Summary

Yalıtım F1-ATPaz paraziter Protist Trypanosoma brucei üzerinden

Published: January 22, 2019
doi:

Summary

Bu iletişim kuralı F1arıtma açıklar-ATPaz Trypanosoma bruceikültürlü böcek sahneden. Yordamı son derece saf, homojen ve aktif karmaşık yapısal ve enzimatik araştırmaları için uygun verir.

Abstract

F1-ATPaz F-tipi ATP sentaz, proton sebep kuvvet biyolojik membranlar arasında adenozin trifosfat (ATP) üretmek için kullanır bir enzim bir membran dışsal katalitik subcomplex olduğunu. Yalıtım bozulmadan F1-yerli kaynağından ATPaz enzim protein kompozisyon, kinetik parametrelerin ve inhibitörleri duyarlılık karakterize etmek için önemli bir önkoşul olduğunu. Son derece saf ve homojen F1-ATPaz ATP sentezi ve hidroliz moleküler mekanizmaları içgörü sağlamak yapısal çalışmalar için kullanılır. Bu makalede, F1arıtma için bir yordam açıklanır-ATPaz Trypanosoma brucei, Afrika trypanosomiases hastalığının üzerinden. F1-ATPaz kültürlü vitro Tripanozomlar üzerinden hipotonik lizis tarafından elde edilen mitokondrial veziküller yalıtılmış. Veziküller mekanik sonication ve F1tarafından parçalanmış-ATPaz kloroform çıkarma tarafından iç mitokondri zar–dan serbest bırakmak. Enzimatik karmaşık daha fazla ardışık anyon exchange ve boyutu-dışlama Kromatografi tarafından saf. Hassas kütle spektrometresi teknikleri arıtılmış karmaşık hemen hemen herhangi bir protein kirletici yoksun olduğunu ve bu nedenle, uygun malzeme yapı tayini için x-ışını kristalografisi veya cryo-elektron mikroskobu tarafından temsil eder, gösterdi. İzole F1-ATPaz sergileyen tamamen sodyum azid, güçlü inhibitörü olan F-tipi ATP synthases tarafından inhibe olabilir ATP hydrolytic etkinlik. Arıtılmış karmaşık oda sıcaklığında en az üç gün istikrarlı ve etkin kalır. Yağış amonyum sülfat tarafından uzun süreli depolama için kullanılır. Benzer yordamlar F1arıtma için kullanılan memeli ve bitki dokularında, Maya veya bakteri – ATPases. Böylece, sunulan Protokolü F1için bir kılavuz olarak hizmet verebilir-ATPaz izolasyon diğer organizmalar.

Introduction

F-tipi ATP synthases membran bağlı multiprotein kompleksleri arasında enerji transducing membranlar bakteri, mitokondri ve kloroplast ATP oluşumu ile bu iki proton translocation döner. Moleküler detaylarını ATP sentezi dönme mekanizması esas olarak saflaştırılmış bakteriyel ve mitokondriyal ATP synthases ve onların subcomplexes1yapısal çalışmalar nedeniyle bilinmektedir. F-tipi ATP sentaz membran içsel ve dışsal membran moieties düzenlenmiştir. F1olarak bilinen membran dışsal bölümü-ATPaz, adenozin nükleotittir (ADP) ATP veya ters tepki fosforilasyon oluştuğu üç katalitik siteleri içerir. F1-ATPaz serbest deneysel olarak membran-iç yan hidrolize ama değil sentez, ATP yeteneğini koruyarak. Fo, denilen membran bağlı sektör enzim’ın dönüşü sürücüler protein translocation aracılık eder. F1 ve Fo sektörlerde merkezi ve periferik SAP tarafından bağlanır.

