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Bioengineering

Nanosensori per rilevare attività della proteasi In Vivo per la diagnostica non invasiva

Published: July 16, 2018 doi: 10.3791/57937
Automatic Translation
1, 1, 1,2,3,4,5
1Wallace H. Coulter Department of Biomedical Engineering, Georgia Tech College of Engineering and Emory School of Medicine, 2Parker H. Petit Institute of Bioengineering and Bioscience, 3Institute for Electronics and Nanotechnology, Georgia Tech, 4Integrated Cancer Research Center, Georgia Tech, 5The Georgia Immunoengineering Consortium, Emory University and Georgia Tech

Summary

Proteasi sono strettamente regolamentati enzimi coinvolti in processi biologici fondamentali e dysregulated proteasi attività unità progressione di malattie complesse come il cancro. Obiettivo di questo metodo consiste nel creare nanosensori che misurano proteasi attività in vivo producendo un segnale di fenditura che è rilevabile dall'urina di host e discrimina la malattia.

Abstract

Proteasi sono enzimi multifunzionali che si specializzano nell'idrolisi di legami peptidici e controllano ampi processi biologici, compreso l'omeostasi e Allostasi. Inoltre, l'attività della proteasi dysregulated unità patogenesi ed è un biomarcatore funzionale di malattie come il cancro; Pertanto, la capacità di rilevare attività della proteasi in vivo può fornire informazioni clinicamente rilevanti per la diagnostica biomedica. L'obiettivo del presente protocollo è quello di creare nanosensori sonda per attività della proteasi in vivo producendo un segnale quantificabile nelle urine. Queste proteasi nanosensori costituiti da due componenti: una nanoparticella e substrato. Le funzioni di nanoparticelle per aumentare la consegna di Half-Life e substrato di circolazione malattia nei siti di destinazione. Il substrato è una sequenza di brevi peptidi (6-8 AA), che è progettata per essere specifici di una proteasi di destinazione o un gruppo di proteasi. Il substrato è coniugato alla superficie della nanoparticella e viene terminato da un giornalista, ad esempio un marker fluorescente, per il rilevamento. Come proteasi dysregulated fendono il substrato peptide, il reporter viene filtrato in urina per quantificazione come biomarcatore di attività della proteasi. Qui descriviamo la costruzione di un nanosensore per proteinasi metallica della tabella 9 (MMP9), che è associato con la progressione del tumore e metastasi, per la rilevazione di cancro colorettale in un modello murino.

Introduction

Proteasi sono enzimi multifunzionali che si specializzano nell'idrolisi di legami peptidici e hanno il controllo significativo rispetto a molti processi biologici, compreso l'omeostasi, Allostasi e malattia1. Uno stato alterato di attività della proteasi è stato correlato ad una varietà di malattie, compreso cancro e la malattia cardiovascolare, rendendo i candidati attraenti di proteasi per sviluppo in biomarker clinici2,3. Inoltre, l'attività della proteasi è funzionalmente collegati a distinte pathogeneses, gli esiti dei pazienti e la prognosi di malattia4. In generale, biosensori sono state sviluppate per rilevare vari fenomeni biologici e malattie, quali cancro, malattie neurodegenerative e trasferimento di elettroni elabora5,6,7,8 , 9. più specificamente, sensori basati su substrato della proteasi sono stati sviluppati per rilevare l'attività della proteasi e includono sonde fluorogenic per diagnostica per immagini10 e isotopicamente etichettati substrati del peptide per in vitro rilevamento di spettrometria di massa11. Inoltre, sonde basate su attività sono state sviluppate, che contengono regioni di substrato-come che legano o modificare la destinazione della proteasi12. Con questo metodo, la proteasi di destinazione è irreversibilmente inibita quando viene modificato il sito attivo e analisi richiedono la raccolta di tessuto, che limita le applicazioni in vivo . Tuttavia, è importante rilevare proteasi attività in vivo, perché il regolamento di attività della proteasi è fortemente dipendente dal contesto di altre attività biologiche quali la presenza di inibitori endogeni.

