Summary

Drosophila में न्यूरॉनी वृक्ष Arborization जटिलता का मात्रात्मक विश्लेषण

Published: January 07, 2019
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Summary

यह प्रोटोकॉल Drosophilaमें न्यूरॉन वृक्ष arborization जटिलता (NDAC) के मात्रात्मक विश्लेषण पर केंद्रित है, जिसका इस्तेमाल वृक्ष morphogenesis के अध्ययन के लिए किया जा सकता है ।

Abstract

Dendrites एक ंयूरॉन के शाखाई अनुमानों हैं, और वृक्ष आकृति विज्ञान तंत्रिका तंत्र के विकास के दौरान synaptic संगठन को दर्शाता है । Drosophila लार्वा न्यूरॉन वृक्ष arborization (डीए) तंत्रिका तंत्र के विकास में तंत्रिका morphogenesis और जीन समारोह के dendrites अध्ययन के लिए एक आदर्श मॉडल है. डीए न्यूरॉन्स की चार कक्षाएं हैं । चतुर्थ श्रेणी के एक शाखाकरण पैटर्न है कि लार्वा शरीर की दीवार के लगभग पूरे क्षेत्र को कवर के साथ सबसे जटिल है । हम पहले के प्रभाव की विशेषता है मुंह बंद करने के Drosophila ortholog पर SOX5 की कक्षा चतुर्थ न्यूरॉनी वृक्ष arborization जटिलता (NDAC) का उपयोग कर चार पैरामीटर: dendrites की लंबाई, dendrite कवरेज की सतह क्षेत्र, शाखाओं की कुल संख्या, और शाखाकरण संरचना । इस प्रोटोकॉल NDAC मात्रात्मक विश्लेषण के कार्यप्रवाह प्रस्तुत करता है, लार्वा विच्छेदन, फोकल माइक्रोस्कोपी से मिलकर, और छवि विश्लेषण ImageJ सॉफ्टवेयर का उपयोग कर प्रक्रियाओं । इसके अलावा दा ंयूरॉन विकास और उसके अंतर्निहित तंत्र में अंतर्दृष्टि और न्यूरॉन्स की समझ में सुधार होगा कार्य और स्नायविक और neurodevelopmental विकारों के बुनियादी कारणों के बारे में सुराग प्रदान करते हैं ।

Introduction

Dendrites, जो एक ंयूरॉन के शाखाई अनुमानों रहे हैं, क्षेत्र है कि ंयूरॉन संवेदी और अंय ंयूरॉंस से synaptic जानकारी शामिल कवर1,2। Dendrites synapse गठन के एक महत्वपूर्ण घटक है और synaptic आदानों को एकीकृत करने में एक महत्वपूर्ण भूमिका निभाते हैं, साथ ही साथ एक ंयूरॉन में विद्युत उत्तेजना का प्रचार । वृक्ष arborization (da) एक प्रक्रिया है जिसके द्वारा न्यूरॉन्स नए वृक्ष पेड़ और शाखाओं के रूप में नए synapses बनाने के लिए फार्म. इस तरह के शाखा घनत्व और समूहीकरण पैटर्न के रूप में दा, के विकास और आकृति विज्ञान, बहु कदम जैविक प्रक्रियाओं से परिणाम और उच्च ंयूरॉन समारोह के लिए संबंधित हैं । इस प्रोटोकॉल का लक्ष्य Drosophila में न्यूरॉन dendritric arborization जटिलता के मात्रात्मक विश्लेषण के लिए एक विधि प्रदान करना है .