İlk girişimleri F1arındırmak için-1960’larda başa mayası ve sığır kalp mitokondri tarihi ATPaz. Kullanılan bu protokollerin sonication, amonyum veya protamine sülfat yağış, ardından isteğe bağlı Kromatografi adım (lar) ve ısıl işlem2,3,4 tarafından şeker tarafından kesintiye mitokondri çıkarılan ,5,6. Arıtma büyük ölçüde geliştirilmiş ve kolayca F1bültenleri kloroform kullanılarak Basitleştirilmiş-ATPaz mitokondri zar parçaları7. Kloroform çıkarma sonra F1ayıklamak için kullanılan çeşitli hayvan, bitki ve bakteriyel kaynakları (Örneğin, fare karaciğer8, Mısır9, Arum maculatum10ve Escherichia coli – ATPases 11). Daha fazla arıtma kloroform serbest F1-ATPaz benzeşme veya boyut-dışlama Kromatografi (sn) tarafından x-ışını kristalografisi tarafından yüksek çözünürlüklü yapı belirlenmesi için uygun, bir son derece saf protein kompleksi, vermiştir olarak F1yapılar tarafından belgelenen-ATPaz sığır kalp12,13 ve Saccharomyces cerevisiae14. F1-ATPaz yapıları da yetiştirmek zor olan organizmalar tespit ve böylece, ilk biyolojik malzeme miktarını sınırlı. Bu durumda, F1-ATPaz alt birimleri yapay olarak ifade edilen ve E. colikompleksi içine monte ve bütün Contegra enzim etiketli bir alt birim benzeşme Kromatografi ile tarafından saflaştırıldı. Böyle bir yaklaşım F1belirlenmesine yol açtı-ATPaz yapıları iki termofilik bakteriyel türler, Geobacillus stearothermophilus15 ve Caldalkalibacillus thermarum16, 17. ancak, bu yöntem oldukça ökaryotik F1için uygun değildir – prokaryotik protheosynthetic aparatı, ardından işleme ve karmaşık derleme dayanan bu yana ATPases.

Kloroform tabanlı ayıklama daha önce F1ayırmak için kullanılan – ATPases tek hücreli digenetic parazitler Trypanosoma cruzi18 ve T. brucei19, Amerikan neden önemli memeli patojenlerin ve Afrika trypanosomiases, sırasıyla ve monogenic böcek parazit Crithidia fasciculata20. Bu purifications liderliğindeki F1‘ in sadece basit bir açıklaması için – herhangi bir aşağı akım uygulama tam bileşimi, yapısı ve karmaşık enzimatik özelliklerini tanımlamak için kullanılan bu yana ATPases,. Bu makalede, F1için en iyi duruma getirilmiş bir yöntemi-kültürlü böcek yaşam döngüsü sahne alanı’ndan ATPaz arınma T. brucei. Yöntem dayalı olarak kurulan iletişim kuralları yalıtım sığır ve Maya F1– ATPases21,22için geliştirilmiştir. Yordamı son derece saf ve homojen enzim vitro enzimatik ve inhibitör deneyleri için uygun detaylı proteomik karakterizasyonu kütle spektrometresi23ve yapı belirlenmesi24tarafından verir. Arıtma Protokolü ve bilgi F1-ATPaz yapısı atomik düzeyde küçük molekül inhibitörleri tanımlamak ve Afrika trypanosomiases karşı yeni ilaçların geliştirilmesi yardım ekranları tasarlamak için bir olasılık açar. Ayrıca, protokol F1arındırmak için adapte edilebilir-ATPaz üzerinden diğer organizmalar.