L'obiettivo di questo lavoro è di descrivere la formulazione dei nanosensori basati su attività che rilevano attività della proteasi in vivo producendo un segnale misurabile nelle urine. Questa piattaforma è utilizzata come una diagnostica non invasiva per discriminare complesse malattie come il cancro utilizzando l'attività della proteasi dysregulated come biomarcatore funzionale. La nostra piattaforma nanosensore è costituito da nanoparticelle di ossido di ferro (IONP) coniugate a substrati di proteasi. Questi substrati vengono terminati da un reporter fluorescente che viene rilasciato quando proteasi fendono il substrato. Questi IONPs circolare in vivo, siti di malattia si localizzano ed esporre substrati alle proteasi attive di malattia-collegati. Dopo la scissione, reporter fluorescenti vengono rilasciati e, grazie alle loro piccole dimensioni, vengono filtrati in urina, mentre substrati ApoAlert sulla IONP rimangono nel corpo. Pertanto, un aumento di attività della proteasi in vivo si tradurrà in concentrazioni più elevate di reporter nelle urine (Figura 1). Poiché la nostra piattaforma è un test delle urine, nessuna piattaforma di imaging è obbligatorio e segnali diagnostici sono arricchiti in urina.

Questa piattaforma può essere progettata per rilevare una varietà di malattie compreso il cancro, fibrosi e trombosi13,14. Qui descriviamo il design dei nanosensori per rilevare le elevazioni in Matrix metallopeptidase 9 (MMP9) attività come biomarcatore di cancro colorettale. Il cancro colorettale è la seconda causa principale di morte per cancro negli Stati Uniti, con circa 136.800 nuovi casi e 50.300 morti nel 2014 solo15. Le cellule del tumore del colon-retto producono MMP9, che ha dimostrato di guidare la progressione maligna, la degradazione della matrice, così come metastasi16. Inoltre, abbiamo identificato un substrato adatto peptide (PLGVRGK) per MMP9 dalla letteratura17. Questa piattaforma può essere utilizzata per la diagnosi precoce del cancro e diagnostica point-of-care basso costo13,14,18,19,20,21.

Figure 1
Figura 1: schematico di nanosensori attività In vivo. Nanosensori circolano attraverso il corpo e si localizzano siti di malattia. Quindi, correlati alla malattia proteasi fendono substrati del peptide presentati da IONPs. Le dimensioni dei frammenti fenduti consente la clearance renale, causando loro di localizzare nelle urine. Dopo che l'animale urina, questi frammenti peptidici possono essere analizzati dalla loro molecola reporter. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

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Protocol

È necessario effettuare i seguenti esperimenti animali istituzionale approvazione istituzionale Animal Care ed uso Committee (IACUC) alla istituzione del ricercatore. Inoltre, strutture di standard di cura degli animali (ad es., alloggiamento chambers, cappe animale sterile, surrenalectomia alloggiamenti per amputate e CO2 alloggiamenti per euthanization etico endpoint) sono necessarie per svolgere correttamente queste esperimenti. Speciale formazione e assistenza con queste strutture può essere forniti da laboratorio di ricerca fisiologica (PRL) alla istituzione di uno. Tutto il lavoro animale è stato approvato dal IACUC al Georgia Tech (protocollo: A14100).

1. sintesi di nanoparticelle (IONP) di ossido di ferro

Nota: Sicurezza: l'intera sintesi di nanoparticelle di ossido di ferro devono essere effettuate utilizzando dispositivi di protezione individuale e sotto un prodotto chimico cappa aspirante.

