Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Developmental Biology

Трансутерная фетальная трахеальная модель окклюзии у мышей

Published: February 5, 2021 doi: 10.3791/61772

Summary

Различные животные модели врожденной диафрагмальной грыжи и окклюзии плода трахеи представляют преимущества и недостатки в отношении этических вопросов, стоимости, хирургических трудностей, размера, выживаемости и наличия генетических инструментов. Эта модель представляет 2000 новых инструментов для изучения влияния как трахеи окклюзии, так и повышенного светимого давления на развитие легких.

Abstract

Фетальная трахеальная окклюзия (ТО), установленный метод лечения, способствует росту легких плода и выживанию при тяжелой врожденной диафрагмальной грыже (CDH). После TO, задержка выделяется эпителиальной жидкости увеличивает светимое давление и вызывает рост легких. Различные модели животных были определены, чтобы понять патофизиологию CDH и TO. Все они имеют свои преимущества и недостатки, такие как сложность техники, размер животного, стоимость, высокие показатели смертности, а также наличие генетических инструментов. В этом и описывается новая трансутерная модель муринального плода TO. Беременные мыши были обезболены, а матка подвергалась воздействию лапаротомии средней линии. Трахея отдельных плодов была перевязана одним трансматозным швом, помещенным за трахеей, одной сонной артерией и одной яремной веной. Плотина была закрыта и разрешена к восстановлению. Плоды были собраны незадолго до партурии. Соотношение веса легких к телу у плодов TO было выше, чем у контрольных плодов. Эта модель предоставляет исследователям новый инструмент для изучения влияния как TO, так и повышенного светимого давления на развитие легких.

Introduction

Врожденная диафрагмальная грыжа (CDH) возникает при 1:2500 беременностях и приводит к легочной гипоплазии и неонатальнойлегочной гипертензии 1,2,3,4,5,6. Фетальная трахеальная окклюзия (TO) является установленной пренатальной терапии у тяжелых пациентов CDH с участием фетоскопии в26-30-й гестационной недели, в которой воздушный шар помещается чуть выше карины, а затем удалены в 32-йгестационной недели. Это временное ТО индуцирует рост легких плода и улучшает выживание. Врожденный синдром обструкции дыхательных путей является смертельным состоянием, связанным с гиперплазией легких, которая вдохновила хирургов на искусственное окклюзию трахеи для содействия удержанию выделяется эпителиальной жидкости. Это окклюзия повышенное светимое давление и индуцированный ростлегких 7. Тем не менее, окклюзия должна быть обращена вспять, чтобы эпителиальные клетки созревания.

Для понимания патофизиологии CDH и TO были разработаны различные модели животных CDH и TO - яйцеклетки, кролика, крысы и мыши. Все они имеют свои преимущества и недостатки, такие как сложность техники, размер животного, стоимость, высокие показатели смертности, а также наличие генетических инструментов. Хотя хирургическая техника, используемая для модели яйцеклетки очень похожа на то, что используется в организме человека и может быть обращена вспять, основными недостатками этой модели являются расходы на животное, длительный гестационный период, и ограниченное количество операций возможно. Модель кролика имеет более короткий гестационный период и дешевле, чем модель овец. Тем не менее, модель кролика необратима8,9. Модель мурина имеет самую низкую стоимость, наибольшее количество плодов на беременность, наиболее характерный геном и широко доступные инструменты для клеточного и молекулярного анализа. Однако ключевым недостатком является отсутствие обратимости ТО, препятствуя полному пониманию воздействия ТО. В этом случае представлен метод, который сочетает в себе все преимущества ранее упомянутых моделей и создает легкую, потенциально обратимую и минимально инвазивную модель грызунов TO.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

Все эксперименты были проведены в соответствии с Национальными институтами здравоохранения руководство по уходу и использованию лабораторных животных (NIH Публикации No 80023, пересмотренный 1978). Процедура была одобрена протоколом МАКУК #2016-0068 Комитетом по институциональному уходу и использованию животных Фонда детей Цинциннати.