Protocol

1. arabellekleri ve çözümleri Aşağıda listelenen çözümleri hazırlayın. Sıvı kromatografi için tüm arabellekleri degas. ADP, benzamidine ve proteaz inhibitörleri kullanmadan önce ekleyin. Hidroklorik asit (Tris-HCl) pH 8.0, 0.25 M sukroz, 5 mM benzamidine, 5 mM ile arabellek A: 50 mM Tris tampon aminocaproic asit (ACA) ve proteaz inhibitörleri (10 µM amastatin, 50 µM bestatin, 50 µM pepstatin, 50 µM leupeptin ve 50 µM diprotin A) hazırlayın. Arabellek B: 50 mM Tris-HCl…

Representative Results

T. brucei hücreleri25 standardında kültürlü mitokondrial veziküller (mitoplasts) üzerinde 2 x 1011 procyclic hypotonically lysed 1 x 1011 Percoll degradeye izole tipik arıtma (Şekil 1) başlar glikoz zengini SDM-79 Orta27. Mitoplasts döndü, sonication tarafından parçalanmış ve matris içeren süpernatant atılır. Mitokondrial membranlar F1serbest bırakma…

Discussion

İletişim kuralı için F1-ATPaz arıtma T. brucei üzerinden F1yalıtım için temel alınarak daha önce yayımlanmış yöntemleri geliştirilmiştir-ATPaz kompleksleri diğer türler13,14. Yöntem herhangi bir genetik değişiklik gerektirmez (Örneğin, etiketleme) ve tüm alt mevcut ile tam etkin bir kompleks verimleri. Önemli bir adım kloroform kolaylaştırdı F1sürümüdür-ATPaz enzim membran bağl?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Bu eser Eğitim Bakanlığı ERC CZ tarafından finanse edildi LL1205, 18-17529S, Çek Cumhuriyeti Grant ajansı hibe vermek ve Merkezi araştırma patojenitesi ve parazit (No virülans ERDF/ESF tarafından proje CZ.02.1.01/0.0/0.0/16_019/0000759).

Materials

Chemicals
Adenosin Diphosphate Disodium Salt (ADP) Applichem A0948
Amastatin Hydrochloride Glantham Life Sciences GA1330
Aminocaproic Acid Applichem A2266
BCA Protein Assay Kit ThermoFischer Scientific/Pierce 23225
Benzamidine Hydrochloride Calbiochem 199001
Bestatin Hydrochloride Sigma Aldrich/Merck B8385
Chloroform Any supplier
cOmplete Tablets, Mini EDTA-free Roche 4693159001 Protease inhibitor cocktail tablets
Ethylenediaminetetraacetic Acid (EDTA) Any supplier
Hydrochloric Acid Any supplier For pH adjustment
Ile-Pro-Ile Sigma Aldrich/Merck I9759 Alias Diprotin A
Leupeptin Sigma Aldrich/Merck L2884
Magnesium Sulfate Heptahydrate Any supplier
Pepstatin A Sigma Aldrich/Merck P5318
Protein Electrophoresis System Any supplier
Sodium Chloride Any supplier
Sucrose Any supplier
Tris Any supplier
Name Company Catalog Number Comments
Consumables
Centrifuge Tubes for SW60Ti, Polyallomer Beckman Coulture 328874
DounceTissues Homogenizer 2 mL Any supplier
Glass Vacuum Filtration Device Sartorius 516-7017 Degasing solutions for liquid chromatography
HiTrap Q HP, 5 mL GE Healthcare Life Sciences 17115401 Anion exchange chromatography column
Regenaretad Cellulose Membrane Filters, pore size 0.45 μm, diameter 47 mm Sartorius 18406–47——N Degasing solutions for liquid chromatography
Superdex 200 Increase 10/300 GL GE Healthcare Life Sciences 29091596 Size-exclusion chromatography column
Vivaspin 6 MWCO 100 kDa PES Sartorius VS0641
Name Company Catalog Number Comments
Equipment
AKTA Pure 25 GE Healthcare Life Sciences 29018224 Or similar FPLC system
Spectrophotometer Shimadzu UV-1601 Shimadzu Or similar spectrophotometer with kinetic assay mode
Ultracentrifuge Beckman Optima with SW60Ti Rotor Beckman Coulture Or similar ultracentrifuge and rotor
Ultrasonic Homogenizer with Thin Probe, Model 3000 BioLogics 0-127-0001 Or similar ultrasonic homogenizer