  1. In una provetta conica da 15 mL, chill 1 mL di idrossido di ammonio di 30% in un secchio di ghiaccio per 30 min.
  2. Lavare un matraccio di Erlenmeyer con acqua deionizzata da 250 mL e aggiungere 10 mL di acqua distillata doppia (ddH2O). Immergere l'esterno del pallone in un bagno di ghiaccio che riposa su una piastra stir/calore. Utilizzare una pipetta di plastica per gas2 flusso N nei ddH2O nel pallone. Bolla con N2 a deoxygenate per 15 minuti.
  3. Pesare µmol 224 (4,5 grammi) di destrano (peso molecolare (MW) = 20 kDa) in una provetta conica da 50 mL. Tale che il volume finale della miscela, compreso il destrano, è di 20 mL, aggiungere H2O. Vortice vigorosamente per sciogliere il destrano.
  4. Pesare 290 µmol (78,5 grammi) di ferro (III) cloruro esaidrato, aggiungere alla soluzione del dextrano e vortex per sciogliere.
  5. Filtrare la soluzione attraverso un filtro da 0,2 µm.
  6. Trasferire 1 mL refrigerati di idrossido di ammonio in 9 mL di acqua deossigenata. Tornare a 4 ° C.
  7. Pesare µmol 367 (73,0 grammi) di ferro (II) cloruro tetraidrato, sciogliere in 1 mL di ossigeno-libero ddH2O e filtrare attraverso un filtro da 0,2 µm.
  8. Trasferire la soluzione di dextran-iron(III) nella beuta da 250 mL e deoxygenate con N2 per 15 minuti sul ghiaccio. Mescolare con un ancoretta magnetica di filatura a 1600 giri/min.
  9. Per creare un'atmosfera di azoto omogenea, tappo la beuta con un setto di gomma. Puntura del setto con un 18 ago a flusso N2 del manometro nel pallone. Inserire un ago 18 calibro separato come una presa di flusso.
  10. Aggiungere alla soluzione di dextran-iron(III) 467 µ l della soluzione di ferro (II) con una siringa da 1 mL, mescolando con un ancoretta magnetica a 1600 giri/min. Questo rapporto di ferro (II) di ferro (III) provoca una reazione equilibrata che produrrà magnetite o Fe3O4.
  11. Aggiungere che il refrigerate diluire idrossido di ammonio goccia a goccia nella soluzione del dextrano del ferro (II) - ferro (III) - per avviare il processo di nucleazione21. Assicurarsi che ogni goccia mescola bene prima di cadere in un altro. Finire la reazione dopo l'aggiunta di 1-2 mL di idrossido di ammonio.
  12. Arrestare il flusso di N2 e rimuovere il setto di gomma. Il bagno di ghiaccio di rimuovere e sostituire con una vasca di acqua calda, pur continuando a mescolare la soluzione. Assicurarsi che la temperatura della soluzione raggiunge i 75 ° C ed incubare per 75 minuti.
  13. Togliere il matraccio dalla piastra calda mescolare e doppiamente filtrare la soluzione attraverso 0,2 µm quindi 0,1 µm filtri per rimuovere le particelle grossolane.
  14. Cambio di buffer le particelle in ddH2O, utilizzando il peso molecolare di 100 kDa tagliate con concentratori (m.w.c.o.) per rimuovere l'eccesso destrano dalla soluzione, che dovrebbe essere molto viscosa. Sostituire i filtri, se il flusso attraverso rimane oscuro anche dopo 2-3 giri, che indica che il filtro potrebbe essersi rotto.
    1. Nel buffer di scambio con filtri spin, centrifugare a 4 ° C a 4800 X g per 15 minuti, scartare il flusso continuo e aggiungere nuovo buffer alla soluzione IONP. Ripetere 3 - 5 volte.
  15. Determinare la concentrazione delle nanoparticelle utilizzando un lettore di spettrofotometro/piastra. Prendere misure di assorbanza a 400 nm e uso l'assorbività molare di IONP a questa lunghezza d'onda (ε = 2.07 x 106 cm-1 M-1) per determinare la concentrazione di particelle IO.
  16. Risospendere il IONPs a 10 mg/mL in ddH2O (volume totale è solitamente ~ 3 mL) e assicurarsi di utilizzare tubi in polipropilene per questo passaggio per compatibilità chimica. Aggiungere 1,6 volumi di 5 M NaOH, quindi aggiungere 0,65 volumi di Epicloridrina. Rigorosamente mescolare su un agitatore per piastre a temperatura ambiente per 12 ore per crosslink destrano.
  17. Utilizzare una siringa da 20 mL con un ago calibro 18 per trasferire la soluzione IONP nella membrana di dialisi di m.w.c.o. di 50 kDa. Posizionare la membrana di dialisi in 4L ddH2O e sostituire H2O un paio di volte (ogni 2-3 ore). Incubare per una notte.
  18. Misurare la concentrazione e portare IONPs a 5 mg/mL (Vedi punto 1.15). Aggiungere idrossido di ammonio per raggiungere il 20% (v/v) ed agitare a temperatura ambiente per > 12 ore per laminato con la superficie del IONPs. Cambio di buffer utilizzando 30 kDa m.w.c.o. filtri (Vedi 1.14).
  19. Regolare il volume fino a 2,5-3,5 mL prima purificazione finale di Fast Protein Liquid Chromatography (FPLC; Vedi Tabella materiali per colonna di gel filtrazione).
  20. Utilizzare diffusione dinamica della luce (DLS) per determinare il raggio idrodinamico di IONPs (intervallo previsto 10-100 nm, dimensione media 40-50 nm). A tale scopo aliquotare 1 mL del campione diluito IONP in una cuvetta: 100x, posizionare in macchina e utilizzare il software del produttore per prendere la misura.
    Nota: La popolazione totale di IONPs sarà tra 10 e 100 nm mediante misure di liste di distribuzione, ma la maggior parte della popolazione è intorno al diametro medio, che vanno da 40-50 nm. Se si vuole limitare la gamma di dimensioni, si può usare ulteriormente cromatografia di esclusione di formato per isolare frazioni con diametri diversi. IONPs deve essere conservato a 4 ° C.

