我们提出了一种运动动力离心微流体装置,可以培养细胞球体。使用该装置,单细胞或多种细胞类型的球体在高重力条件下可以很容易地共同培养。
三维球体细胞培养法在细胞实验中可以获得更有用的结果,因为它比二维细胞培养更好的模拟活体细胞微环境。在这项研究中,我们制造了一个电机驱动的实验室在CD(光盘)平台,称为离心微流体基球体(CMS)培养系统,以创建三维(3D)细胞球体实现高离心力。此设备可改变旋转速度,生成从 1 x g到 521 x g的重力条件。CMS系统直径6厘米,微井100400μm,由计算机数控机在聚碳酸酯模具中用聚二甲基硅氧烷成型。CMS 系统通道入口的屏障墙使用离心力将细胞均匀地分布到芯片内。在通道的末端,有一个滑动区域,允许细胞进入微井。作为证明,球体是由人类脂肪衍生干细胞和人类肺成纤维细胞在高重力条件下使用该系统的单一培养和共同培养产生的。CMS系统使用一个简单的操作方案来生产同心、Janus 和三明治等不同结构的共栽球体。CMS系统将可用于细胞生物学和组织工程研究,需要单细胞或多种细胞类型的球体和有机体培养。
与二维(2D)细胞培养(例如,常规培养皿细胞培养)相比,使用三维(3D)球形细胞培养法在体内微环境中模拟生物更容易,从而产生更生理上逼真的实验结果1.目前可用的球形形成方法包括悬滴技术2、液体覆盖技术3、卡博基甲基纤维素技术4、磁力微流体技术5、使用生物反应器6.尽管每种方法都有其自身的优点,但还需要进一步提高可重复性、生产率和生成共培养球体。例如,虽然基于磁力的微流体技术5相对便宜,但必须仔细考虑强磁场对活细胞的影响。球体培养的好处,特别是在研究中细胞分化和增殖,已经报告在几项研究7,8,9。
离心微流体系统,也称为CD实验室(光盘),可用于轻松控制内部流体和利用基板的旋转,因此已用于生物医学应用,如免疫测定10,用于检测生化标记物11的色度测定、核酸扩增 (PCR) 测定、自动血液分析系统12和一体离心微流体装置13。控制流体的驱动力是旋转产生的向心力。此外,只需在这个单 CD 平台中,即可完成混合、val 和样品拆分的多种功能。然而,与上述生化分析方法相比,将CD平台应用于培养细胞,特别是球体14的试验较少。
在这项研究中,通过单一培养或人类脂肪衍生干细胞(hASC)和人肺成纤维细胞(MRC-5)的单培养或共培养,展示了离心微流体基球体(CMS)系统的性能。本文详细介绍了我们小组的研究方法15。因此,在CD上的球形培养实验室平台可以很容易地复制。介绍了一种CMS生成系统,包括CMS培养芯片、芯片支架、直流电机、电机安装和旋转平台。电机支座为 3D 打印,印有丙烯酰胺苯乙烯 (ABS)。芯片架和旋转平台是数控(计算机数控)与PC(聚碳酸酯)一起加工的。通过编码基于脉冲宽度调制的 PID(比例积分-衍生物)算法,电机的转速从 200 rpm 控制在 200 到 4,500 rpm。其尺寸为 100 mm x 100 mm x 150 mm,重量为 860 g,易于操作。使用CMS系统,可以在1 x g到521 x g的各种重力条件下生成球体,因此在高重力下细胞分化促进的研究可以从2D细胞16、17扩展到3D。球体。各类细胞的共生也是有效模拟体内环境的关键技术。CMS 系统可以轻松生成单一培养球体,以及各种结构类型(例如同心、Janus 和三明治)的共培养球体。CMS系统不仅可用于简单的球形研究,还可用于3D有机体研究,以考虑人体器官结构。
CMS 是一个封闭的系统,所有注入的细胞进入微井时无浪费,使其比传统的基于微井的球形生成方法更高效、更经济。在 CMS 系统中,介质每 12~24 小时通过一个吸孔进行更换,该吸孔设计用于移除芯片中的介质(图 3A)。在介质吸入过程中,由于介质与微井壁之间的表面张力,几乎没有任何介质从微井内部逸出。用户可以通过用手指在芯片的微井区域附近按压,轻松移除被困…
The authors have nothing to disclose.
这项研究得到了NRF基础科学研究计划(2016R1D1A1B03934418)和生物与医疗技术发展计划(2018M3A9H1023141)的支持,并由韩国政府MSIT资助。
3D printer | Cubicon | 3DP-210F | |
Adipose-derived mesenchymal stem cells (hASC) | ATCC | PCS-500-011 | |
Antibiotic-Antimycotic | Gibco | 15240-062 | Contained 1% of completed medium and buffer |
CellTracker Green CMFDA | Thermo Fisher Scientific | C2925 | 10 mM |
CellTracker Red CMTPX | Thermo Fisher Scientific | C34552 | 10 mM |
Computer numerical control (CNC) rotary engraver | Roland DGA | EGX-350 | |
DC motor | Nurielectricity Inc. | MB-4385E | |
Dimethylsulfoxide (DMSO) | Sigma Aldrich | D2650 | |
Dulbecco's modified eaggle's medium (DMEM) | ATCC | 30-2002 | |
Dulbecco's phosphate buffered saline (D-PBS) | ATCC | 30-2200 | |
Fetal bovine serum | ATCC | 30-2020 | Contained 10% of completed medium |
human lung fibroblasts (MRC-5) | ATCC | CCL-171 | |
Inventor 2019 | Autodesk | 3D computer-aided design program | |
Petri dish Φ 150 mm | JetBiofill | CAD010150 | Surface Treated |
Plasma cleaner | Harrick Plasma | PDC-32G | |
Pluronic F-127 | Sigma Aldrich | 11/6/9003 | Dilute with phosphate buffered saline to 4% (w/v) solution |
Polycarbonate (PC) | Acrylmall | AC15PC | 200 x 200 x 15 mm |
Polydimethylsiloxane (PDMS) | Dowcorning | Sylgard 184 | |
Trypsin | Gibco | 12604021 |