References

  1. Walker, J. E., Wikström, M. Structure, mechanism and regulation of ATP synthases. Mechanisms of Primary Energy Transduction in Biology. , 338-373 (2017).
  2. Pullman, M. E., Penefsky, H. S., Datta, A., Racker, E. Partial resolution of the enzymes catalyzing oxidative phosphorylation. I. Purification and properties of soluble dinitrophenol-stimulated adenosine triphosphatase. The Journal of Biological Chemistry. 235, 3322-3329 (1960).
  3. Schatz, G., Penefsky, H. S., Racker, E. Partial resolution of the enzymes catalyzing oxidative phosphorylation. XIV. The Journal of Biological Chemistry. 242 (10), 2552-2560 (1967).
  4. Racker, E., Horstman, L. L. Partial resolution of the enzymes catalyzing oxidative phosphorylation. 13. Structure and function of submitochondrial particles completely resolved with respect to coupling factor. The Journal of Biological Chemistry. 242 (10), 2547-2551 (1967).
  5. Senior, A. E., Brooks, J. C. Studies on the mitochondrial oligomycin-insensitive ATPase. I. An improved method of purification and the behavior of the enzyme in solutions of various depolymerizing agents. Archives of Biochemistry and Biophysics. 140 (1), 257-266 (1970).
  6. Tzagoloff, A., Meagher, P. Assembly of the mitochondrial membrane system. V. Properties of a dispersed preparation of the rutamycin-sensitive adenosine triphosphatase of yeast mitochondria. The Journal of Biological Chemistry. 246 (23), 7328-7336 (1971).
  7. Beechey, R. B., Hubbard, S. A., Linnett, P. E., Mitchell, A. D., Munn, E. A. A simple and rapid method for the preparation of adenosine triphosphatase from submitochondrial particles. Biochemical Journal. 148 (3), 533-537 (1975).
  8. Tyler, D. D., Webb, P. R. Purification and properties of the adenosine triphosphatase released from the liver mitochondrial membrane by chloroform. Biochemical Journal. 178 (2), 289-297 (1979).
  9. Hack, E., Leaver, C. J. The alpha-subunit of the maize F1-ATPase is synthesised in the mitochondrion. The EMBO Journal. 2 (10), 1783-1789 (1983).
  10. Dunn, P. P., Slabas, A. R., Moore, A. L. Purification of F1-ATPase from cuckoo-pint (Arum maculatum) mitochondria. A comparison of subunit composition with that of rat liver F1-ATPase. Biochemical Journal. 225 (3), 821-824 (1985).
  11. Satre, M., Bof, M., Vignais, P. V. Interaction of Escherichia coli adenosine triphosphatase with aurovertin and citreoviridin: inhibition and fluorescence studies. Journal of Bacteriology. 142 (3), 768-776 (1980).
  12. Abrahams, J. P., Leslie, A. G., Lutter, R., Walker, J. E. Structure at 2.8 Å resolution of F1ATPase from bovine heart mitochondria. Nature. 370 (6491), 621-628 (1994).
  13. Lutter, R., et al. Crystallization of F1-ATPase from bovine heart mitochondria. Journal of Molecular Biology. 229 (3), 787-790 (1993).
  14. Kabaleeswaran, V., Puri, N., Walker, J. E., Leslie, A. G., Mueller, D. M. Novel features of the rotary catalytic mechanism revealed in the structure of yeast F1-ATPase. The EMBO Journal. 25 (22), 5433-5442 (2006).
  15. Shirakihara, Y., et al. Structure of a thermophilic F1-ATPase inhibited by an epsilon-subunit: deeper insight into the epsilon-inhibition mechanism. The FEBS Journal. 282 (15), 2895-2913 (2015).
  16. Stocker, A., Keis, S., Cook, G. M., Dimroth, P. Purification, crystallization, and properties of F1-ATPase complexes from the thermoalkaliphilic Bacillus sp. strain TA2.A1. Journal of Structural Biology. 152 (2), 140-145 (2005).