2. peptide Design, coniugazione IONP, e In Vitro di convalida

  1. Sintetizzare un substrato peptide (ad es., da una struttura di nucleo o commercialmente) per una proteasi di destinazione con un reporter fluorescente del N-terminale come ad esempio isotiocianato di fluorescina (FITC) e un residuo di cisteina terminale C per permettere l'aggancio del tiolo-mediata.
    Nota: Nel caso di questo studio per MMP9, il peptide utilizzato era FITC-PLGVRGK-C, con kgatto/km ~ 2.0 x 105 M-1s-1.
  2. Aliquota 0,5 mg di IONP (a 1 mg/mL) e lo scambio di buffer nel buffer di accoppiamento (50mm borato di sodio con 1 mM EDTA, pH = 8,5) utilizzando un giro di m.w.c.o. di kDa 10 filtro (Vedi punto 1.14).
  3. Sciogliere Succinimidyl iodoacetato (SIA) in dimetilformammide (DMF) per raggiungere una concentrazione di ~ 30 mg/mL e aggiungere SIA IONP in un rapporto di mole di 500 SIA:IONP.
    Nota: SIA è un eterobifunzionali Croce del linker che media l'accoppiamento delle ammine su IONPs ai gruppi solfidrilici sul substrato del peptide.
  4. Incubare per 1-2 ore a temperatura ambiente al buio. Se lasciato durante la notte, incubare a 4 ° C.
  5. Buffer di exchange utilizzando un filtro di spin m.w.c.o. 10 kDa in tampone di accoppiamento per rimuovere SIA non reagito (Vedi punto 1.14).
  6. Portare la soluzione di prodotto finale a 1 mg/mL (0,5 mL di soluzione). Mescolare il peptide di interesse con un rapporto molare di 90:1 (peptide: IONP) con 20 kDa con terminazione del tiolo polietilenglicole (PEG) con un rapporto molare di 20:1 (PEG: IONP). Mescolare questa soluzione peptide-PEG con IONP.
  7. Incubare per una notte a temperatura ambiente su un agitatore per piastre sulla velocità più alta, copertura tubi in carta stagnola per evitare che photobleaching di molecole fluorescenti.
  8. Aggiungere L-cisteina in un rapporto molare di 500: 1 (C:IONP) per neutralizzare eventuali molecole SIA non reagite. Incubare per 1 ora a 25 ° C in un agitatore a velocità massima a temperatura ambiente.
  9. Purificare tramite FPLC (Vedi 1.1.19). Utilizzare uno spettrofotometro per misurare l'assorbanza della soluzione del campione e calcolare il rapporto di Peptide: IONP secondo le seguenti. Dopo la purificazione, conservare il prodotto a 1 mg/mL a 4 ° C in PBS.
    1. Utilizzare uno spettrofotometro per misurare l'assorbanza della soluzione del campione a 400 nm (uncampione, 400) e la lunghezza d'onda di massima assorbenza per il fluoroforo utilizzato, che è 488 nm per FITC (uncampione, 488). Misurare l'assorbanza di una soluzione IONP di ammina stock presso la stesse due lunghezze d'onda (400 nm e 488 nm), che sono rappresentati rispettivamente come unNP, 400 e unNP, 488.
    2. Utilizzare le equazioni 1 e 2 per calcolare il normalizzato A400 e un valori di488 .
      Equation 1Equazione 1
      Equation 2Equazione 2
    3. Un400 e un488 rappresentano i valori normalizzati del campione. Utilizzare questi valori per calcolare il rapporto di Peptide: IONP con equazione 3.
      Equation 3Equazione 3
    4. Dove Equation 4 e Equation 5 sono i absorptivities molare il IONP e il fluoroforo, rispettivamente. Per queste particelle Equation 4 = 2,06 x 106 M-1cm-1 e per FITC Equation 5 = 72.000 M-1cm-1, quindi il valore di Equation 6 dovrebbe essere 28,75. Rapporti tipici Peptide: IONP dovrebbero essere nel range di 20:1 a 50: 1.
  10. Convalidare la funzionalità delle sonde eseguendo un'analisi di clivaggio in vitro .
    1. Con PBS (1% BSA), rendere una nanoparticella di 18 µ l di soluzione con una concentrazione di 200 nM del peptide. Mescolare con 2 µ l di proteasi di interesse (MMP9; 0,1 - 1 mg/mL).
    2. Incubare in un lettore di piastre a 37 ° C per 1 ora, prendendo misure di fluorescenza (utilizzando l'appropriato eccitazione e lunghezze d'onda di emissione, che sono 485 nm e 528 nm per FITC, rispettivamente) ogni 1-2 minuti per monitorare la fenditura.