dendrites की जटिलता synaptic प्रकार, कनेक्टिविटी, और भागीदार ंयूरॉंस से आदानों निर्धारित करता है । पैटर्न शाखाकरण और dendrites के घनत्व संकेत है कि वृक्ष क्षेत्र3,4पर एकाग्र प्रसंस्करण में शामिल हैं । Dendrites विकास में समायोजन के लिए लचीलापन है । उदाहरण के लिए, synaptic संकेतन विकासात्मक चरण के दौरान और परिपक्व तंत्रिका प्रणाली5में somatosensory ंयूरॉन में dendrite संगठन पर एक प्रभाव है । न्यूरॉन कनेक्टिविटी की स्थापना morphogenesis और dendrites की परिपक्वता पर निर्भर करता है । dendrites की कुरूपता बिगड़ा ंयूरॉन समारोह के साथ जुड़ा हुआ है । अध्ययनों से पता चला है कि दा न्यूरॉन morphogenesis की विषमता कई neurodegenerative रोगों के etiologies में योगदान दे सकती है, जिनमें अल्जाइमर रोग (AD), पार्किंसंस रोग (पीडी), Huntington की बीमारी (एचडी), और लो Gehrig की बीमारी/ पेशीशोषी पार्श्व स्केलेरोसिस (ALS),,. Synaptic परिवर्तन विज्ञापन के प्रारंभिक चरण में दिखाई देते हैं, संगीत समारोह में गिरावट और हानि के साथ ंयूरॉन7,8। हालांकि, इन neurodegenerative रोगों में रोगजनन के लिए कैसे dendrite विकृति योगदान के विशिष्ट मायावी रहता है ।

dendrites के विकास के जीन है कि नियामकों के एक जटिल नेटवर्क में सांकेतिक शब्दों में बदलना,9प्रोटीन के Wnt परिवार के रूप में,10, प्रतिलेखन कारकों, और सेल सतह रिसेप्टर्स11,12 पर लाइगैंडों द्वारा विनियमित है . Drosophila दा न्यूरॉन्स चार वर्गों (वर्ग मैं, द्वितीय III, iv) से मिलकर बनता है, जो कक्षा चतुर्थ दा न्यूरॉन्स सबसे जटिल बंटी पैटर्न है और बेहतर समझ के लिए एक शक्तिशाली प्रयोगात्मक प्रणाली के रूप में नियोजित किया गया है13morphogenesis, 14. प्रारंभिक morphogenesis के दौरान, कम से कम और/या RNAi मुंह बंद करने वर्ग चतुर्थ दा न्यूरॉन्स में जीन का परिणाम शाखाओं में बंटी पैटर्न में परिवर्तन और dendrite13छंटाई. यह ंयूरॉन वृक्ष arborization के मात्रात्मक विश्लेषण के लिए एक व्यावहारिक विधि विकसित करने के लिए महत्वपूर्ण है ।

हम पहले से पता चला है कि मुंह बंद करने के Drosophila ortholog के SOX5, Sox102F, कम से कम dendrites के नेतृत्व में डा न्यूरॉन्स और कक्षा चतुर्थ दा न्यूरॉन्स में कमी जटिलता15. यहां, हम Drosophilaमें ंयूरॉन वृक्ष arborization जटिलता (NDAC) के लिए मात्रात्मक विश्लेषण की प्रक्रिया प्रस्तुत करते हैं । इस प्रोटोकॉल, पिछले वर्णित पद्धति से अनुकूलित, एक संक्षिप्त विधि प्रदान करता है परख के विकास के लिए संवेदी ंयूरॉंस । यह मजबूत छवि लेबलिंग और तीसरी instar लार्वा शरीर की दीवार16,17,18,19में दा ंयूरॉन दिखाता है । वीवो मेंNDAC और विकासात्मक मतभेदों की जांच की चाहत रखने वाले शोधकर्ताओं के लिए यह एक बहुमूल्य प्रोटोकॉल है ।

Protocol

1. प्रायोगिक तैयारी निम्नलिखित रिएजेंट तैयार करें: Dulbecco के फास्फेट बफर खारा (पंजाब); ट्राइटन X-१००; ०.२% PBST (पंजाब + ०.२% ट्राइटन X-१००); ३२% paraformaldehyde (पीएफए), उपयोग करने से पहले 4% में पतला; सिलिकॉन elastomer बेस और इलाज एज?…

