Summary
Demostramos la síntesis de nanopartículas de silicio poroso fusogénicas para la entrega eficaz de oligonucleótidos in vitro e in vivo. Nanopartículas de silicio poroso están cargadas de siRNA para formar el núcleo, que es cubierto por fusogénicas lípidos a través de la protuberancia para formar la cáscara. Funcionalización de parte de la segmentación y caracterización de partículas están incluidos.
Abstract
Con el advenimiento de la terapia génica, ha sido el desarrollo de un sistema de entrega de efectivo en vivo nucleótido-carga de importación paralela. Nanopartículas de silicio poroso fusogénica (F-pSiNPs) recientemente han demostrado alta eficacia debido a su alta capacidad de cargamento y vía única absorción celular que evita la endocitosis de oligonucleótidos de silenciamiento del gen en vivo. La síntesis de F-pSiNPs es un proceso de múltiples paso que incluye: (1) de carga y sellado de cargas útiles de los oligonucleótidos en los poros de silicio; (2) simultánea capa y apresto de lípidos fusogénicas alrededor de los núcleos de silicio poroso; y (3) Conjugación de dirigidos a péptidos y lavado para eliminar exceso de oligonucleótidos, restos de silicio y péptidos. Uniformidad de tamaño de partícula se caracteriza por la dispersión ligera dinámica y su estructura de core-shell puede ser verificada por microscopía electrónica de transmisión. La absorción fusogénicas es validada por cargar un lipofílico del tinte, 1, 1'-dioctadecyl-3, 3, 3', 3'-tetramethylindocarbocyanine perclorato (DiI), en el bilayer del lípido fusogénicas y tratar a las células in vitro para observar membrana de plasma versus la coloración endocíticas localizaciones. Previamente se cuantificaron los efficacies gene silenciamiento de segmentación e in vivo en un modelo murino de neumonía por Staphylococcus aureus en el targeting peptide se espera que a la F-pSiNPs a casa en el sitio de la infección. Más allá de su aplicación en S. aureus la infección, el sistema de F-pSiNP puede utilizarse para entregar cualquier oligonucleótidos para terapia del gene de una amplia gama de enfermedades, incluyendo infecciones virales, cáncer y enfermedades autoinmunes.
Introduction
Terapia génica modula la expresión del gen específico para obtener un resultado terapéutico. Numerosas herramientas para modulación de genes han sido descubiertos y estudiados, incluyendo el ácido ribonucleico de interferencia (ARNi) usando oligonucleótidos (por ejemplo, corta interferencia RNA (siRNA)1,2, microRNA (miRNA)3,4 ), ADN plásmidos5,6, nucleasas (p. ej., dedo de zinc, TALENS)7,8y CRISPR/Cas9 sistemas9,10. Mientras que el mecanismo de la herramienta de acción es diferente, todas las herramientas deben alcanzar el citoplasma de la célula o el núcleo activo. Como tal, mientras que estas herramientas han demostrado para inducir un efecto significativo en la modulación de la expresión génica in vitro, la eficacia in vivo sufre obstáculos extracelulares e intracelulares. Debido a que las herramientas son de origen biológico, muchas enzimas y sistemas de separación existen en nuestro cuerpo que tienen la capacidad para degradar o eliminar los extranjeros moléculas11. Incluso en el caso que los instrumentos lleguen a la célula diana, sufren de endocitosis; un modo de absorción celular que encapsula y atrapa las herramientas en vesículas de estómago como ácidas que degradan o expulsan las herramientas fuera de la célula. De hecho, estudios han demostrado que las nanopartículas lipídicas son endocytosed través de macropinocitosis, de los cuales aproximadamente el 70% de lo siRNA se exocytosed de las células dentro de las 24h de absorción12,13. La mayoría de lo restantes siRNA es degradada a través de la vía lisosomal, y alcanzar en última instancia solamente 1-2% de lo siRNA que inicialmente entra en la célula con las nanopartículas escape endosomal a potencialmente ARNi13,14 .