3. amministrazione di nanosensori e urina rilevazione di cancro

Nota: Per maggiori dettagli sul modello di esempio, vedere la nostra precedente relazione13.

  1. Creare una gabbia metabolica per la raccolta dell'urina fissando un manicotto cilindrico nella parte superiore di una piastra ben 96. Durante la raccolta delle urine, posizionare il mouse all'interno della manica e la copertura con una copertura di Petri per impedire la fuga dell'animale.
  2. Preparare una soluzione per iniezione (200 µ l di volume massima) contenente nanosensori ad una concentrazione di 3000 mg/kg (~ 50 µmol) dal peptide in soluzione fisiologica sterile.
  3. Nei topi femminili, nudi, 8 - settimana-vecchi cuscinetto dello xenotrapianto tumori colorettali LS174T a un peso di ~ 100-300 mm3, che dovrebbe verificarsi circa il giorno 10, amministrare nanosensore soluzione tramite iniezione della vena della coda. Immediatamente dopo l'iniezione, posizionare il mouse in gabbie metaboliche e prendere nota del tempo di iniezione per ogni mouse.
  4. A 60-90 minuti dopo l'iniezione, rimuovere il manicotto cilindrico da piastra a 96 pozzetti. Reprimere il mouse ed applicare una leggera pressione sulla vescica per indurre topi di annullare qualsiasi restante urina sulla piastra. Raccogliere tutte le urine (200-500 µ l).
  5. Analizzare i campioni di urina mediante immunoprecipitazione per purificare FITC dall'urina e aumentare la sensibilità. Biglie magnetiche uso accoppiato con gli anticorpi anti-FITC.
    1. In primo luogo, lavare 25mg di biglie magnetiche 3 volte con tampone di rivestimento e portare il volume finale a 225 µ l.
      Nota: È importante rendere fresca che ogni volta e circa 20 mL di ciascuno è necessario il tampone di rivestimento (borato di sodio 0,1 M, pH 9.5), tampone bloccante (PBS, 0.5% di BSA, 0,05% di Tween-20, pH 7.4) e tampone di lavaggio (PBS, 0.1% BSA, 0,05% di Tween-20, pH 7.4).
    2. Aggiungere 200 µ l di anti-FITC (5 mg/mL) e 200 µ l di solfato di ammonio (3 M). Incubare per 16-24 ore a 37 ° C in un rotatore.
    3. Aggiungere la soluzione a un separatore magnetico, eliminare il surnatante, sostituire con 625 Equation 7 Λ blocco buffer e incubare a 37 ° C per una notte. Quindi lavare 3 volte con tampone di lavaggio e memorizzare in 1,25 mL di tampone di lavaggio.
    4. Incubare 2 µ l di urina con 5 µ l di biglie magnetiche (20 mg/mL) e portare a un volume totale di 50 µ l con PBS (0.01% Tween 20). Incubare per 60 min.
    5. Lavare due volte con 50 µ l PBS (0.01% Tween 20) utilizzando un separatore magnetico per raccogliere perle magnetiche dopo ogni lavaggio.
    6. Eluire due volte con 32,5 µ l di acido acetico glaciale di 5%. Neutralizzare l'eluizione in pool (70 µ l) con 35 µ l di 2 M Tris per ottenere un pH finale di ~ 7.
    7. Leggere su un lettore di piastra (Vedi Tabella materiali) alle lunghezze d'onda eccitazione e di emissione appropriato per quantificare la fluorescenza di urina. Calcolare la concentrazione di reporter fluorescente contro una scala di concentrazioni note di fluoroforo gratis.