1. Подготовка

  1. Чтобы спаривать возрастных диких мышей (WT) C57BL/6, поместите их в ту же клетку в 18:00 .m. и раздельйте их в 9:00 .m на следующий день.
  2. Чтобы определить эмбриональный день 0 (E0), посмотрите на вагинальный штепсельной вилки, которая имеет однородную внешнюю зону, прикрепленную к стенке влагалища и внутренней зоне, которая волокниста и включает в себя некоторые сперматозоиды, которые образуют запутанные массы, смешанные с волокнами вилки материала.
  3. Заметь вес мышей во время спаривания.
  4. Повторное взвешивание мышей на E10 для обеспечения текущей беременности.
  5. Выполните операцию на E16.5 (ранняя стадия канала).
  6. Стерилизовать инструменты, которые будут использоваться во время операции: ножницы, держатель иглы, типсы, зажимы, а также хирургические ножи и ручки.
  7. Предварительно разогреть хирургический платформу до 24 градусов по Цельсию и подготовить теплый солевой раствор (24 градусов по Цельсию) до операции.
  8. Создайте теплую среду для восстановления и оставьте влажную пищу внутри клетки для раннего кормления.
  9. Оставайтесь с эксплуатируемыми животными, пока они не смеют себя.
  10. Держите оперировать мышей в одиночку в своих отдельных клетках после операции.

2. Анестезия

  1. Нанесите подкожный 0,1 мг/кг бупренорфина на беременные плотины за 1 ч до процедуры.
  2. Используйте вдыхаемые 5 мл/ч изофлурана для индукции и 2 мл/ч непрерывно во время процедуры анестезии.
  3. Мониторинг движений подбородков беременных мышей.

3. Лапаротомия

  1. Очистите брюшную поверхность алкоголем и повидедоном-йодом. Поддерживайте стерильные условия на протяжении всей операции.
  2. Выполните вертикальный разрез для лапаротомии беременных плотин. Вырезать все слои отдельно.
  3. Определите рога матки с каждой стороны.
  4. Определите кандидата плода для операции.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Не оперировать плодов, которые находятся ближе всего к вагине.
  5. Оперировать на двух плодах в каждом роге матки, если есть четное количество плодов с каждой стороны (4 большую часть времени), и на 1 плод в каждом роге матки, если есть нечетное количество матки (3 большую часть времени).

4. Трахеальная окклюзия

  1. Используйте 2,5x увеличенные очки для визуализации.
  2. Распоить рог матки поперечным способом.
  3. Возьмите щенков, лицом вверх, между двумя пальцами, используя глаза щенков и хвост в качестве руководства для положения плода.
  4. Нанесите нежное давление на голову щенка, чтобы обеспечить расширение головы и, следовательно, визуализацию шеи.
  5. Используйте 6,0 полипропиленовый шов с атрауматической иглой для выполнения TO (Рисунок 1). Держите плаценту на стороне и вдали от входных и выходных точек иглы.
  6. Вставьте иглу поперечно через сторону матки от плаценты через 1/3rd передней части шеи.
  7. Переместите иглу осторожно до средней линии шеи и навейте ее на переднюю часть, затем вывяйте шею между трахеей и напротив сонной оболочки и матки.
  8. Узел шва, заботясь, чтобы сохранить целостность мембран и стенок матки, и сохранить пуповину безопасной во время завязывания.

Figure 1
Рисунок 1: Трахеальная окклюзия. (A)Трансутерный шов, проходящий через шею. (B)Схематическое представление структур после шва проходит через и перед узлом. Аббревиатуры: C и сонная артерия; J и яремная вена; Т Трахея; E и пищевод; V и позвонок. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть большую версию этой цифры.