Recientemente hemos desarrollado nanopartículas de silicio poroso fusogénica (F-pSiNPs) que tienen un núcleo cargado de siRNA compuesta por nanopartículas de silicio poroso y fusogénicas lípidos concha15. F-pSiNPs presenta tres grandes ventajas sobre otros sistemas convencionales de oligonucleótidos: (1) un lípido fusogénicas capa que permite que las partículas de omitir la endocitosis y entregar la carga entera directamente en el citoplasma de la célula (en comparación con el 1-2% mediante la endocitosis partículas13,14) (figura 1); (2) alta carga de masa siRNA en la pSiNPs (> 20% de peso en comparación con el 1-15% de peso por los sistemas convencionales)15, que rápidamente se degradan en el citoplasma (una vez que las partículas del núcleo arrojan la capa lipídica mediante absorción fusogénicas) para liberar el siRNA; y (3) orientación verbal de péptido homing selectivo a deseado tipos celulares in vivo.
El sistema F-pSiNP ha demostrado eficacia de silenciamiento del gen significativo (> 95% en vitro; > 80% in vivo) y posterior efecto terapéutico en un modelo de ratón fatal de la pulmonía de S. aureus ; los resultados de que se publicaron previamente15. Sin embargo, la compleja estructura del sistema F-pSiNP requiere manejo delicado y optimización optimizado para generar nanopartículas de uniforme y estables. Así, el propósito de este trabajo es presentar un protocolo exhaustivo, así como estrategias de optimización de la síntesis, funcionalización y caracterización de F-pSiNPs para ser utilizado en la entrega específica de siRNAs para efecto de silenciamiento del gene potente.
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Protocol
1. síntesis de nanopartículas de silicio poroso (pSINPs)
PRECAUCIÓN: Siempre tenga cuidado al trabajar con ácido fluorhídrico (HF). Siga a todas las guías de seguridad según su hoja de datos de seguridad (SDS), manejar productos químicos que contiene HF en una campana de humos y usar equipo de protección personal (PPE, guantes doble con guantes de butilo en el exterior, delantal de butilo con bata de laboratorio por debajo, cara proteger con gafas de seguridad debajo). Todas las universidades y laboratorios de investigación y desarrollo requieren una formación específica en seguridad de HF antes de uso. No intente trabajar con HF sin aprobación previa de su Coordinador de seguridad del laboratorio local, que son necesarias medidas de seguridad adicionales no descritas aquí.
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Preparación de las soluciones de grabado
- Para hacer la solución del HF de 3:1 para grabado (utilizado en los pasos 1.3 y 1.4), llenar un plástico graduado con 30 mL de HF acuoso de 48% y 10 mL de etanol absoluto (EtOH). La solución debe estar contenida en los plásticos de alta densidad (por ejemplo, polietileno de alta densidad), como el HF disuelve el vidrio.
- Para hacer un 1:29 solución de HF para el despegue (utilizado en paso 1.5), llenar un plástico graduado cilindro con 1 mL de HF acuoso de 48% y 29 mL de etanol absoluto. La solución debe estar contenida en los plásticos de alta densidad (por ejemplo, polietileno de alta densidad), como el HF disuelve el vidrio.
- Que la solución KOH de 1 M en 10% EtOH para disolución de exceso pSi (usado en los pasos 1.3 y 1.5).
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Configuración de la célula de etch
- En un Teflon grabado celular con 8,6 cm2 grabe bien (área se calcula midiendo el diámetro de la superficie de silicio disponible para grabado dentro de la junta tórica y calcular el área por un = πr2), colocar en descendente (Figura 2a): (1) la Tapa de teflón celular; (2) una junta tórica; (3) un pedazo de cuarto de cristal único (1 0 0) - orientado p ++ - tipo oblea de silicio cortada en cuartos (usando un cortador de diamante); (4) papel de aluminio; y (5) la célula de teflón con tornillos la base suavemente apretadas para evitar fugas.
- Llenar el pozo con EtOH. Tomar un trapo e introducirla en la grieta entre la parte superior de la célula de Teflon y la base. Si el paño está secado al retirar, se sella la celda de etch. Si mojado, la célula se produce un derrame y apriete los tornillos más hasta sellar.
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Electropulido la oblea de silicio
- Poner la célula etch montado en una campana de humos.
- Llenar el pozo con 10 mL de solución de HF de 3:1.
- Conecte el positivo del papel de aluminio (electrodo) de la célula de etch y conecte el cable negativo a la bobina de platino (el electrodo) sumergida en la solución de HF de 3:1 de la célula de etch para completar el circuito (figura 2b).
- Corren una constante corriente de 50 mA cm-2 para 60 s. Grabado una vez haya terminado, saque el celular del circuito y enjuagar el HF de 3:1 con cuidado utilizando una jeringa. Enjuague con EtOH tres veces.
- A disolver la capa grabada llenando el pozo lentamente con 10 mL de 1 M de KOH. Espere hasta que el burbujeo disminuye.
- Enjuague el KOH con agua tres veces y luego con EtOH tres veces.
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Electroquímicamente grabado capas porosas en la oblea de silicio
- Ejecutar una corriente alterna de onda cuadrada, con current density menor de 50 mA/cm2 de 0,6 s y alta densidad de corriente de 400 mA/cm2 para 0.36 s repetir para 500 ciclos.
- Grabado una vez haya terminado, saque el celular del circuito y enjuagar el HF de 3:1 con cuidado utilizando una jeringa. Enjuague con EtOH tres veces.
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Elevación de la capa porosa de la oblea de silicio
- Llenar el pozo con 10 mL de 1:29 solución de HF.
- Ejecutar una constante de 3,7 mA/cm2 para 250 s. Grabado una vez terminado, quite la célula del circuito. La capa de pSi puede tener ondulaciones visibles indicando la separación de la oblea de silicio cristalino. Suavemente Lave el 1:29 solución de HF y enjuague con EtOH tres veces, luego con agua tres veces.
- Utilizando una pipeta, firmemente romper el perímetro de la capa de pSi para la separación completa. Utilizando EtOH, recoge fragmentos pSi (chips) de la Teflon grabado celular en un barco pesado. Transferencia de las fichas a un frasco de vidrio. Las fichas de pSi pueden conservarse a temperatura ambiente en EtOH durante 6 meses para el almacenamiento.
- A disolver cualquier resto silicio poroso en la oblea llenando el pozo lentamente con 10 mL de 1 M de KOH. Espere hasta que el burbujeo disminuye.
- Enjuague el KOH con agua tres veces y luego con EtOH tres veces.
- Repita los pasos 1.3-1.5 hasta el espesor de la oblea entera ha sido grabado.
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Sonicando capas porosas para la formación de nanopartículas
- Cambie el solvente del frasco de vidrio que contiene chips de pSi de EtOH a 2 mL de agua desionizada.
- Firmemente cierre la tapa y sello de parafilm.
- Lugar el vidrio del frasco en un baño sonicador y suspendido de tal forma que el volumen de virutas de pSi está sumergido totalmente debajo de la superficie.
- Someter a ultrasonidos para 12 h 35 kHz y la potencia de RF de 48W. Para evitar la pérdida de agua significativas durante la sonicación, colocar un matraz aforado llenado de agua, invertida de modo que la abertura del frasco toque la superficie de la bañera de agua.
- Coloque el frasco de cristal sobre una superficie plana durante 1 hora permitir que las partículas más grandes colocar en la parte inferior. Recoger el sobrenadante con una pipeta; la suspensión contiene pSiNPs de sub-100 nanómetro.
2. preparación de la película de lípidos fusogénicas
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Preparación de las soluciones stock de lípidos
- En una campana de humos, hacer reservas de 10 mg/mL de lípidos hidratantes DMPC, DSPE-PEG-MAL y lípidos DOTAP en cloroformo. Estas soluciones pueden conservarse a-20 ° C hasta por 6 meses bajo sello apretado parafilm.
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Hacer la película de lípidos fusogénicas
Nota: La composición fusogénicas se hace de los lípidos, DMPC, DSPE-PEG y DOTAP, en la proporción molar de 76.2:3.8:20 y 96.2:3.8:0, respectivamente.- En un frasco de vidrio, mezclar 72.55 μL de DMPC, 15.16 μL de DSPE-PEG y 19.63 μL de DOTAP mediante pipeteo.
- Opcional: Etiquetado fluorescente de la capa de lípidos, además Añadir 20 μl de DiI disuelto en EtOH en una concentración de 1 mg/mL.
- Coloque el vial en una campana de humos con una tapa suelta para permitir que el cloroformo se evapore durante la noche. La película seca será una nublado sustancia gelatinosa dura en la parte inferior del frasco.
3. carga y sellado de siRNA en pSiNPs
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Preparación del carga stock el cloruro de calcio
- Disolver 1,11 g de CaCl2 en 10 mL de agua libre de ARNasa para hacer una solución de 2 M CaCl2 .
- Centrifugue la solución a > 10.000 x g durante 1 min colocar los agregados y recoger el sobrenadante con una pipeta. También puede filtrar la solución a través de un filtro de 0,22 μm.
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Preparación de lo siRNA carga stock
- Hidratar o diluir el siRNA a 150 μm en agua libre de ARNasa. Esta solución puede ser alícuotas y mantuvo congelado a-20 ° C durante al menos 30 días dado que no sufre frecuentes de congelación y descongelación.
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Cargando el siRNA en pSiNPs con cloruro de calcio
- Preparar un baño de sonicación helado.
- A 15 de minutos de ultrasonidos, suavemente pipeta 150 μL de siRNA y 700 μl de 2 M de CaCl2 en 150 μL de pSiNP. Asegúrese de que dejar abierta la tapa del tubo de microcentrífuga para la generación de gas.
- Retire el tubo que contiene 1 mL de pSiNPs de calcio cargados de siRNA revestido del sonicador.
4. capa pSiNPs cargado de siRNA con lípidos fusogénicas
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Preparación del kit de extrusión de liposomas
- Llene un recipiente ancho con agua desionizada. Remojo policarbonato 1 membrana (poros de 200 nm) y 4 soportes de filtro flotando sobre la superficie del agua. Arme la liposoma extrusión siguiendo las instrucciones del fabricante
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Hidratantes la película lipídica con siRNA-carga pSiNps
- Hidratar la película lipídica seca en el frasco de vidrio con 1 mL de pSiNPs cargado de siRNA calcio revestido de paso 3.3.3. Pipeta hasta que todas las películas de lípidos han levantado desde la parte inferior de la cubeta y se han mezclado en una solución homogénea nublada.
- Coloque una barra magnética de agitación en el frasco de cristal y colocar el frasco en un plato caliente para calentar las partículas a 40 ° C (o lo suficientemente alto por encima de la temperatura de transformación de fase de los lípidos para mantener los lípidos en la fase de cristal líquido más fluídica) mientras que magnéticamente remover la solución durante 20 minutos.
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Sacar el pSiNPs recubiertos de lípidos para el control de tamaño
- Aspirar el 1 mL de solución de pSiNP-siRNA recubiertos de lípidos en la jeringa de extrusión. Inserte una jeringuilla vacía en un lado de la extrusora y la jeringa llena en el otro extremo.
- Comenzar la protuberancia presionando el émbolo lentamente para empujar las partículas de una jeringa, a través de la membrana de policarbonato y en el otro. Repetir 20 veces. Si el pistón está atascado, pueden estar tapados el filtro y la membrana. Desmontar la extrusora y vuelva a colocar los soportes de membrana y filtro. Si el problema persiste, diluir las partículas hasta que la obstrucción es manejable.
- Recoger las partículas extruidas en un tubo de microcentrífuga.
5. la conjugación de péptidos de focalización
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Conjugando el targeting peptide a capa de lípidos
- Preparar el caldo del péptido con 1 mg/mL la concentración de péptido en agua libre de ARNasa.
- En el tubo de microcentrífuga con fusogénicas recubiertos de lípidos pSiNPs, añada 100 μl del stock de péptido 1 mg/mL y pipeta suavemente. Mantenga el tubo estático a temperatura ambiente durante 20 minutos (o bien, > 2 h a 4 ° C).
- Para quitar exceso péptido o siRNA y otros excipientes, lavar un filtro centrífugo de 30 kDa por girar a 5.000 x g a 25 ° C por 1 h. centrífuga dos veces más con 1 mL de PBS con la misma configuración.
- Resuspender el final fusogénicas conjugados péptido recubiertos de lípidos pSiNPs en PBS en la concentración deseada. Las partículas pueden alícuotas y congelados a-80 ° C para almacenamiento de al menos 30 días.
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Representative Results
Una síntesis exitosa de fusogénicas pSiNPs debe producir una solución homogénea, ligeramente opaca (figura 3a). Fracaso para optimizar la relación y la concentración de pSiNPs: siRNA: CaCl2 puede conducir a la agregación a la carga (figura 3b). Como se sacan las partículas a través de 200 membranas nm, el diámetro medio de la hidrodinámico de la pSiNPs fusogénicas medido por DLS debe ser aproximadamente 200 nm y el mV de potencial zeta media aproximadamente + 7 como se muestra en la figura 4. Después de modificación superficial con dirigidas a péptidos, debe aumentarse el diámetro total para estar debajo de 230 nm y el promedio del potencial zeta disminuyeron hasta -3,4 mV15. Cualquier desviación extensa del tamaño de la protuberancia es indicativo de extrusión fallido (dpartícula >> dprotuberancia), o no carga (dpartícula << dprotuberancia). Las adiciones también pueden cuantificarse usando DLS. Por otra parte, las alícuotas congeladas deben descongelarse solamente una vez, como la congelación y descongelación repetida ciclos de desbaratar la membrana lipídica y fusión intraparticular y agregación (figura 4). Como se muestra en la figura 4a , pSiNPs fusogénicas puede almacenado durante 30 días y descongelado sin causar cambios estructurales. Sin embargo, repetidos ciclos de congelación y descongelación de una alícuota única causan agregación severa (d >> 1.000 nm) y dentro de 4 días de ciclo diario (Figura 4b), por lo tanto se recomienda que las partículas sean alícuotas de volúmenes de un solo uso.
La fusión puede ser confirmada etiquetado los lípidos fusogénicas con el DiI lipofílico (paso 2.2.2), y observando la localización in vitro usando microscopia confocal. D de la figura 1 muestra fusión acertada, donde los lípidos de la pSiNP fusogénicas el DiI la transferencia a la membrana plasmática y se localizan independientes de lisosomas. Fusión mostrará la localización de DiI dentro de la célula citoplasma y colocalización con lisosomas (figura 1C).
Figura 1: sistema de nanopartículas de silicio poroso fusogénica (F-pSiNP). (a) esquema endocíticas mostrando absorción de nanopartículas convencionales y atrapamiento posterior endosomal. (b) diagrama esquemático mostrando fusogénicas captación de la F-pSiNPs y posterior entrega citosólica de la carga útil de siRNA. (c) imagen Microscopio Confocal de un CAOV-3 celular que tiene endocytosed fusogénicas no pSiNPs que se han cargado con el colorante lipofílica DiI. CAOV-3 células fueron cultivadas a 80% de confluencia en una placa de 6 pozos, trataron con 10 μl de nanopartículas y se incubaron a 37 ° C en 5% CO2 durante 15 minutos. Las células fueron fijadas en paraformaldehido 1% se montan en portaobjetos con DAPI, secadas y mantiene en la oscuridad hasta que examinados por microscopia confocal. (D) confocal imagen microscópica de una célula CAOV-3 que ha tomado pSiNPs fusogénicas que fueron cargados con colorante lipofílica DiI. Células fueron previamente teñidas con LysoTracker Green por 1 h a 37 ° C en 5% de CO2 según instrucciones del fabricante. Las células se lavaron después PBS tres veces y fueron tratadas con 10 μL de partículas cargadas de DiI durante 15 minutos. Las células se lavaron con PBS tres veces para eliminar todas las partículas que no se toman, y los pozos se llena con 1 mL de PBS y tomados inmediatamente para las células vivas imágenes por microscopía confocal; DAPI representa tinción nuclear y lisosoma representa lysosomal tinción por LysoTracker Green; barra de escala representa 10 μm. haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Figura 2: grabar configuración celular. (a) esquema que muestra grabado de componentes de la célula y el orden de la Asamblea; y (b) diagrama de instalación de la aguafuerte electroquímica de silicio. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Figura 3: fotografía de producto F-pSiNP. (un) exitosa síntesis mostrando la solución homogénea y turbia; (b) síntesis fracasada que muestra la agregación de las partículas (amarillo). Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Figura 4: ciclo de congelación y descongelación repetida de fusogénicas pSiNPs causar agregación de. (a) medio de tamaño y potencial zeta de pSiNPs fusogénicas permanece estable durante 30 días cuando se haya descongelado una vez después de congelación; tamaño (b) media y el potencial zeta de la pSiNPs fusogénicas muestra signos de agregación y pérdida de integridad estructural dentro de 4 días después de someterse a ciclos de hielo-deshielo diariamente. Barras de error representan la desviación estándar (n = 5). Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Figura 5: Diagrama de la síntesis de nanopartículas de silicio poroso de. Esquema mostrando la aguafuerte electroquímica de la oblea de silicio (paso 1.4), despegue de la capa porosa (paso 1.5), sonicación de la capa porosa en partículas y la colección de nanopartículas de silicio poroso (paso 1.6). Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
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Discussion
Síntesis de nanopartículas de silicio poroso se muestran en la figura 5. El paso crítico en la síntesis de pSiNPs fusogénicas es en el paso de carga (paso 3). Si las nanopartículas fusogénicas están agregando la síntesis (figura 3), la razón puede deberse a lo siguiente: (1) stock de cloruro de calcio forma homogénea no estaba preparada, así paso 3.1.2 debe ser cuidadosamente seguido o refinado; o (2) la relación de pSiNP: siRNA: CaCl2 o la concentración de uno o más de los tres componentes puede no ser óptima. Se sugiere re-optimización a partir de la concentración de CaCl2 (p. ej., alteración de 2 M a 1 M o 3 M). Por otra parte, es importante asegurarse de que el CaCl2 es el mismo vendedor, ya que encontramos que el mismo químico de diferentes proveedores dio lugar a pH inferior a la del paso de carga y posterior falta cargar el siRNA. La pSiNPs puede también ser concentrado, diluido o más degradados antes del proceso de carga dejando las partículas suspendidas en el agua libre de ARNasa durante 2 días después paso 1.6.6.
La carga, el lípido capa a menudo conduce a dificultad en la protuberancia debido a la concentración o densidad de las partículas (paso 4). Si la membrana de extrusión está obstruida, obligando a la extrusión puede rasgar la membrana. Obstrucción, desmontar la extrusora y vuelva a colocar la membrana y los soportes con un nuevo conjunto si la pérdida de obstrucción es pequeña. Si la pérdida es grande, luego diluir la suspensión de partículas y someter a ultrasonidos 30 antes s de extrusión. Si el problema persiste, se recomienda la optimización de pSiNP tamaño y relación de carga para minimizar agregados. Por último, proponemos la suspensión de partículas de la filtración con filtro 0,22 μm de poro para eliminar contaminantes ni agregados antes de la célula o tratamiento de animales. Filtrado se recomienda especialmente si las partículas se sintetizaron en un ambiente no estéril, o después de la descongelación una alícuota congelada de las partículas.
La fusogenicity de las partículas puede ser validada mediante microscopía confocal (como se muestra en la figura 1C, d) y por microscopía electrónica de transmisión de las células tratadas con las partículas a observar para los núcleos de silicio poroso de galpón de lípidos en el citoplasma 15.
La pSiNPs fusogénicas y su Protocolo de síntesis tienen algunas limitaciones. Para aplicaciones de silenciamiento del gen in vitro, el pSiNPs fusogénicas presentados han demostrado para inducir > 90% de eficiencia precipitación en una gama de líneas celulares a la dosis de nM 100; incluyendo la línea de células de neuroblastoma de ratón Neuro-2a, la línea de células de cáncer de ovario humano CAOV-3 y la línea macrófago y células notoriamente difícil-a-transfectar RAW 264.7 ratón. Sin embargo, hemos observado > 50% eficiencia de precipitación en tan bajo como 25 dosis de nM, que era comparable a la de Lipofectamine. Mientras que los lípidos catiónicos se deben utilizar como mínimo para reducir el efecto citotóxico, anteriormente hemos demostrado su seguridad a la dosis de lípidos de tan alta como 1 mg15. Para aplicaciones de silenciamiento del gen en vivo, las pSiNPs fusogénicas están limitadas por la selectividad. Como los lípidos catiónicos atraen electrostáticamente a cualquier membrana de la célula, las partículas deben utilizarse como terapéutica local o ser modificado con un grupo de objetivo (p. ej., péptidos, anticuerpos, etcetera). El protocolo de síntesis para fusogénicas pSiNPs actualmente es optimizado y limitado para la entrega de siRNA solamente. El mismo método ha sido verificado con éxito cargar miRNA y se presume para poder cargar mRNA cDNA y otras cargas más grandes de nucleótidos, pero estos todavía tienen que ser optimizados.
El trabajo presentado hace una contribución significativa al campo de la terapia génica. La referencia estándar para el silenciamiento de genes in vitro es el Lipofectamine 2000. Hemos demostrado que la pSiNPs fusogénicas puede inducir precipitación efecto de comparable, si no superior, eficiencias15. La gran ventaja de la pSiNPs fusogénicas sobre Lipofectamine 2000 es su capacidad para ser utilizado en aplicaciones en vivo con las inyecciones sistémicas. Mientras que otros agentes, como el Invivofectamine 3.0, han sido comercializados para aplicaciones en vivo, sólo son adecuados para la entrega de hígado y requieren de siRNAs químicamente modificadas (con o sin voladizos o en la estructura del ácido nucleico bloqueado (LNA)) para aumentar estabilidad y especificidad. 16 , 17 , 18 sin embargo, el pSiNPs fusogénicas puede ser modificado después síntesis conjugar dirigida a grupos tiol-maleimida simple química, en donde se une un grupo de tiol en el péptido targeting (que lleva una cisteína extra para este propósito) un doble-carbono en el anillo de maleimida final de pegilado lípidos en la capa fusogénicas. Por otra parte, la masa alta eficacia de carga y entrega al citoplasma de la célula reduce al mínimo la necesidad de especificidad intracelular y logra efecto con siRNAs no modificado15el silenciamiento del gen fuerte. Una desventaja de la pSiNPs fusogénicas es que el protocolo de síntesis es un proceso de varios día que es más complejo que los agentes de transfección comercialmente disponibles. Sin embargo, mientras que los productos de referencia deben ser recién preparados antes de transfección para obtener los mejores resultados, la pSiNPs fusogénicas puede alícuotas y congelado durante al menos 30 días sin disminuir la eficacia de la precipitación.
Futuras aplicaciones de este método incluyen optimización de carga y entrega de grandes cargas de ácido nucleico, como mRNAs y cADN. Además, entrega del complejo proteína-sgRNA CRISPR/Cas9 o un cóctel de Cas9 mRNA los sgRNA, también es una opción de desarrollo, como el sistema es óptimo para la carga de cargas aniónicas. En general, el sistema de F-pSiNP es un nanoplatform modular para la terapia génica tratar enfermedades más allá de infecciones, incluyendo infecciones virales, cáncer y enfermedades autoinmunes.
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Disclosures
MJS es un científico fundador de Spinnaker Biosciences, Inc. y tiene una participación en la empresa. Aunque esta subvención ha sido identificada para la gestión de conflictos de interés basado en el alcance general del proyecto y su potencial beneficio a Spinnaker Biosciences, Inc., los resultados de las investigaciones incluidos en esta publicación particular pueden no necesariamente se relacionan con los intereses de Spinnaker Biosciences, Inc. Los términos de este acuerdo han sido revisados y aprobados por la Universidad de California, San Diego según sus políticas de conflicto de intereses. Otros autores no tienen nada que revelar.
Acknowledgments
Este trabajo es apoyado por los institutos nacionales de salud a través de contrato # R01 AI132413-01.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 1,2-dimyristoyl-sn-glycero-3-phosphocholine (DMPC) | Avanti Polar Lipids | 850345P | Powder |
| 1,2-dioleoyl-3-trimethylammonium-propane (chloride salt) (DOTAP) | Avanti Polar Lipids | 890890P | Powder |
| 1,2-distearoyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine-N-[maleimide(polyethylene glycol)-2000] (ammonium salt) (DSPE-PEG(2000) Maleimide) | Avanti Polar Lipids | 880126P | Powder |
| Aluminum foil | VWR International, LLC | 12175-001 | |
| Calcium chloride (CaCl2) | Spectrum | C1977 | Anhydrous, Pellets |
| Chloroform | Fisher Scientific | C6061 | |
| Computer | Dell | Dimension 9200 | Any computer with PCI card slot is acceptable |
| Dil Stain (1,1'-Dioctadecyl-3,3,3',3'-Tetramethylindocarbocyanine Perchlorate ('DiI'; DiIC18(3))) | Life Technologies | D3911 | |
| Ethanol (EtOH) | UCSD Store | 111 | 200 Proof |
| Hydrofluric acid (HF) | VWR International, LLC | MK264008 | Purity: 48% |
| Keithley 2651a Sourcemeter | Keithley | 2651A | |
| LabVIEW | National Instruments | Sample program available at: http://sailorgroup.ucsd.edu/sofware/ | |
| LysoTracker Green DND-26 | Thermo Fisher Scientific | L7526 | |
| Liposome extrusion set with heating block | Avanti Polar Lipids | 610000 | |
| Microcon-30kDa Centrifugal Filter Unit | EMD Millipore | MRCF0R030 | |
| O-ring | ChemGlass | CG-305-220 | |
| Phosphate-buffered saline (PBS) | Thermo Fisher Scientific | 10010-049 | |
| Platinum coil | VWR International, LLC | AA10285-BU | |
| Potassium hydroxide (KOH) | Fisher Scientific | P250-3 | |
| Silicon wafer | Siltronix | Custom order | |
| siRNA | Dharmacon | Custom order | IRF5, sense 5’-dTdT-CUG CAG AGA AUA ACC CUG A-dTdT-3’ and antisense 5’-dTdT UCA GGG UUA UUC UCU GCA G dTdT-3’ |
| Sonicator | VWR International, LLC | 97043-960 | |
| Targeting peptide (CRV) | CPC Scientific | Custom order | sequence CRVLRSGSC; made cyclic by a disulfide bond between the side chains of the two cysteine residues |
| Teflon etch cell | Interface Performance Materials, Inc. | Custom order | |
| UltraPure DNase/RNase-Free Distilled Water | Thermo Fisher Scientific | 10977015 |
References
- Ryther, R. C. C., Flynt, A. S., Phillips Iii, J. A., Patton, J. G. siRNA therapeutics: big potential from small RNAs. Gene Therapy. 12, 5 (2004).
- Scherman, D., Rousseau, A., Bigey, P., Escriou, V. Genetic pharmacology: progresses in siRNA delivery and therapeutic applications. Gene Therapy. 24, 151 (2017).
- Broderick, J. A., Zamore, P. D. MicroRNA therapeutics. Gene Therapy. 18, 1104 (2011).
- Geisler, A., Fechner, H. MicroRNA-regulated viral vectors for gene therapy. World Journal of Experimental Medicine. 6 (2), 37-54 (2016).
- Williams, P. D., Kingston, P. A. Plasmid-mediated gene therapy for cardiovascular disease. Cardiovascular Research. 91 (4), 565-576 (2011).
- Ferreira, G. N. M., Monteiro, G. A., Prazeres, D. M. F., Cabral, J. M. S. Downstream processing of plasmid DNA for gene therapy and DNA vaccine applications. Trends in Biotechnology. 18 (9), 380-388 (2000).
- Shim, G., et al. Therapeutic gene editing: delivery and regulatory perspectives. Acta Pharmacologica Sinica. 38, 738 (2017).
- Carlson, D. F., Fahrenkrug, S. C., Hackett, P. B. Targeting DNA With Fingers and TALENs. Molecular Therapy - Nucleic Acids. 1, (2012).
- Dai, W. -J., et al. CRISPR-Cas9 for in vivo Gene Therapy: Promise and Hurdles. Molecular Therapy - Nucleic Acids. 5, e349 (2016).
- Adli, M. The CRISPR tool kit for genome editing and beyond. Nature Communications. 9 (1), 1911 (2018).
- Houseley, J., Tollervey, D. The Many Pathways of RNA Degradation. Cell. 136 (4), 763-776 (2009).
- Sahay, G., et al. Efficiency of siRNA delivery by lipid nanoparticles is limited by endocytic recycling. Nature Biotechnology. 31 (7), 653-658 (2013).
- Wang, Y., Huang, L. A window onto siRNA delivery. Nature Biotechnology. 31 (7), 611-612 (2013).
- Gilleron, J., et al. Image-based analysis of lipid nanoparticle-mediated siRNA delivery, intracellular trafficking and endosomal escape. Nature Biotechnology. 31 (7), 638-646 (2013).
- Kim, B., et al. Immunogene therapy with fusogenic nanoparticles modulates macrophage response to Staphylococcus aureus. Nature Communications. 9 (1), 1969 (2018).
- Zhang, X., et al. Targeted Disruption of G0/G1 Switch Gene 2 Enhances Adipose Lipolysis, Alters Hepatic Energy Balance, and Alleviates High-Fat Diet–Induced Liver Steatosis. Diabetes. 63 (3), 934-946 (2014).
- Schlosser, K., Taha, M., Deng, Y., Stewart, D. J. Systemic delivery of MicroRNA mimics with polyethylenimine elevates pulmonary microRNA levels, but lacks pulmonary selectivity. Pulmonary Circulation. 8 (1), 2045893217750613 (2018).
- Komarov, A. P., et al. Functional genetics-directed identification of novel pharmacological inhibitors of FAS- and TNF-dependent apoptosis that protect mice from acute liver failure. Cell Death & Disease. 7, e2145 (2016).