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Representative Results

La maggior parte della popolazione della IONPs è intorno al diametro medio, che vanno da 40-50 nm. Dopo PEGilazione, questo intervallo di grandezza ha un'emivita di circolazione di circa 6 ore13 in vivo (Vedi Figura 2a). Se si vuole selezionare per una gamma di particolari dimensioni, uno può utilizzare cromatografia di esclusione di formato per isolare le frazioni IONP con differenti diametri. Le nanoparticelle di TEM apparirà come ossido di ferro sferica individuali nanoparticelle reticolato insieme da uno strato esterno di destrano. 13  Una soluzione di IONPs apparirà traslucida con nessun precipitato e marrone chiaro a colori. Dopo coniugazione del peptide di successo, capacità di assorbimento spettrale analisi rivelerà un picco di assorbanza distinti alla lunghezza d'onda di eccitazione massima del reporter fluorescente. Nel caso di FITC, questo sarà centrato circa 488 nm (Vedi Figura 2b). Una reazione di coniugazione di peptide tipico si tradurrà in un peptide per il rapporto molare IONP di 20-50 dopo purificazione FPLC. Per testare la capacità della sonda e l'attività della proteasi di senso, un'aliquota di nanosensori possa essere incubata con proteasi ricombinante e monitorata da fluorimetria. Attività di fenditura comporterà il rilascio di reporter fluorescenti - che sono altrimenti homoquenched sulla superficie della nanoparticella - in soluzione e aumentare la fluorescenza del campione. È tipico di osservare substrato velocità di scissione, che seguire la cinetica di Michaelis-Menten (Vedi Figura 2C).

Figure 2
Figura 2: Convalida la struttura e la funzione di nanosensori In vitro. (a) grafico A liste di distribuzione che rappresenta la distribuzione delle dimensioni di una post-sintesi di popolazione IONP. (b) lo spettro di assorbanza di IONPs post-coniugazione con substrati di FITC-labeled MMP-9. (c) in vitro clivaggio test risultati che MMP9 costantemente fende il peptide presentato da nanosensore nel corso di un'ora. Una concentrazione di proteasi di 0,5 mg/mL è stata utilizzata in PBS (1% BSA) buffer. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

Per applicare questa piattaforma in modelli murini di cancro, è tipico di utilizzare nanosensori rivestito con un reporter fluorescente vicino infrarosso per permettere la visualizzazione di farmacocinetica da intero-animale fluorescente imaging (Figura 3a). In topi che sopportano i tumori colorettali LS174T, un segnale fluorescente localizzerà nell'urina entro 60-90 minuti dopo la somministrazione endovenosa di nanosensori a causa della scissione di MMP9 dei substrati del peptide sui nanosensori. Al contrario, ci saranno segnali fluorescenti inferiori nella vescica dei topi del gruppo di controllo (Vedi Figura 3a). Dovrebbe essere notato che il segnale osservato nel fegato si pone perché le particelle sono alla fine scavenging dai monociti e dai macrofagi del sistema reticoloendoteliale, che si trovano comunemente nel fegato, milza e linfonodi. Pertanto, il segnale proveniente dal fegato in Figura 3a è a causa della clearance delle nanoparticelle. 13 nel quantificare fluorescenza di urina mediante immunoprecipitazione, un segnale significativamente elevato sarà osservato in topi che sopportano i tumori LS174T rispetto ai controlli sani (Vedi Figura 3b).