5. Закрытие брюшной стенки

  1. Замените рог матки в брюшной полости.
  2. Введите 2 мл теплого стерильного солевого раствора в брюшную полость перед закрытием.
  3. Положите работает 5/0 полиглактина шва, чтобы закрыть брюшную стенку, и закрыть кожу с не работает шелковый шов.
  4. Нанесите 0,1 мг/кг бупренорфина intraperitoneally для анальгезии, и позволяют восстановления плотины в теплом инкубаторе.

6. Урожай

  1. Нанесите анестезию на беременную плотину и соготмите все плоды на E18.5 кесаревым сечением.
  2. Проверьте жизнеспособность плода, наблюдая за движениями плода.
  3. Используйте по крайней мере два различных метода для эвтаназии: инция двуокиси углерода и дислокация шейки матки.
  4. Удалить органов в соответствии с регулированием ветеринарной лаборатории.
  5. Взвесь все плоды.
  6. Выполните вертикальный разрез на грудной клетке для торакотомии, чтобы удалить легкие.
  7. Вскрыть легкие эмбрионов, и взвесить их, чтобы вычислить общее соотношение веса легких к телу (LBWR - (левый вес легких и правого веса легких)/вес тела x100).

7. Гистология

  1. Snap-заморозить ткани в жидком азоте, оптимальное соединение температуры резки, и сухой лед.
  2. Разрежьте образцы на 10 мкм секциях с помощью криостата и смонтировать их на полилин-покрытых слайдах.
  3. Выпекать слайды при температуре 60 градусов по Цельсию на ночь, и пятно запеченные слайды с гематоксилином и эозином, прежде чем монтаж их для получения изображения на 10-20x увеличение с помощью широкоугольного микроскопа.

8. Обработка тканей для анализа белков и ДНК

  1. Snap-заморозить вскрыли легких плода, и гомогенизировать их в 300 йл радиоиммунопрофильизации анализа буфера. Центрифуга при 4 градусов по Цельсию в течение 5 мин при 18000 × г.
  2. Экстракт и количественная оценка белка, ДНК иРНК 10,12.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

В этом исследовании было изучено 37 плодов: 20 (54,1%) как TO против 17 (45.9%) как контроль. Поскольку трахея не может быть закрыта у 4 плодов в группе ТО, они были исключены из исследования. Существенной разницы в смертности в обеих группах не было: 4 плода (25%) в группе TO и 2 плода (12%) в контрольной группе (р-0,334, коэффициент коэффициента (ОР) 2,5, 95% интервал доверия (CI) 0,39-16,05). Средний вес тела, вес легких и легких к весу тела (LBWR) были выше в группе TO, чем в контрольной группе(таблица 1). Между ТО и контрольных группами существовала существенная разница в LBWR (p-0.006).

ДНК, РНК и белок были количественно определены, чтобы определить причину разницы в LBWR (Рисунок 2). Количество ДНК легких и соотношение ДНК/белка были выше в группе TO, никакой разницы не наблюдалось в РНК легких, а количество белка было ниже в группе TO, чем в контрольной группе, как ранее наблюдалось в модели кролика TO, в которой эпителиальная гиперплазия была отмечена12. Диаметры дыхательных путей в группе ТО также продемонстрировали увеличение.

Гистологический анализ легких E18.5 показал поздний каналический/ранний саккулярный этап развития легких с развитием воздушного пространства и утолщенного интерстиция между эпителиальными поверхностями в контрольных образцах, в то время как легкие в группе ТО имели расширенные центральные и дистальные пространства с субъективно большим количествомядер (рисунок 2). Это увеличение клеточности согласуется с отмеченным увеличением количества ДНК легких.

Figure 2
Рисунок 2: Особенности групп. (A) Нормализованный легких к весу плода отношение, (B) ДНК легких ксоотношению белка,( C ) Содержание ДНК легких нормализуется до веса легких, (D) содержание РНК легких нормализуется до веса легких, и (E) содержание белка легких нормализуется до веса легких. (F) Представитель гематоксилина и эозина изображения C57BL/6 E18.5 легких без (шкала бар 50 мкм) и (G) с фетальной трансутерной трахеальной окклюзии показаны гиперплазия проведения дыхательных путей и увеличение размера дистального воздушного пространства; шкала бар 100 мкм. Сравнение контроля (n-9) и окклюзии трахеи (TO) (n'6) проводилось с помощью студенческогот-теста. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть большую версию этой цифры.