  17. Ferguson, S. A., Cook, G. M., Montgomery, M. G., Leslie, A. G., Walker, J. E. Regulation of the thermoalkaliphilic F1-ATPase from Caldalkalibacillus thermarum. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 113 (39), 10860-10865 (2016).
  18. Cataldi de Flombaum, M. A., Frasch, A. C. C., Stoppani, A. O. M. Adenosine triphosphatase from Trypanosoma cruzi: purification and properties. Comparative Biochemistry and Physiology Part B: Comparative Biochemistry. 65 (1), 103-109 (1980).
  19. Williams, N., Frank, P. H. The mitochondrial ATP synthase of Trypanosoma brucei: isolation and characterization of the intact F1 moiety. Molecular and Biochemical Parasitology. 43 (1), 125-132 (1990).
  20. Higa, A. I., Cazzulo, J. J. Mg2+-activated adenosine triphosphatase from Crithidia fasciculata: purification and inhibition by suramin and efrapeptin. Molecular and Biochemical Parasitology. 3 (6), 357-367 (1981).
  21. Walker, J. E., et al. Primary structure and subunit stoichiometry of F1-ATPase from bovine mitochondria. Journal of Molecular Biology. 184 (4), 677-701 (1985).
  22. Mueller, D. M., et al. Ni-chelate-affinity purification and crystallization of the yeast mitochondrial F1-ATPase. Protein Expression and Purification. 37 (2), 479-485 (2004).
  23. Gahura, O., et al. The F1-ATPase from Trypanosoma brucei is elaborated by three copies of an additional p18-subunit. The FEBS Journal. 285 (3), 614-628 (2018).
  24. Montgomery, M. G., Gahura, O., Leslie, A. G. W., Zikova, A., Walker, J. E. ATP synthase from Trypanosoma brucei has an elaborated canonical F1-domain and conventional catalytic sites. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 115 (9), 2102-2107 (2018).
  25. Schneider, A., Charriere, F., Pusnik, M., Horn, E. K. Isolation of mitochondria from procyclic Trypanosoma brucei. Methods in Molecular Biology. 372, 67-80 (2007).
  26. Smith, P. K., et al. Measurement of protein using bicinchoninic acid. Analytical Biochemistry. 150 (1), 76-85 (1985).
  27. Wirtz, E., Leal, S., Ochatt, C., Cross, G. A. A tightly regulated inducible expression system for conditional gene knock-outs and dominant-negative genetics in Trypanosoma brucei. Molecular and Biochemical Parasitology. 99 (1), 89-101 (1999).
  28. Speijer, D., et al. Characterization of the respiratory chain from cultured Crithidia fasciculata. Molecular and Biochemical Parasitology. 85 (2), 171-186 (1997).
  29. Nelson, R. E., Aphasizheva, I., Falick, A. M., Nebohacova, M., Simpson, L. The I-complex in Leishmania tarentolae is an uniquely-structured F1-ATPase. Molecular and Biochemical Parasitology. 135 (2), 221-224 (2004).
  30. Carbajo, R. J., et al. How the N-terminal domain of the OSCP subunit of bovine F1Fo-ATP synthase interacts with the N-terminal region of an alpha subunit. Journal of Molecular Biology. 368 (2), 310-318 (2007).
  31. Bowler, M. W., Montgomery, M. G., Leslie, A. G., Walker, J. E. Ground state structure of F1-ATPase from bovine heart mitochondria at 1.9 Å resolution. The Journal of Biological Chemistry. 282 (19), 14238-14242 (2007).

Play Video

Cite This Article
Gahura, O., Zíková, A. Isolation of F1-ATPase from the Parasitic Protist Trypanosoma brucei. J. Vis. Exp. (143), e58334, doi:10.3791/58334 (2019).

View Video