Figure 3
Figura 3: rilevazione del cancro del colon-retto in un modello murino. (a) immagini In vivo del tumore e controllo gruppo di topi, osservando la localizzazione IONP ai siti della malattia, come pure la localizzazione di urina a causa della progressione del tumore. (b) quantificazione di fluorescenza di urina del tumore nei topi di controllo nel modello di tumore LS174T. Barre di errore vengono tracciate come deviazione standard (*p < 0.05 mediante due-prova accoppiata munito di t). Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.

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Discussion

Questo metodo viene descritto lo sviluppo di Nanosensori basati su attività costituito da proteasi substrati coniugati ad un nucleo di nanoparticelle. L'evento di clivaggio proteolitico è soprannominato "switch farmacocinetiche," perché prodotti fenduti peptidici sono più piccoli rispetto al limite di filtrazione renale dimensione di 5 nm23 e filtro in urina per produrre un segnale non invadente. Pertanto, è importante utilizzare le nanoparticelle o vettori con un raggio idrodinamico è maggiore di 5 nm, come qualcosa di più piccolo sarà essere rapidamente eliminato dai reni e confondere i segnali dell'urina. Usiamo IONPs pegilato perché sono approvati dalla FDA, ben tollerato e hanno un'emivita circolante di 3-5 ore. 13 un'altra considerazione importante nella formulazione di nanosensori è il piolo al rapporto molare di peptide substrato. 24 , 25 aumentando il rapporto sarà ridurre aspecifici fenditura da proteasi fuori bersaglio attraverso sterico schermatura di peptidi26, ma potenzialmente ridurre il bersaglio attività pure. Al contrario, un minore PEG ad rapporto di peptide aumenterà l'accessibilità della proteasi e la fenditura di peptidi, che amplifica i segnali di rilevazione, ma può anche aumentare il rumore di fondo. In vivo, una minore concentrazione superficiale di PEG può anche aumentare l'assorbimento nanosensore dal sistema reticolo endoteliale (RES) e diminuire il tempo di circolazione.

Per applicare questa tecnologia per diagnosticare altre malattie, proteasi che sono aumentati in uno stato di malattia dovrebbero essere identificate dalla letteratura17. Azioni di individuazione dovrebbero concentrarsi sulle proteasi extracellulari perché questi nanosensori non sono progettati per penetrare nelle cellule per attività intracellulare di senso. Questi nanosensori sono anche progettate per endoproteases di senso che fendono nel mezzo del peptide, che fornisce molte malattie di candidato di destinazione. Prendendo di mira endoproteases extracellulare da solo abbiamo sviluppato sistemi diagnostici per fibrosi del fegato, più tipi di cancro e trombosi13,19,20,21. Questa piattaforma può essere ulteriormente progettata per sondare per attività exoprotease dopo endoprotease fenditura nel contesto della malattia26,27. Inoltre è importante progettare un substrato peptide che è specifico per la proteasi di interesse. Questo potrebbe essere realizzato mediante screening di sequenze peptidiche candidato con l'in vitro analisi di clivaggio (passaggi 2.10-2.11). Clivaggio della proteasi aspecifiche potenziali deve essere testato anche durante la progettazione del peptide. Ad esempio, nel caso di MMP9, abbiamo testato la specificità di substrato con trombina, una proteasi di coagulazione trovata alle alte concentrazioni nel sangue. Per utilizzare attività nanosensori in vivo, il tempo di raccolta urina ottimale dovrebbe essere determinato monitorando cinetica di produzione del segnale di imaging o campionamento discreto dell'urina dopo somministrazione di nanosensori. Topi possono anche essere infuso con soluzione fisiologica sterile per overhydrate animali e aumentare la produzione di urina. Praticamente, questa tecnologia può essere estesa a qualsiasi malattia con sovraregolati o downregulated l'attività della proteasi extracellulari. Un punto di forza di questa piattaforma è che esso permette l'amplificazione del segnale di proteasi del bersaglio, quindi anche se solo una frazione della popolazione della proteasi malattia-sito è indagata, una lettura significativa può essere misurata. La piattaforma corrente è progettata per endoproteases extracellulare di senso. Quando si applica questa piattaforma ad altre malattie, bisogna identificare la biologia di proteasi di tale malattia, tale che questa piattaforma può essere sintonizzata alle proteasi senso di interesse.

Questa tecnologia di base possa essere ulteriormente progettata con i giornalisti di clivaggio che possono essere rilevati con diverse piattaforme analitiche per aumentare il numero di applicazioni. Ad esempio, i reporter di clivaggio che contengono leganti per grippaggio dell'anticorpo possono essere rilevati dal test di carta per basso costo diagnostica point-of-care19. Etichettatura di substrati con massa Reporter consente inoltre più proteasi simultaneamente essere rilevato dall'urina di spettrometria totale13. In conclusione, questo metodo viene descritto formulazione basata su attività Nanosensori per percepire proteasi attività in vivo come biomarcatore urinario non invasivo della malattia.

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Disclosures

Dr. Kwong è co-fondatore e serve come consulente a Glympse Bio, che sta sviluppando prodotti legate alla ricerca descritta in questo documento. Questo studio potrebbe influire sulla sua situazione finanziaria personale. I termini di questo accordo sono stati esaminati e approvati dal Georgia Tech secondo le proprie politiche di conflitto di interessi

Acknowledgments

Questo lavoro è stato finanziato da un direttore di NIH nuovo Innovator Award (premio No. DP2HD091793). Q.D.M. è supportato dal programma di borse di ricerca laureato NSF (Grant No. DGE-1650044). B.A.H è supportato dalla nazionale istituti di salute GT BioMAT formazione sovvenzione premio numero 5T32EB006343 così come il Presidente di Georgia Tech Fellowship. G.A.K. tiene un premio alla carriera all'interfaccia scientifica del fondo benvenuto di Burroughs. Il contenuto è di esclusiva responsabilità degli autori e non rappresentano necessariamente il punto di vista ufficiale del National Institutes of Health.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
0.2 µm syringe filters VWR 4652
18G needle VWR 89134-024
15 mL conicals VWR 89039-670
250 mL Erlenmeyer flask VWR 89000-362
Stir bar VWR 58949-006
Hot Plate/Magnetic Stirrer VWR 97042-634
Glacial acetic acid VWR 97064-482
Albumin from Bovine Serum (BSA) Thermo Fisher A13100
Iron (III) chloride hexahydrate Sigma 236489
Iron (II) chloride tetrahydrate Sigma 44939
Epichlorohydrin Sigma 45340-500ML-F
DMF Sigma D4551
Ammonium Hydroxide Sigma 320145-500ML
Sodium Hydroxide pellets Sigma 221465-500G
EDTA Sigma E9884
Sodium Borate Sigma B9876
L-Cysteine Sigma 168149-100G
Tris-HCl Sigma T5941
Tris base Sigma T6066
PBS tablets Sigma P4417
Dextran Pharmacosmos 5510 0020 9006
Amicon 15 mL 10k filters, 24 pk Millipore UFC901024
Amicon 15 mL 30k filters, 24 pk Millipore UFC903024
Amicon 15 mL 100k filters, 24 pk Millipore UFC910024
Zetasizer Nano ZS Malvern Panalytical NanoZS
Slide-A-Lyzer Dialysis Cassette LifeTech 66130
Dynabeads MyOne Tosylactivated LifeTech 65501
SIA Life Tech 22349
PEG 20k Laysan Bio MPEG-SH-20K-1g
Fluorescein Antibody [2A3] GeneTex GTX10257
Hiload 16/600 superdex 200 GE Healthcare 45-002-490
Plate Reader Fisher BTCYT5M
BD Insulin Syringes Fisher NC0872854

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References

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Bioingegneria problema 137 biomarcatori sintetici sonde basate su attività proteasi nanosensori nanoparticelle diagnostica di urina
Nanosensori per rilevare attività della proteasi <em>In Vivo</em> per la diagnostica non invasiva
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Holt, B. A., Mac, Q. D., Kwong, G.… More

Holt, B. A., Mac, Q. D., Kwong, G. A. Nanosensors to Detect Protease Activity In Vivo for Noninvasive Diagnostics. J. Vis. Exp. (137), e57937, doi:10.3791/57937 (2018).

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