Таблица 1: Морфометрические результаты групп
Кому контроль р
Вес плода (мг) 1100.52 ± 229.38 1087.15 ± 172.32 0.896
Вес легких (мг) 28.41 ± 5.87 23.38 ± 3.09 0.043
LBWR 0,0259 ± 0,0021 0,0217 ± 0,0028 0,006г.
Значения, выраженные как ± стандартных отклонений. Аббревиатуры: LBWR - соотношение веса тела плода; ТО - трахеальная окклюзия.
95% Интервал доверия 0.0222-0.0249. Группы по сравнению с T-тест студента.

Таблица 1: Морфометрические результаты групп

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Этот метод описывает хирургическую процедуру окклюзии плода трахеи у мышей и ее влияние на развитие легких. Есть некоторые важные шаги в протоколе, которые должны быть тщательно выполнены для успешного TO. Тепло платформы, на которой проводится операция, и солевой раствор, введенный в брюшную полость, имеет решающее значение для прогрессирования беременности. Кроме того, небольшое давление должно быть применено к голове щенков, чтобы обеспечить воздействие шеи.

6.0 полипропиленовый шов является единственным швом, который может быть использован для этой техники. Иглы швов размером более 6,0 толще и разрушают структуры вокруг трахеи в шее, что приводит к потере плода. Иглы более тонких швов очень короткие и не могут проходить через шею щенка E16.5 (ранняя стадия канала). Кроме того, режущая игла не подходит, поскольку она может разрушить соседние структуры.

Эта модель имеет некоторые ограничения. Во-первых, существует разница в корреляции стадий развития легких и гестационного периода между мышами и людьми. Во-вторых, трудно разработать CDH у мышей и, наконец, гемодинамические исследования трудно провести в моделях мыши. Тем не менее, короткая кривая обучения в этом исследовании привела к резкому снижению уровня смертности плода. Как указывалось ранее, стоимость животных, а также их содержание, количество плодов на беременность, продолжительность периода беременности и ограниченная доступность генетических инструментов являются основными ограничивающими факторами в моделях кроликов и овец.

Первое преимущество этой модели мыши является то, что она устраняет необходимость гистеротомии для ТО и имеет потенциал, чтобы быть обращены вспять вутробе матери 11, что объясняет низкие показатели смертности наблюдается в этом исследовании. Во-вторых, снижение стоимости животных и их содержание и более короткий период беременности облегчает более широкий спектр экспериментов. В-третьих, неохреальные причины осложнений, такие как переохлаждение и анестезия, предотвращаются короткой продолжительностью операции. Наконец, широкий спектр генетических инструментов, доступных на мышах приведет к более исследований, чтобы понять патофизиологии CDH. Удаление трансутерного шва с живым рождением плода в нитрофен и нокаут модели CDH будет в будущем применения этой техники.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Авторов нечего раскрывать.

Acknowledgments

Это исследование не получило каких-либо конкретных субсидий от финансовых учреждений в государственном, коммерческом или некоммерческом секторах. Все авторы внесли существенный вклад в разработку и разработку исследования, приобретение, анализ и интерпретацию данных, составление статьи и ее пересмотр на основе важного интеллектуального содержания и окончательного утверждения представленного варианта. Авторы благодарят Кан Сабункуоглу за его добрые усилия по производству произведений хирургической техники.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Buprenorphine  Par Pharmaceutical NDC 42023-179-05 For regional anesthesia
Isoflurane   Halocarbon Life Sciences NDC 66794-017-25 For general anesthesia
Magnification glasses USA Medical-Surgical SLR-250LBLK At least 2.5x
Nikon 90i microscope Nikon 3417 Motorized Fluorescence
Nucleospin Tissue Kit  Macherey-Nagel, Düren, Germany 740952.5 DNA isolation
Pierce BCA Protein Assay Kit  Thermo Fisher, IL, USA 23225 Protein quantification
Polyglactin suture Ethicon VCP451H 4-0, 24 mm, cutting
Polylysine slides  VWR  48382-117 Microscope adhesion slides
Polypropylene suture Ethicon Y432H 6-0, 13 mm 1/2c Taperpoint
RIPA buffer  Sigma-Aldrich, Missouri, USA R0278-50ml Protein isolation
Silk suture Ethicon VCP682G 4-0, 24 mm, cutting
Trizol  Invitrogen  15596026 RNA isolation

