했다.
Abstract
발기 부전 (ED) 달성 하거나 유지, 음 경의 발기 불능으로 정의 되 고이 유행 남성 성적 장애 되고있다. 설치류는 발기 기능의 생리/병 리 연구를 많은 연구에 의해 고용 됩니다. 설치류에서 발기 기능 intracavernosal 압력 (ICP)를 측정 하 여 평가할 수 있습니다. 실제로, ICP 동굴 같은 신경 (CNs)의 전기 자극에 따라 모니터링 수 있습니다. (평균 동맥 압력) 경 동맥의 동맥 압력은 ICP에 대 한 참조로 사용 됩니다. ICP 기록 프로토콜을 사용 하 여, 발기 기능의 많은 주요 매개 변수는 ICP 응답 곡선에서 측정할 수 있습니다. ICP 측정 apomorphine 유발 성 기 발기 테스트 보다 더 많은 정보를 제공 하 고 만드는이 방법은 발기 기능을 평가 하는 가장 인기 있는 한 코 퍼스 spongiosum 경의 telemetric 모니터링 보다 저렴. 그러나 성공적인 ICP 녹음 관심 세부 사항, 연습, 및 작업 방법 준수가 필요 쉽게 수행 APO 유도 하는 발기 기능 테스트에 비해. 이 작품에서는, 쥐에 기록 하는 ICP에 대 한 소개 절차를 효율적으로 보완 하기 위해 제공 됩니다.
Introduction
에 드 달성 또는 음 경 발기를 유지 하는 무 능력으로 정의 그리고 일반적인 남성의 성적 장애1되고있다. 실험 동물 사용 되 고 발기 기능2조사를 재현할 수 있는 모델을 제공 합니다. 오랜 시간에 대 한 몇 가지 큰 동물 모델 발기 기능3,,45조사에 대 한 고용 있다. 설치류는 다른 동물에 비해 상대적으로 작은, 그들은 또한 남성 발기 부전 때문에 몇 가지 장점6전시의 연구에 사용 됩니다. 첫째, 인간의 형태와 기능 성적 특성은 설치류에 지는. 둘째,에 드 연구에 사용 하는 더 큰 동물에 비해, 설치류는 더 경제적인 구입, 집, 및 유지. 셋째, 유전자 변형 쥐 모델 재현할 수 및 후속 행동으로 신경 생리학 연구에서 장점을 제공합니다. 따라서, 설치류는 남성 발기 부전의 연구에 사용 된 기본 동물 신속 하 게 되었다.
순수한 유전 배경 및 일관 된 문화 조건에서 혜택, 설치류 모델 일관 되 게 재현할 수 데이터5,6,,78제공. 발기 기능, apomorphine (APO)의 많은 측면에 관련 된 다 수 연구 중-유도 발기 응답 테스트 및 전기 자극 유발 ICP 응답 테스트는 안정적으로 발기를 반영 하는 가장 널리 사용된 방법 기능9,10,,1112. Heaton 연구진이 개발한 APO 유도 발기 기능 테스트 13, apomorphine 쥐의 발기와 최 elicits 현상을 이용 하는 바이오-분석 이다. 비 침범 성, 쉽고 안정적인 바이오-분석 결과 발기 기능을 평가 하기 위해,으로 APO 유도 발기 기능 테스트는 많은 연구에서 널리 이용 된다. 그러나,이 분석 결과 발기 나 발기 응답14와 관련 된 혈액의 흐름에 동적 변경 품질을 적절 하 게 반영 하지 않습니다. ICP 측정 퀸 란 외. 에 의해 처음 개발 되었다 15.이 방법에서는, 카 테 터는 조직 혈압을 측정 하는 경 동맥에 배치 되 고 다른 카 테 테 르는 ICP 기록 cru 코 퍼스 cavernosum에 삽입 됩니다. 전에 또는 기록, vasoactive 에이전트 및 주요 골반 신경 절 (MPG)의 전기 분야 자극 ICP 중 또는 CN 쥐14에 종종 받았다. 이 분석 결과 드에 대 한 치료와 의약품을 평가 하기 위한 신뢰할 수 있는 도구가 고 미래의6에서 중요 한 평가 방법으로 사용 될 가능성이.
쉽게 수행 APO 유도 하는 발기 기능 테스트에 비해, 성공적인 ICP 녹음 세부 사항, 연습, 및 작업 방법 준수 관심을 필요 합니다. 따라서, 여기, 우리는 ICP 녹화를 수행 하는 방법에 대 한 자세한 설명을 제공 합니다.
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Protocol
3 개월 및 18 개월 Sprague-Dawley 쥐 현재 연구에 사용 되었다. 모든 동물 관리 및 사용의 실험실 동물에 대 한 NIH 지침에 따라 처리 했다. 동물 주제와 관련 된 절차는 동물 고통 최소화 하는 노력으로 현지 기관 동물 관리 및 윤리 위원회에 의해 승인 되었다. 프로토콜 기관 동물 관리 및 사용 위원회 (IACUC) 난징 기술 대학 (난징, 중국)에 의해 승인 되었다.
쥐가 그들의 연령과 ICP 녹음 전에 APO 유도 발기 기능 테스트에서 예비 성능 두 그룹으로 분할 되었다: 젊은 정상 그룹 (YN 그룹)와 세 발기 부전 그룹 (AE 그룹)10.
1입니다. 수술 전 준비
- 수동으로 ICP 기록 (그림 1)에 대 한 바이 폴라 전극의 쌍을 확인 합니다. 약간 전극의 끝을 구 부 고 1-2 밀리미터 넓은, 그림 1A와 같이 두 전극 사이의 거리를 조정 합니다.
- 두 악어 클램프 (그림 1AB)를 사용 하 여 자극 전극 연결 합니다.
- 카 테 터 시스템 조립: 첫째, 튜빙, 3 방향 자 지를 피하 23 G 바늘을 연결한 다음 압력 트랜스듀서에는 자 지를 연결. 다음, 헤 파 린 염 분을 제공 하기 위해 자 지의 세 번째 끝에 10 mL 주사기를 연결 합니다.
- 헤 파 린 염 분 (200 U/mL)와 전체 시스템을 작성 후 누설 신중 하 게 확인 합니다. 그런 다음 주사기 채널 또는 압력 트랜스듀서 채널 (그림 1C)을 3 방향 자 지를 설정 합니다.
- 바늘 20 cm 나무 패드의 수준에 올려. 다음 녹화 시스템 20 cm H2o. 압력 보정 그 후, 녹화 시스템의 정확도 확인 하기 위해 바늘의 높이 이동 합니다. 보정을 반복 하 여 정확성을 확인 합니다.
- 수술 방, 동물 시설에서 쥐를 전송 하 고 적어도 30 분 동안 수술 실에 하도록 허용.
- 압력가 악기는 바로 수술 전에 70% 에탄올 뿌리
2. 수술 절차
- 체중 45 mg/kg의 복용량에 나트륨 pentobarbital의 복 주사와 쥐를 anesthetize 하 고 5-10 분 꼬집어 발가락 적절 한 anesthetization를 확인을 위해 기다립니다.
- 전기 면도기와 복 부와 목의 털을 면도 하 고 생리대에 그것의 뒤에 쥐를 놓습니다.
- 10 %povidone-요오드 솔루션 흠뻑 목화 공 뒤에 70% 에탄올 젖은 면봉으로 수술 영역을 닦으십시오. 또한, 밖으로 건조에서 눈을 방지 하기 위해 안과 연 고를 적용 합니다.
- 왼쪽된 경 동맥 catheterize
- 집게와 목의 피부를 파악 하 고 목 한가운데 가로 절 개. 근육 incise, 신중 하 게 왼쪽된 경 동맥을 노출 하 고 그릇의 5 mm 섹션을 분리.
- 신중 하 게 집게를 사용 하 여 미주 신경에서 경 동맥을 분리, 경 동맥, 아래 실크 봉합 사를 그릴 및 선박의 꼬리 끝에 느슨한 넥타이 넣어 다음 그릇의 두개골 끝에 다른 꽉 매듭 합니다.
- Caudally 혈액 흐름을 중지 하려면 봉합 위에 불독 클램프와 선박 클램프.
- 신중 하 게 microsurgical가 위, 선박에 절 개를 확인 하 고 마이크로 해 부 걸과 집게의 도움으로 심장 쪽으로 동맥 카 테 테 르 삽입.
- 그것을 확보 하기 위해 카 테 터 주변 느슨한 꼬리 합자를 고정 시킵니다. 혈액의 흐름을 복구 하는 불독 클램프를 제거 합니다.
-
CN을 분리 하 고 전극 배치
- 집게의 쌍을 가진 피부와 복 부의 근육을 들어올립니다. 해가 위로 중간 절 개를 만들기 위해 성 기에 더 낮은 복 부를 통해 잘라.
- 부드럽게 복 부 구멍의 위쪽 부분에 면봉으로 소장을 밀어.
- 집게의 쌍을 가진 방광을 잡고 복 부 구멍에서 방광 밖으로 잡아당깁니다. 전립선 요도의 복 부 부분에 있는의 복 부 돌출부를 노출 합니다.
- 전립선, 정액 소포, 전립선 등 엽 노출 vas deferens의 복 부 돌출부를 당겨. Vas deferens과 전립선의 접착의 포인트를 찾아.
- 전립선 및 vas deferens 사이의 공간을 구분 합니다. 신중 하 게 섬유질 캡슐, 후부 전립선 및 vas deferens의 접합 지점에 있는 노출. 다음 찾을 주요 골반 신경 절 (그림 2).
참고: 주요 골반 신경 절 및 동굴 같은 신경 전립선의 표면에서 볼 수 있습니다. - 메 마른 면봉으로 조심 스럽게 건조 CN 영역입니다. 조심 스럽게 분리 하 고 양극 전극으로 바로 동굴 신경 연결.
-
왼쪽된 Crura catheterize
- 작은 절 개를 성 기의 피부에 해가 위로 잘라내어 다음 신중 하 게 발가 벗기다 음 경 샤프트의 피부.
- 전기 성 기 근육 해 부. 치 골 뼈의 위 분 지를 찾아.
- Spongious 전구 커버 bulbospongiosus 근육을 노출 합니다.
- 곡선된 겸 자 사용 하 여 ischiocavernosus 근육에서 bulbospongiosus 근육을 나눕니다.
- 신중 하 게 곡선된 겸 자와 함께 ischiocavernosus 근육을 분리 하 고 노출 cru 코 퍼스 cavernosum의 흰색 tunica albuginea ischiocavernosus 근육을 잘라.
- Cru 코 퍼스 cavernosum의 해 부 방향에 따라 신중 하 게 흰색 tunica albuginea 통해 cru 코 퍼스 cavernosum에 바늘을 삽입 합니다.
참고: 이것은 성공적인 도관 법을 위한 중요 한 단계입니다. Heparinized 염 분의 작은 금액을 주입 할 수 있습니다, 그리고 약간의 penile 팽창 관찰 해야, 바늘 올바르게 삽입 된 경우. - 신중 하 게 바늘 놓고 어떤 바늘 또는 연결 튜브의 미끄럼 방지. 어떤 누설에 대 한 검사.
3. CN 자극
- 압력 신호 기록에 대 한 소프트웨어 프로그램을 열고 압력 신호 녹음을 시작 합니다.
- 자극의 매개 변수 설정: 15 헤르츠, 5 밀리초, 5 볼트, 펄스 폭 및 60 s 기간. 5 ms의 펄스 폭 15 Hz의 주파수에서 CN을 자극.
참고:는 ICP의 날카로운 상승 전기 자극을 적용 하는 동안 관찰할 수 있습니다. - Stimulations 30 분 휴식 간격을 허용 한다. 각 동물에 연속 자극의 최대 세 번 이다.
4입니다. 최종 절차
- 녹음 후 체중 150 mg/kg의 복용량에 pentobarbital 나트륨의 과다 주입 하 여 안락사를 관리 합니다. 그들의 동맥 압력을 확인 하 여 쥐의 죽음을 확인 합니다. 쥐를 제거 하 고 수술 도구를 청소.
5. 데이터 분석
- 저장 하 고 소프트웨어에서 데이터를 내보낼. 응답은 일반적으로 조직의 평균 동맥 압력 (지도) ICP의 비로 표현 됩니다. 피크 ICP/지도 비율 발기 기능을 평가 하기 위해 산출 되었다.
- 적어도 5 수영장 데이터 쥐, 및 통계 소프트웨어로 분석. 차이 간주 됩니다 통계적 때 p < 0.05, 스튜던트 t-검정을 사용 하 여.
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Representative Results
수많은 연구는 발기 부전 세에 남성 일반적인 문제가 되고있다. 그러나, 의료 치료는 노화 관련에 드16의 관리에 제한 됩니다. 노화와 관련 된에 드의 설치류 모델에서 많은 치료 세 쥐의 발기 기능에 테스트 합니다. 우리가 위에서 도입, ICP 녹음 테스트는 또한 발기 기능에 잠재적인 치료 또는 약물의 효과 계량 하는 귀중 한 실험 동물의 전체 인구에서에 드 동물을 구별 하 사용할 수 수 있습니다.
그림 3A에서 볼 수 있듯이 드 그룹 (에 드 세 쥐, AE, 18 개월)의 전형적인 ICP 응답 곡선 컨트롤 그룹의 곡선 (젊은 정상 쥐, YN, 3 개월) 보다 훨씬 낮은 했다. 일반적으로, 높은 ICP는 통계 분석을 위해 선택 되었다. 5 쥐에서 풀링된 데이터 보여주었다 ICP/지도 비율 AE 그룹에 ICP/지도의 비율을 계산 후 또한 감소 크게 그에 비해 제어 그룹 (그림 3B). 이러한 두 가지 주요 매개 변수, ICP, ICP, 고원 피크 게다가 detumescence 시간, 응답, 그리고 곡선 아래의 영역 모두 크게 감소 세에 드 쥐 (표 1). 이러한 ICP 녹음 데이터 발기 기능을 반영 하기 위해 양적 측정 방법을 제공 합니다.
그림 1: 수동으로 카 테 터, 바이 폴라 전극, 자극 및 신호 ICP 녹음 시스템을 기록 했다. 카 테 터와 전극 자극 및 신호 기록 시스템 장비에 연결 됩니다. 카 테 터 끝 압력 기록 왼쪽된 동맥 또는 cru 코 퍼스 cavernosum에 삽입 됩니다. 전극은 동굴 같은 신경 (CNs) 아래 배치 됩니다. (A) 전극의 끝은 약간 구 부 러. (B) 자극 및 신호 시스템 장비를 기록. (C)는 수동으로 카 테 터를 조립. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
그림 2: 주요 골반 신경 절 및 동굴 같은 신경의 해 부 위치. 그림 에서처럼 주요 골반 신경 절은 전립선의 측면 테두리에 위치 해 있습니다. 쥐에서 동굴 같은 신경은 주요 골반 신경 절에서 늘이는 뚜렷한 신경이 이다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
그림 3: 다르게 세 쥐의 대표적인 ICP 녹음. (A) 동굴 같은 신경 자극 하는 동안 ICP 변경의 표현입니다. 제어 그룹 (젊은 정상 쥐, YN, 3 개월 쥐); 에 드 그룹 (는 세 드 쥐, AE, 18 개월). ICP 응답 곡선 아래에 있는 막대는 전기 자극의 타이밍을 나타냅니다. (B) 다른 실험 그룹의 발기 기능 인덱스 (intracavernous 압력/평균 동맥 압력) 표시 됩니다. 적어도 5 쥐에서 데이터 평균 ±standard 편차;로 표시 됩니다. 차이 간주 됩니다 통계적 때 *p < 0.05, 스튜던트 t-검정을 사용 하 여. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
| 정상 영 (YN) | 세 발기 부전 (AE) | |
| (Mean±SD) | (Mean±SD) | |
| 기저 ICP | 22.3±3.7 (mmHg) | 21.9±5.2 (mmHg) |
| 피크 ICP | 172.8±7.6 (mmHg) | 105.4±4.9 (mmHg) * |
| 고원 ICP | 165.4±2.5 (mmHg) | 86.5±4.1 (mmHg) * * |
| 발기에 대기 시간 | 10.3±1.6 (s) | 15.1±2.3 (s) |
| detumescence 시간 | 46.7±2.6 (s) | 11.8±3.3 (s) * |
| 반응의 기간 | 107.2±3.7 (s) | 71.7±4.2 (s) * |
| 곡선 아래 면적 | 17436.9±736.4 | 6426±428.3 * * |
| 발기의 수 | 3±0.0 | 3±0.0 |
표 1: 젊고 세 발기 부전 쥐의 발기 기능 매개 변수. 기저 intracavernous 압력 (ICP), 피크 ICP, ICP, 발기, detumescence 시간, 반응, ICP 시간 응답 곡선 아래 면적의 기간 대기 시간 고원 그리고 30 분에서 관찰 발기 수 계산 및 평균 ±standard로 편차 (n = 5). 차이 간주 됩니다 통계적 때 *p < 0.05 또는 * *p < 0.01, 스튜던트 t-검정을 사용 하 여.
| 증상 문제 해결 | 가능한 원인 및 제안 |
| ICP 또는 지도의 압력 | 장비 문제: 장비 상태 확인 |
| 누설 문제: 튜브 확인, 연결이 그대로, 다는 것을 확인 후, 자 지를 확인, 그리고 적절 한 위치에 | |
| 전기 자극 후 낮은 압력 증가 | 부적절 하거나 아무 자극: CN에는 자극에서 전극의 연결을 확인, 전극의 위치 변경 |
| CN에 손상: contralateral CN을 자극 하려고 | |
| 누설: 삽입 사이트에서 누설 줄어는 ICP ICP 카 테 터의 삽입 사이트 확인 | |
| 출혈 | 출혈 사이트; 동맥 천공 실험을 종료. 번 식 ICP 삽입 사이트에 경우, 매우 까다로운, 아마도 불가능은 다시 펑크 |
표 2: ICP 기록 절차에 대 한 문제 해결. ICP 수술, 가능한 원인, 및 제안에 세 가지 일반적인 증상.
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Discussion
발기 기능의 직접 측정으로 ICP는 신뢰할 수 있는 방법14. 그것은 기저 ICP, ICP, 피크에 대 한 데이터의 수집 고원 ICP, 발기 및 detumescence 시간 시간, 응답 등의 기간에 대 한 수 있습니다. 이러한 직접 측정 된 매개 변수, 게다가 몇 가지 다른 인덱스 매개 변수는: (1) "T80", 시간 피크 ICP;의 80%에 도달 하 (2) "더 20", 시간 피크 ICP;의 20%로 감소 (3) "ΔT80", T80;에 (초당) 압력에 있는 증가의 속도 그리고 (4) "ΔD20", 감소의 속도 (초당) d 20에 압력. 이러한 매개 변수는 각 단계 및 질병의 영향을 반영 하 고 약14,17의 효능을 검사 수 있는 ICP 응답의 품질의 정량화에 대 한 수 있습니다. 이 ICP 녹음 방법에 드 동물 모델에서 널리 사용 됩니다. 이 프로토콜에서 우리는 젊고 나이 든에 드 쥐에 ICP 응답 비교. 약물을 통해 intracavernous 카 테 터의 필요한 경우 contralateral cru 코 퍼스 cavernosum17에 다른 intracavernous 카 테 터의 배치에 의해 할 수 있었다. 주입의 총 볼륨 0.1 mL 미만 이어야 한다. 체계적인 약국 복 또는 피하 주사를 통해 수행할 수 있습니다. 정 맥 행정은 필요한 경우에 바로 경 정 맥 간주 될 수 있습니다.
비록 ICP 수술은 약간 기술적으로 도전 하며 더 낮은 복 부 및 골반 장기의 해부학의 깊이 있는 이해, 시간과 노력 하나 수 마스터는 프로토콜. 카 테 터 및 전극 수동으로 실험에 의해 만들어진, 압력 변환기 확인 하 고 실험을 시작 하기 전에 모든 시간 보정 필요 합니다. 전극을 얇은 고 두 전극 사이의 거리 효율적으로 신경 자극을 충분히 작은 되어야 합니다. 손상을 방지 하기 위해 스트레칭 또는 다른 신경에 전극을 배치 하는 동안 중요 하다. 그것은 정확 하 게 슬라이딩 나 이탈 없이 왼쪽된 crura에 바늘을 삽입 하는 중요 한입니다. 3 일반적인 증상은 표 2, 일부 증상 발생으로 간주 될 수 있는에 나열 됩니다.
이 ICP 기록 방법은 또한 마우스 양도 합니다. 그럼에도 불구 하 고, 쥐의 시체는 쥐, 쥐에 있는 ICP 녹음을 어렵게 만드는 보다 작습니다. ICP 녹음 쥐에서 실시 되었다, 작은 크기의 피하 주사 바늘을 사용 될 수 있습니다.
ICP 녹음도 한계가 있으며 다른 방법을 고려 될 수 있습니다. 일반적으로, ICP 녹음 수술 마 취 동물에 수행 되 고 ICP의 경도 모니터링에 적합 하지 않습니다 단기 ICP 측정 후 동물 희생 됩니다. 직접 ICP 녹음 방법의 중요 한 개선은 프로토콜 Hedlund 외음에 잘 설명 되어 의식, 자유롭게 움직이는 쥐에 ICP 녹음을 수행입니다. 17 이 방법은 오랜 시간에 대 한 intracavernosal 압력을 기록 하는 기회를 제공 한다. 최근, telemetric 접근 의식, 자유롭게 움직이는 동물18,,1920에 적용을 포함 하도록 발전 되었습니다. Telemetric 방식은 전통적인 ICP 녹음에 많은 이점이, 비록 변환 하 고 변환 된 압력 신호 비싼 장비를 요구 한다. Catheterization 메서드를 극복, 아다치 외. 쥐21페니 스의 직경의 연속 측정 하 여 발기 응답을 검사 하는 방법을 설명 합니다. 이 방법에서는, 압 전 결정의 쌍 코 퍼스 cavernosum 음 경의 축에 배치 됩니다. 발기 응답을 평가 하기 위해 두 개의 매개 변수 정의: (1) "D-최대": 최대한 개발 penile 직경 측정; 중 (2) "T50%":에서 마 취 쥐에 최대 응답의 50% 회복에 대 한 최대 응답 시간. 이 프로토콜은 성 기의 직경의 변화 또한 충실 하 게 발기 응답;의 품질을 반영 또한, 조직 전체 측정 중 부상 되지 이다. 그러나, telemetric 접근 처럼이 sonomicrometry 메서드 변환 하 고 성 기의 직경 변화를 받을 특정 하 고 상대적으로 비싼 장비 또한 필요 합니다.
요약 하자면, ICP 기록, 상대적으로 편리 하 고, 정확 하 고 저렴 한 방법입니다. 우리는이 소개 ICP 메서드를 사용 하 여 및 병 리의 추가 사전 지식 및 발기의 생리학 수 믿습니다.
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Disclosures
저자 공개할 게 없다
Acknowledgments
이 작품은 중앙 대학 (020814380018, 020814380077), 중국 장학금 위원회 (CSC, No. 201606195024), 자연 과학 재단의 장쑤 성 (BK20160138), 그리고 프로젝트에 대 한 근본적인 연구 기금에 의해 지원 되었다 과학 및 기술 개발 재단, 난징 의학 대학 (2014NJMUZD053) 지원.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Animal | |||
| Rats | Strain: Sprague-Dawley Age: 2-3 month | ||
| Rats | Strain: Sprague-Dawley Age: 15-18 month | ||
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Reagents | |||
| Saline | Sigma-Aldrich, S7653 | dissolve 8.5 gram sodium chloride in distilled water | |
| Pentobarbital sodium solution | Sigma-Aldrich, P3761 | dissolve 1 gram in 100 ml saline | |
| Povidone-iodine | BTP Pharmaceutical Co. Limited | 10% (V/V) | |
| Ethanol | China National Pharmaceutical Group Corporation (SINOPHARM) | 70% (V/V) | |
| Heparin | Sigma-Aldrich, H3149 | dissolve 20000U heparin in 100 ml saline | |
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Materials | |||
| Hypodermic needle | Shandong Weigao Group Medical Polymer Co., Ltd. | 23G | |
| Syringe | Shandong Weigao Group Medical Polymer Co., Ltd | 10 ml | |
| Three-way stopcock | Chengdu Instrument factory | TSK 01 | |
| Electrode | Chengdu Instrument factory | JST-1 | |
| Catheter tube | Chengdu Instrument factory | PE-10, PE-50 | |
| Operating scissors | Shanghai operation equipment factory | J22010, J22020 | |
| Ophthalmic operating scissors | Shanghai operation equipment factory | Y00010, Y00020 | |
| Ophthalmic forceps | Shanghai operation equipment factory | JD1010, JD1020 | |
| MicroScissors | World Precision Instruments | WAA260 | |
| silk suture | Shandong Weigao Group Medical Polymer Co., Ltd. | 5-0 | |
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Equipment | |||
| Stimulator | Nanjing medease science and technology co. ltd (model 4C501H) | 15 Hz, 5 ms pulse, 5 V, 60 s duration and 5 minutes interval | |
| Multichannel signal collection processing system | Nanjing medease science and technology co. ltd (model 4C501H) | Blood pressure model | |
| Pressure transducer | Beijing Xin Hang Xing Ye Technology Trading Company Limited (model YP100) | 40KPa |
References
- NIH Consensus Conference. Impotence. NIH Consensus Development Panel on Impotence. JAMA. 270 (1), 83-90 (1993).
- Chung, E., De Young, L., Brock, G. B. Investigative models in erectile dysfunction: a state-of-the-art review of current animal models. J Sex Med. 8 (12), 3291-3305 (2011).
- Lue, T. F., Takamura, T., Schmidt, R. A. Hemodynamics of erection in the monkey. J Urol. 130 (6), 1237-1241 (1983).
- Carati, C. J., Creed, K. E., Keogh, E. J. Autonomic control of penile erection in the dog. J Physiol. 384, 525-538 (1987).
- Steers, W. D., Mallory, B., de Groat, W. C. Electrophysiological study of neural activity in penile nerve of the rat. Am J Physiol. 254 (6 Pt 2), R989-R1000 (1988).
- Kapoor, M. S., Khan, S. A., Gupta, S. K. Animal models of erectile dysfunction. J Pharmacol Toxicol Methods. 76, 43-54 (2015).
- Burnett, A. L., Lowenstein, C. J., Bredt, D. S. Nitric oxide: A physiologic mediator of penile erection. Science. 257 (5068), 401-403 (1992).
- Oh, T. Y., Kang, K. K., Ahn, B. O. Erectogenic effect of the selective phosphodiesterase type 5 inhibitor, DA-8159. Arch Pharm Res. 23 (5), 471-476 (2000).
- Ouyang, B., Sun, X., Han, D. Human urine-derived stem cells alone or genetically-modified with FGF2 Improve type 2 diabetic erectile dysfunction in a rat model. PLoS One. 9 (3), e92825 (2014).
- Pan, F., Xu, J., Zhang, Q. Identification and characterization of the MicroRNA profile in aging rats with erectile dysfunction. J Sex Med. 11 (7), 1646-1656 (2014).
- Cho, M. C., Park, K., Kim, S. W. Restoration of erectile function by suppression of corporal apoptosis, fibrosis and corporal veno-occlusive dysfunction with rho-kinase inhibitors in a rat model of cavernous nerve injury. J Urol. 193 (5), 1716-1723 (2015).
- Hannan, J. L., Matsui, H., Sopko, N. A. Caspase-3 dependent nitrergic neuronal apoptosis following cavernous nerve injury is mediated via RhoA and ROCK activation in major pelvic ganglion. Sci Rep. 6, 29416 (2016).
- Heaton, J. P., Varrin, S. J., Morales, A. The characterization of a bio-assay of erectile function in a rat model. J Urol. 145 (5), 1099-1102 (1991).
- Mehta, N., Sikka, S., Rajasekaran, M. Rat as an animal model for male erectile function evaluation in sexual medicine research. J Sex Med. 5 (6), 1278-1283 (2008).
- Quinlan, D. M., Nelson, R. J., Partin, A. W. The rat as a model for the study of penile erection. J Urol. 141 (3), 656-661 (1989).
- Albersen, M., Orabi, H., Lue, T. F. Evaluation and treatment of erectile dysfunction in the aging male: A mini-review. Gerontology. 58 (1), 3-14 (2012).
- Hedlund, P., Matsumoto, K., Andersson, K. -E. Animal Models of Erectile Dysfunction. Curr Prot Pharmacol. 29, 5.41.1-5.41.22 (2005).
- Giuliano, F., Bernabe, J., Rampin, O. Telemetric monitoring of intracavernous pressure in freely moving rats during copulation. J Urol. 152 (4), 1271-1274 (1994).
- Bernabe, J., Rampin, O., Giuliano, F. Intracavernous pressure changes during reflexive penile erections in the rat. Physiol Behav. 57 (5), 837-841 (1995).
- Bernabe, J., Rampin, O., Sachs, B. D. Intracavernous pressure during erection in rats: an integrative approach based on telemetric recording. Am J Physiol. 276 (2 Pt 2), R441-R449 (1999).
- Adachi, H., Kodama, K., Ishihara, H. Evaluation of erectile response by continuous measurement of penile diameter in rats. J Pharmacol Toxicol Methods. 41 (4), 147-152 (1999).