Representative Results

दा न्यूरॉन्स के dendrites को सह-एक्सप्रेस GFP (यूएएस-GFP; ppk-GAL4) में दा तंत्रिका सोमा और वृक्ष arbors फॉर GFP प्रतिदीप्ति इमेजिंग एनालिसिस के लेबल थे. दा ंयूरॉन dendrites की आकृति विज्ञान एक औंधा फोकल माइक्रोस्कोप (<st…

Discussion

Dendrites कि अंदर आना एपिडर्मिस न्यूरॉन्स के इनपुट क्षेत्रों रहे हैं, और उनके morphologies कैसे जानकारी प्राप्त की है और व्यक्तिगत ंयूरॉंस द्वारा संसाधित है निर्धारित करते हैं । विकास dendrite आकृति विज्ञान dendrite संगठन के…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

हम इमेजिंग तकनीकी सहायता के लिए विलियम ए इयम् शुक्रिया अदा करना चाहूंगा । यह काम चिकित्सा अल्जाइमर कोष द्वारा समर्थित किया गया था [to r. e. t], राष्ट्रीय स्वास्थ्य संस्थान [R01AG014713 और R01MH60009 को आर. ई. टी.; R03AR063271 और R15EB019704 को अल], और राष्ट्रीय विज्ञान फाउण्डेशन [NSF1455613 to अल] ।

Materials

Phosphate buffered saline(PBS) Gibco Life Sciences 10010-023
TritonX-100 Fisher Scientific 9002-93-1
Paraformaldehyde(PFA) Electron Microscopy Sciences 15714-S
Sylgard 184 silicone elastomer base and curing agent Dow Corning Corportation 3097366-0516;3097358-1004
ProLong Gold Antifade Mountant Thermo Fisher Scientific P36931
Fingernail polish  CVS 72180
Stereo microscope Nikon SMZ800
Confocal microscope Nikon Eclipse Ti-E
Petri dish Falcon 353001
Forceps Dumont 11255-20
Scissors  Roboz Surgical Instrument Co RS-5611
Insect Pins  Roboz Surgical Instrument Co RS-6082-25
Microscope slides and cover slips Fisher Scientific 15-188-52

References

  1. Wassle, H., Boycott, B. B. Functional architecture of the mammalian retina. Physiol Rev. 71 (2), 447-480 (1991).
  2. MacNeil, M. A., Masland, R. H. Extreme diversity among amacrine cells: implications for function. Neuron. 20 (5), 971-982 (1998).
  3. Losonczy, A., Makara, J. K., Magee, J. C. Compartmentalized dendritic plasticity and input feature storage in neurons. Nature. 452 (7186), 436-441 (2008).
  4. Spruston, N. Pyramidal neurons: dendritic structure and synaptic integration. Nat Rev Neurosci. 9 (3), 206-221 (2008).
  5. Jaworski, J., et al. Dynamic microtubules regulate dendritic spine morphology and synaptic plasticity. Neuron. 61 (1), 85-100 (2009).
  6. Kweon, J. H., Kim, S., Lee, S. B. The cellular basis of dendrite pathology in neurodegenerative diseases. BMB Rep. 50 (1), 5-11 (2016).
  7. Baloyannis, S. J. Dendritic pathology in Alzheimer’s disease. J Neurol Sci. 283 (1-2), 153-157 (2009).
  8. Masliah, E., Terry, R. D., Alford, M., DeTeresa, R., Hansen, L. A. Cortical and subcortical patterns of synaptophysinlike immunoreactivity in Alzheimer’s disease. Am J Pathol. 138 (1), 235-246 (1991).
  9. Wayman, G. A., et al. Activity-dependent dendritic arborization mediated by CaM-kinase I activation and enhanced CREB-dependent transcription of Wnt-2. Neuron. 50 (6), 897-909 (2006).
  10. Rosso, S. B., Sussman, D., Wynshaw-Boris, A., Salinas, P. C. Wnt signaling through Dishevelled, Rac and JNK regulates dendritic development. Nat Neurosci. 8 (1), 34-42 (2005).
  11. Grueber, W. B., Jan, L. Y., Jan, Y. N. Different levels of the homeodomain protein cut regulate distinct dendrite branching patterns of Drosophila multidendritic neurons. Cell. 112 (6), 805-818 (2003).
  12. Sugimura, K., Satoh, D., Estes, P., Crews, S., Uemura, T. Development of morphological diversity of dendrites in Drosophila by the BTB-zinc finger protein abrupt. Neuron. 43 (6), 809-822 (2004).
  13. Jan, Y. N., Jan, L. Y. Branching out: mechanisms of dendritic arborization. Nat Rev Neurosci. 11 (5), 316-328 (2010).
  14. Sears, J. C., Broihier, H. T. FoxO regulates microtubule dynamics and polarity to promote dendrite branching in Drosophila sensory neurons. Dev Biol. 418 (1), 40-54 (2016).
  15. Li, A., et al. Silencing of the Drosophila ortholog of SOX5 leads to abnormal neuronal development and behavioral impairment. Hum Mol Genet. 26 (8), 1472-1482 (2017).
  16. Misra, M., et al. A Genome-Wide Screen for Dendritically Localized RNAs Identifies Genes Required for Dendrite Morphogenesis. G3 (Bethesda). 6 (8), 2397-2405 (2016).
  17. Emoto, K., et al. Control of dendritic branching and tiling by the Tricornered-kinase/Furry signaling pathway in Drosophila sensory neurons. Cell. 119 (2), 245-256 (2004).
  18. Olesnicky, E. C., et al. Extensive use of RNA-binding proteins in Drosophila sensory neuron dendrite morphogenesis. G3 (Bethesda). 4 (2), 297-306 (2014).
  19. Parrish, J. Z., Xu, P., Kim, C. C., Jan, L. Y., Jan, Y. N. The microRNA bantam functions in epithelial cells to regulate scaling growth of dendrite arbors in drosophila sensory neurons. Neuron. 63 (6), 788-802 (2009).
  20. Schindelin, J., et al. Fiji: an open-source platform for biological-image analysis. Nat Methods. 9 (7), 676-682 (2012).
  21. Corty, M. M., Matthews, B. J., Grueber, W. B. Molecules and mechanisms of dendrite development in Drosophila. Development. 136 (7), 1049-1061 (2009).
  22. Jinushi-Nakao, S., et al. Knot/Collier and cut control different aspects of dendrite cytoskeleton and synergize to define final arbor shape. Neuron. 56 (6), 963-978 (2007).
  23. Crozatier, M., Vincent, A. Control of multidendritic neuron differentiation in Drosophila: the role of Collier. Dev Biol. 315 (1), 232-242 (2008).
  24. Copf, T. Importance of gene dosage in controlling dendritic arbor formation during development. Eur J Neurosci. 42 (6), 2234-2249 (2015).
  25. Rosso, S. B., Inestrosa, N. C. WNT signaling in neuronal maturation and synaptogenesis. Front Cell Neurosci. 7, 103 (2013).
  26. Engel, T., Hernandez, F., Avila, J., Lucas, J. J. Full reversal of Alzheimer’s disease-like phenotype in a mouse model with conditional overexpression of glycogen synthase kinase-3. J Neurosci. 26 (19), 5083-5090 (2006).
  27. Longair, M. H., Baker, D. A., Armstrong, J. D. Simple Neurite Tracer: open source software for reconstruction, visualization and analysis of neuronal processes. Bioinformatics. 27 (17), 2453-2454 (2011).
  28. Pool, M., Thiemann, J., Bar-Or, A., Fournier, A. E. NeuriteTracer: a novel ImageJ plugin for automated quantification of neurite outgrowth. J Neurosci Methods. 168 (1), 134-139 (2008).

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Cite This Article
Wang, S., Tanzi, R. E., Li, A. Quantitative Analysis of Neuronal Dendritic Arborization Complexity in Drosophila. J. Vis. Exp. (143), e57139, doi:10.3791/57139 (2019).

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