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Wright, N. J. Global PaedSurg Research Collaboration. Management and outcomes of gastrointestinal congenital anomalies in low, middle and high income countries: protocol for a multicentre, international, prospective cohort study. BMJ Open. 9, 030452 (2019).
  2. Aydin, E. Current approach for prenatally diagnosed congenital anomalies that requires surgery. Turkish Clinics Journal of Gynecology and Obstetrics. 27, 193-199 (2016).
  3. Nolan, H., et al. Hemorrhage after on-ECMO repair of CDH is equivalent for muscle flap and prosthetic patch. Journal of Pediatric Surgery. 54 (10), 2044-2047 (2019).
  4. Aydin, E., et al. Congenital diaphragmatic hernia: the good, the bad, and the tough. Pediatric Surgery International. 35 (3), 303-313 (2019).
  5. Aydın, E., Özler, O., Burns, P., Lim, F. Y., Peiró, J. L. Left congenital diaphragmatic hernia-associated musculoskeletal deformities. Pediatric Surgery International. 35 (11), 1265-1270 (2019).
  6. Aydın, E., et al. When primary repair is not enough: a comparison of synthetic patch and muscle flap closure in congenital diaphragmatic hernia. Pediatric Surgery International. 36 (4), 485-491 (2020).
  7. Wilson, M., Difiore, J. W., Peters, C. A. Experimental fetal tracheal ligation prevents the pulmonary hypoplasia associated with fetal nephrectomy: Possible application for congenital diaphragmatic hernia. Journal of Pediatric Surgery. 28 (11), 1433-1440 (1993).
  8. Mudri, M., et al. The effects of tracheal occlusion on Wnt signaling in a rabbit model of congenital diaphragmatic hernia. Journal of Pediatric Surgery. 54 (5), 937-944 (2019).
  9. Khan, P. A., Cloutier, M., Piedboeuf, B. Tracheal occlusion: a review of obstructing fetal lungs to make them grow and mature. American Journal of Medical Genetics. Part C, Seminars in Medical Genetics. 145 (2), 125-138 (2007).
  10. Chomczynski, P. A reagent for the single-step simultaneous isolation of RNA, DNA and proteins from cell and tissue samples. Biotechniques. 15 (3), 532-537 (1993).
  11. Beurskens, N., Klaassens, M., Rottier, R., De Klein, A., Tibboel, D. Linking animal models to human congenital diaphragmatic hernia. Birth Defects Research Part A: Clinical and Molecular Teratology. 79 (8), 565-572 (2007).
  12. Varisco, B. M., et al. Excessive reversal of epidermal growth factor receptor and ephrin signaling following tracheal occlusion in rabbit model of congenital diaphragmatic hernia. Molecular Medicine. 22, 398-411 (2016).

Tags

Биология развития Выпуск 168 Фетальная трахеальная окклюзия врожденная диафрагмальная грыжа CHAOS рост легких развитие легких плода мыши
Трансутерная фетальная трахеальная модель окклюзии у мышей
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Aydın, E., Joshi, R., Oria, M., More

Aydın, E., Joshi, R., Oria, M., Lim, F. Y., Varisco, B. M., Peiro, J. L. Transuterine Fetal Tracheal Occlusion Model in Mice. J. Vis. Exp. (168), e61772, doi:10.3791/61772 (2021).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter